giardia

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UNIVERSIDADE FEDERAL DO RIO GRANDE DO SUL 
FACULDADE DE VETERINÁRIA 
ESPECIALIZAÇÃO EM ANÁLISES CLÍNICAS VETERINÁRIAS 
 
 
 
 
GIARDÍASE – REVISÃO LITERÁRIA 
 
 
 
 
FABIANA BARBOSA DO NASCIMENTO 
 
Orientador: Profª. Drª. Silvia Gonzalez Monteiro 
 
 
 
Porto Alegre, Rio Grande do Sul 
2009 
 1
 
UNIVERSIDADE FEDERAL DO RIO GRANDE DO SUL 
FACULDADE DE VETERINÁRIA 
ESPECIALIZAÇÃO EM ANÁLISES CLÍNICAS VETERINÁRIAS 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Título do trabalho: Giardíase – Revisão literária 
Autor: Fabiana Barbosa do Nascimento 
 
Monografia apresentada à 
Faculdade de Veterinária como 
requisito parcial no curso de Especialização em 
Análises Clínicas Veterinárias 
 
Orientadora: Sílvia Gonzalez Monteiro 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
PORTO ALEGRE 
2009 
 
 
 2
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
“Deus nos concede, a cada dia, uma página da vida nova no livro do tempo. Aquilo que 
colocarmos nela, corre por nossa conta.” 
Chico Xavier 
 
 
 
 
 
 3
 
RESUMO 
 
 
 
 Giardíase é uma doença caracterizada por diarréia aguda e crônica, que ocorre tanto em 
animais como em seres humanos. Giardia spp. é um gênero de extrema importância, devido ao 
seu alto poder zoonótico. O seu diagnóstico não pode ser feito de acordo com seu hospedeiro, 
devido aos vários genótipos encontrados através de estudos mais aprofundados quanto a sua 
biologia molecular. O objetivo do presente trabalho é esclarecer quais são os melhores métodos de 
diagnósticos, principais métodos em biologia molecular, suas vantagens e desvantagens. 
 
 
Palavras-chave: Giardia spp; giardíase; diagnóstico. 
 
 
ABSTRACT 
 
 
Giardiasis is an illness characterized for acute and chronic diarrhea, which occurs in 
such a way in animals as in human beings. Giardia sp. is a genus of extreme importance, due 
to its high potencial as zoonosis. Its diagnosis cannot be done in accordance with its host, as 
there are many “assemblages” found through studies considering its molecular biology. The 
objective of the present work is to clarify which are the best diagnosis methods, main methods 
in molecular biology, its advantages and disadvantages. 
Key-words: Giardia spp.; giardiasis; diagnosis 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 4
 
Lista de ilustrações 
 
 
 
Figura 1 - Trofozoíto de Giardia spp. ....................................................................8 
 
Figura 2 - Ciclo de Giardia spp. .............................................................................9 
 
Figura 3- Trofozoíto de Giardia spp. no intestino ..............................................10 
 
Figura 4 - Cisto de Giardia spp. corado com iodo ..............................................17 
 
Figura 5 – Canine Snap Giardia .......................................................................... 18 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 5
 
SUMÁRIO 
 
1 -INTRODUÇÃO .................................................................................................. 6 
2 -Revisão de literatura ....................................................................................... 7 
2.1-Características do parasita............................................................................ 7 
2.2- Patogenia.........................................................................................................8 
2.3- Ciclo de vida....................................................................................................8 
 2.4- Metabolismo..................................................................................................10 
 2.5- Espécies........................................................................................................11 
2.6- Genótipos.......................................................................................................11 
2.7- Tipagem......................................................................................................... 12 
2.8- Análise eletroforética de proteínas..............................................................12 
2.9- Epidemiologia.................................................................................................13 
2.10- Diagnóstico.................................................................................................. 14 
2.11- Tratamento....................................................................................................19 
2.12 – Profilaxia .....................................................................................................20 
3- Conclusões.........................................................................................................21 
 
 
 
 
 
