Diagnostico parasitario - Resumo

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Diagnostico parasitário
Técnicas parasitológicas:
· Exame macroscópio: observar consistência, cor, presença ou ausência e sangue, muco de proglotes e de vermes adultos.
· Podemos classificar em fezes
Formadas, semiformadas, pastosas ou liquidas (diarreias) 
Tamisação= Emulsionar as fezes com água e coar a emulsão com peneira; Vermes adultos de Ascaris lumbricoides,
Enterobius vermicularis e proglotes de tênias são encontrados frequentemente;
Trichuris trichiura,ancilostomídeos e
Hymenolepis nana são encontrados no bolo
fecal após o início do tratamento.
· Identificação de proglotes de taenia spp. (método do ácido acético glacial) 1.Colocar em uma placa de Petri, contendo ácido acético glacial, a proglote a ser identificada, durante
15 a 20 minutos.
3. Após este período, comprimi-la entre duas lâminas.
4. Examinar sob iluminação intensa. Para fechar qualquer diagnóstico parasitológico é necessário observar o parasito em um de seus estágios de evolução (forma evolutiva); O exame microscópico é suficiente para o diagnóstico; Entretanto, para a obtenção de melhore resultados é necessário o uso da associação de mais de uma técnica parasitológica;
· Elementos que podem ser encontrados no exame microscópico:
 - Ovos, larvas, formas adultas, trofozoítos, cistos e oocistos;
 - Hemácias: raramente encontradas, pois são lisadas com rapidez pelas enzimas digestivas.
- Leucócitos: neutrófilos (inflamação), eosinófilos, e macrófagos;
 - Células epiteliais: resultam da descamação normal do epitélio intestinal;
- Células vegetais e fibras vegetais.
· Exame direto a fresco (procedimento simples e eficiente para o estudo em infecções maciças permitindo a identificação de trofozoítos, cistos, ovos e larvas) diagnostico rápido, porem se a carga parasitaria for baixa, este exame pode resultar em falso negativo. (resultados considerados preliminares) 
· Sedimentação espontânea 
(Técnica de concentração, princípio da sedimentação simples) Conhecida também como método de Hoffmann, Pons e Janer ou Lutz;
 Procedimento simples, indicado para a pesquisa de ovos, larvas e cistos, favorecendo um
diagnóstico satisfatório e seguro, mesmo em situações de baixa carga parasitária;
Vantagem: baixo custo e utilização mínima de vidrarias;
 Desvantagem: grande quantidade de detritos fecais no sedimento, o qual poderá dificultar a identificação parasitária. (passo a passo em slide) 
· Método de Graham (fita gomada ou método da fita adesiva) Método indicado para a pesquisa de ovos e larvas na região perianal;
Indicado para a pesquisa de ovos e larvas de Enterobius vermicularis, ovos de Taenia solium e Taenia saginata;
Preparo do paciente: - Não utilizar nenhum medicamento na região perianal antes da coleta; - Orientar o paciente a não defecar e tomar banho antes da coleta; - Realizar a coleta pela manhã. 
· Método de faust (centrifugo- flutuação em solução de sulfato de zinco) 
Fundamenta-se no princípio da diferença de densidade específica entre ovos e larvas de
helmintos, cistos e oocistos de protozoários e o material fecal;
- Objetivo: fazer com que as formas evolutivas flutuem na superfície dos reagentes;
- Método indicado para pesquisa de ovos leves, cistos e oocistos.
- Utilizam-se reagentes de alta densidade Sulfato de zinco varia de 1,18 a 1,20g/ml;
- Ovos, cistos e oocistos apresentam densidades específicas, as quais variam de 1,05 a 1,15g/ml;
Vantagens: Formação na superfície do tubo de uma membrana clara com poucos detritos fecais; - Concentração de ovos e cistos mesmo quando presentes em pequeno número.
Desvantagens: Ovos com densidade superior a 1,20g/ml não flutuam nesta técnica (ovos de Ascaris lumbricoides, Taenia sp e Schistosoma mansoni não flutuam); - Pode ocorrer distorção de algumas formas evolutivas, dificultando a identificação; - Trofozoítos não são isolados; - Lipídeos das fezes flutuam com os ovos e cistos.
· Método de Ritchie ( centrifugo-se sedimentação pela formalina- éter) Variação da técnica: centrífugo-sedimentação pela formalina-acetato de etila;
- Técnica eficiente para a identificação de oocistos, cistos, ovos e larvas.
 Vantagens:
 - Permite a separação dos detritos fecais, deixando o sedimento “limpo”;
 - Formalina mantém íntegras as estruturas parasitárias e o éter removem lipídeos.
Desvantagem:
 - Éter é inflamável!
· Método de willis (principio: flutuação em solução saturada de cloreto de sódio) 
Fundamenta-se na dupla propriedade que apresentam certos ovos de helmintos de flutuarem na superfície de uma solução de densidade elevada e de aderirem ao vidro; Procedimento simples, o qual é indicado para a pesquisa de ovos com baixa densidade; Não é indicada para a pesquisa de ovos pesados, tais como: Schistosoma mansoni, Taenia sp e de Ascaris lumbricoides; Nesta técnica, os cistos de protozoários se retraem, ficando irreconhecíveis.
 Solução utilizada: de NaCl em 100ml de água (d= 1,20)