 6
1 INTRODUÇÃO 
 
 Giardia sp. é um protozoário que parasita o intestino, tanto de animais como de 
humanos. O principal fator de contaminação é a ingestão de água contaminada (MILLER, 
2007). É responsável por aproximadamente 1 bilhão de casos de diarréia que ocorrem no 
mundo (TEODOROVIC, 2007) 
Existem vários métodos para o diagnóstico de Giardia, e a escolha varia de acordo 
com a sensibilidade e a especificidade desejada. O diagnóstico pode ser feito pela 
visualização direta dos cistos nas amostras de fezes (HUBER, 2003) ou pela visualização de 
trofozoítos que podem ser encontrados nos exames coprológicos diretos, porém como são 
muito frágeis, serão encontrados em casos de fezes diarréicas (DRYDEN, 2006). Os testes 
indiretos de diagnósticos estão sendo mais difundidos devido a sua alta sensibilidade e os 
mais utilizados são os testes de imunoabsorção de antígenos parasitários solúveis, tais como 
ELISA (HUBER, 2003) e PCR real time (GUY, 2004; BRINKMAN, 2006; VERWEIJ, 2003; 
SCHUURMAN, 2007). 
 
 
 
 
 
 
 7
2 REVISÃO DE LITERATURA 
2.1 Características do parasita 
Pertence a ordem Diplomonadida, tem motilidade ativa e se multiplica no intestino 
(BECK, 2005). O trofozoíta é piriforme, bilateral, simétrico e mede aproximadamente 10-12 
µm de comprimento por 5-7 µm de largura. Possui quatro pares de flagelos e uma estrutura 
ventral encontrada exclusivamente no gênero Giardia, chamado disco ventral ou disco 
adesivo, estrutura que permite adesão do parasita no intestino (Figura 1). 
O cisto de Giardia é oval, mede de 8-12 µm de comprimento e 7-10 µm de largura e 
possui uma parede exterior de glicoproteína que denota a forma cística. Possui dois a quatro 
núcleos, flagelos axonêmicos, alguns ribossomas e fragmentos dos discos ventral 
(GUIMARÃES; SOGAYAR; FRANCO, 1999) Existem vários genótipos diferentes de 
Giardia spp., porém todos são visualmente idênticos na microscopia óptica (TROUT, 2006) 
 
Figura 1. Trofozoíto de Giardia. Fonte: http://es.wikipedia.org/wiki/Giardia_lamblia 
 
 
http://es.wikipedia.org/wiki/Archivo:Giardia_lamblia_SEM_8698_lores.jpg�
http://es.wikipedia.org/wiki/Archivo:Giardia_lamblia_SEM_8698_lores.jpg�
 8
2.2 Patogenia 
 Após a infecção, ocorre diarréia devido ao dano que os trofozoítos causam na mucosa 
intestinal, a resposta imune do hospedeiro, a alteração da bile e alteração da flora intestinal. 
Giardia spp. pode induzir a apoptose de pequenas células epiteliais intestinais. O rompimento 
da zona de oclusão aumenta a permeabilidade intestinal, resultando em má absorção 
(SCORZA, 2004) 
2.3 Ciclos de vida 
 O ciclo evolutivo se dá em dois estágios: forma cística e forma trofozoítica (Figura 2). 
A contaminação ocorre pela ingestão de água ou alimentos contaminados pela forma cística. 
Os trofozoítos são liberados no intestino onde ocorre a fissão binária, onde algumas formas 
se fixam na mucosa do intestino e outras evoluem a cistos que são eliminados nas fezes 
(GONZÁLEZ & CERONI, 2008). Os cistos que forem excretados nas fezes dos hospedeiros 
podem permanecer viáveis por vários meses (GUIMARÃES; SOGAYAR; FRANCO, 1999). 
Segundo SCORZA (2004), a contaminaçãopode ser fecal-oral, pela ingestão direta de fezes 
contaminadas, pela ingestão de alimentos e água contaminados ou por fômites contaminados. 
 
 
 
 
 
 
 9
 
Figura 2. Ciclo de Giardia sp. 
Fonte: http://www.kattenplaza.nl/afbeeldingen/Giardia_files/giardia_cyclus.jpg 
 
 
Figura 3. Trofozoíto de Giardia sp. no intestino. Fonte: http://www.cdfound.to.it/img/giardia-
06-400x.jpg 
 
 
http://www.kattenplaza.nl/afbeeldingen/Giardia_files/giardia_cyclus.jpg�
http://www.cdfound.to.it/img/giardia-06-400x.jpg�
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 10
2.4 Metabolismo 
 É um protozoário microaerófilo que coloniza o trato intestinal de hospedeiros 
vertebrados. Possui metabolismo fermentativo e apesar disso, os trofozoítos de Giardia 
consomem oxigênio, necessitando de mecanismos de detoxificação. É desprovido de 
glutationa, expressa altas concentrações de proteínas ricas em cisteína como defesa 
antioxidante (ANJOS, 2005). 
2.5 Espécies 
O gênero Giardia pode ser dividido em três espécies: Giardia duodenalis, presente 
nos mamíferos, pássaros e répteis; Giardia muri presente nos roedores, pássaros e répteis e 
Giardia agilis parasitando anfíbios. Alguns estudos com microscopia eletrônica propõem a 
existência de mais duas espécies: G. pisittaci e G. ardeae, detectadas em papagaios e garça-
real-azul. Segundo esse mesmo estudo Giardia lamblia e Giardia intestinalis são sinônimos 
de Giardia duodenalis e o uso desses nomes só aumentam a confusão na literatura científica 
(GUIMARÃES; SOGAYAR; FRANCO, 1999). 
2.6 Genótipos 
 O hospedeiro de origem não pode ser usado como critério de classificação das 
espécies, visto que a única espécie encontrada tanto em mamífero quanto em animais 
vertebrados, de um modo geral, é a Giardia lamblia (BECK et al., 2005). Ultimamente tem 
sido reconhecido Giardia duodenalis (G. lamblia) como um complexo de espécies 
geneticamente distintas e caracterizadas. Existem 7 genótipos (“assemblages”) identificados. 
Os sete são reconhecidos da seguinte forma: Giardia duodenalis, assemblage A e B, únicas 
espécies capazes de contaminar humanos, porém encontradas em larga escala em outros 
 11
mamíferos; C e D, isolados dos cães; E, isolada dos rebanhos bovino, ovinos e em suínos; F 
isolada dos felinos e G, isolada de ratos (WINKWORTH et al., 2008; MISKA et al., 2009). 
SOUZA (2007) sequenciou seis linhagens genéticas principais ( A, B, C, D, E e F ) a 
partir de um estudo com humanos, cães, gatos, bugios, bezerros, chinchilas, avestruzes, 
cachorros-do-mato e onça pintada; dentre esses genótipos (assemblages) existiam sub-
genótipos. O sub-genótipo AII foi identificado apenas nas amostras de humanos, enquanto 
que AI foi identificado nas amostras de origem animal (gato, bezerro, onça-pintada). Os 
isolados de humanos, bugios, chinchilas e avestruzes foram caracterizados como pertencentes 
ao sub-genótipo BIV. Os demais assemblages foram identificados em apenas um tipo de 
hospedeiro. Os assemblages C e D foram encontrados nas amostras de cães e cachorro-do-
mato, assemblage F apenas em gatos e assemblage E em bezerros. 
2.7 Tipagem 
Para a identificação dos assemblages de Giardia sp., os genes utilizados são o β – 
giardin proteína considerada única na Giardia spp. (WINKWORTH et al, 2008; GUY, 2004) 
e ssu-rRNA (subunidade ribossomal RNA) (TROUT, 2008). 
2.8 Análises eletroforética de proteínas 
A maioria dos estudos sobre giardíase utiliza gel de sulfato de acrilamida na 
eletroforese (SDS-PAGE) para a análise dos padrões de proteínas encontrados em vários 
tipos de Giardia. O conhecimento desses padrões de proteínas pode ajudar no conhecimento 
da virulência, antigenicidade, infectividade e resistência às drogas (GUIMARÃES; 
SOGAYAR; FRANCO, 1999). 
 
 12
2.9- Epidemiologia 
A giardíase é cosmopolita, sendo principalmente encontradas em zonas tropicais e 
temperadas (BECK, 2005) como causa de doenças gastrointestinais em vertebrados. 
(SCORZA, 2004). Em Viçosa-MG, foram identificadas elevadas concentrações de 
protozoários (incluindo Giardia spp) em mananciais abastecedores; na água filtrada de 
estações de tratamentos, em efluentes de filtros lentos, nos esgotos sanitários, em fezes de 
animais contaminados, além de uma considerável prevalência nas fezes de um contingente 
populacional urbano estudado (HELLER, 2004). 
Em lhamas de fazendas de Maryland nos EUA, foi detectada a presença desse 
flagelado do genótipo (Assemblage) A, utilizando a técnica te PCR, com primers específicos 
para genes ss-r RNA (TROUT, 2008). O parasita acomete mamíferos, aves, anfíbios, répteis 
e mais frequentemente humanos, sendo considerado o protozoário mais comum na América 
do Norte. As maiores prevalências são encontradas nos animais jovens principalmente até um 
ano de idade (BECK, 2005; ANDERSON, 2004). 
 
2.10 Diagnóstico 
O diagnóstico da giardíase pode ser feito de diversas maneiras. As formas mais 
utilizadas são os exames coprológicos que possibilitam a identificação dos cistos do parasita 
na avaliação microscópica. A técnica mais utilizada para visualização dos cistos é a flutuação 
em sulfato de zinco a 33%, porém é uma técnica pouco sensível se realizada uma única vez, 
demonstrando sensibilidade de até 70% devido à liberação de cistos nas fezes ser intermitente 
(ANDERSON, 2004). Quando o número de análises de fezes é triplicado, essa sensibilidade 
pode passar de 90% (SCORZA, 2004). Existem várias razões para a dificuldade no 
 13
diagnóstico desse parasito. Muitos “pseudoparasitas” como debris e restos de plantas, podem 
ser confundidos com Giardia por técnicos menos experientes. A identificação também está 
comprometida devido a ausência de micrômetros nos microscópios utilizados 
frequentemente, incapacitando a observação de cistos entre 8 a 10 µm. Algumas soluções de 
flutuação podem causar alteração na forma ou destruir os cistos, dificultando também sua 
visualização (DRYDEN, 2006). 
Em exames de fezes contendo muco, podem ser encontrados trofozoítos, identificados 
através de exame direto acrescido de uma gota de lugol para facilitar a visualização. Caso não 
se observe a presença de trofozoítos no exame direto, um exame de flutuação com solução de 
sulfato de zinco com densidade de 1.18 a 1.20 deve ser realizado, pois essa é a técnica de 
eleição para diagnóstico de cistos de Giardia. Soluções de flutuação com açúcar ou sal 
podem deformar os cistos. Se as fezes estiverem esteatorréicas, a técnica de formaldeído-éter 
deve ser a escolhida. Imunofluorescência indireta é uma técnica com 100% de especificidade 
em humanos, porém essa e especificidade não foram comprovadas em gatos (SCORZA, 
2004). 
A técnica de sedimentação por formaldeído–éter possui a vantagem de retirar 
gorduras e fibras presentes nas fezes facilitando a identificação do parasita, porém como 
nessa técnica não é analisada toda a amostra, devido a ser retirada apenas uma parte do 
sedimento para visualização por microscopia óptica, ocorre uma diminuição na possibilidade 
de encontrar os cistos (HUBER, 2003). 
A confecção da solução de flutuação de sulfato de zinco a 33% deve ser com 
densidade controlada a 1,18, caso contrário pode acarretar a destruição do cisto. Embora essa 
técnica seja a mais utilizada e mais indicada, não descarta os outros problemas citados acima 
relacionados à identificação do parasita na microscopia óptica. No estudo de DRYDEN 
 14
(2006) foram realizados exames de fezes com as técnicas de flutuação em sulfato de zinco a 
33%, flutuação com solução de açúcar de Sheater com densidade de 1,27 e SNAP (teste de 
presença de antígeno fecal do laboratório, Idexx) onde obteve-se 94 % de sensibilidade nos 
exames feitos com solução de flutuação com sulfato de zinco a 33%. Todas as amostras que 
foram submetidas ao SNAP deram positivas, mesmo não tendo sido encontrados cistos em 
outras técnicas. VIDAL & CATAPANI (2005) realizaram um estudo relacionandoas 
vantagens e desvantagens do método de ELISA quando comparado a microscopia óptica e 
concluiu que o teste de ELISA é indicado quando se quer alta sensibilidade, pois foram 
encontrados resultados positivos mesmo em amostras negativas na microscopia. Porém, 
devido ao baixo custo, os autores recomendam o método de microscopia, corrigindo sua 
baixa especificidade em uma única amostra, com a realização de três amostras. 
Em um estudo realizado em Santa Catarina, com fezes humanas, foi comparada a 
técnica de imuno-separação acoplada à imunofluorescência (IMS-IFA) com as técnicas de 
Faust e Lutz para o diagnóstico desse flagelado. Esse estudo demonstrou que na IMS-IFA, 
obteve-se maior sensibilidade e que a utilização dessa metodologia possibilita o 
processamento de várias amostras ao mesmo tempo, aumenta a recuperação de cistos de 
Giardia lamblia e reduz o tempo de estocagem das amostras (SOUZA et al., 2003). Segundo 
GUY (2004), os métodos de diagnósticos microscópicos, ELISA e técnicas de 
imunofluorescência, são testes qualitativos e não distinguem os diferentes genótipos do 
flagelado, além de não serem altamente sensíveis ao ponto de detectar a presença dessa 
parasita. Alguns testes rápidos de diagnóstico podem ser encontrados no comércio e ficam 
prontos em até 10 minutos, porém muitos falsos negativos podem ocorrer quando a amostra 
apresenta uma quantidade de parasita muito baixa (> 175 cistos/10 µm). Técnicas 
moleculares, como o PCR são alternativas para esse problema. A partir do uso e da 
combinação das técnicas de PCR podemos detectar e descobrir os variados genótipos desse 
 15
parasito, usando combinações de RFLP (restriction fragment lenght polymorphism), nested-
PCR. A mais recente técnica utilizada é a PCR em tempo real que é uma técnica de alta 
sensibilidade e espeficificidade (GUY, 2004; BRINKMAN, 2006; VERWEIJ, 2003; 
MUNDIM, 2003). MÜLLER & STERLING (2007) demonstraram que a técnica de nested-
PCR também possui alta sensibilidade e especificidade. 
Em ensaios imunoenzimáticos com o teste ColorPac para Giardia/ Cryptosporidium 
ensaio rápido (Beckton and Dickinson, Sparks) e ProspecT para Giardia/Cryptosporidium 
ensaio em microplaca para detecção de Giardia e Cryptosporidium (Alexon-Trend, Ramsey) 
nas fezes, foram encontrados 98,7% e 98,1% de especificidade respectivamente e 100% de 
sensibilidade nos dois testes, no entanto foram encontrado 3 resultados falso positivos no 
teste ProspecT para Giardia e Cryptosporidium e no Colorpac 1 resultado falso positivo para 
Cryptosporidium, porém ainda não foram esclarecidos os motivos (KATANIK et al., 2001). 
O uso de ensaio em microplaca ProspecT mostra-se ser um excelente método devido a sua 
alta sensibilidade e especificidade e ao rapidez no resultado, podendo chegar a 90% de 
sensibilidade e 98,3% (MACHADO, 2000). A ocorrência de falsos positivos com o teste 
ColorPac resultou na retirada desses testes do mercado pelo fabricante (GUY, 2004). 
 
 16
 
Figura 4. Cisto de Giardia sp. corado com iodo. Fonte: 
www.dpd.cdc.gov/.../body_Giardiasis_il1.htm 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Figura 5. Canine SNAP Giardia. Fonte: www.vsi.co.rs/.../tehnologija 
http://www.dpd.cdc.gov/dpdx/hTML/ImageLibrary/G-L/Giardiasis/body_Giardiasis_il1.htm�
http://www.vsi.co.rs/.../tehnologija�
 17
2.11 Tratamento 
O tratamento mais usado para a giardíase em caninos são o metronidazol, 
fenbendazole e febantel. Algumas cepas de Giardia isolada de humanos apresentam 
resistência ao metronidazol. O fenbendazole é menos eficaz do que o metronidazol. O 
albendazol possui efeito giardicida, porém causa problemas na medula óssea (ANDERSON, 
2004). Em gatos o uso do albendazol causou neutropenia (SCORZA, 2004). A associação de 
praziquantel, palmoato de pirantel e febantel possui efeito giardicida em cães. O febantel 
após metabolizado forma uma série de metabólitos, dentre eles o fenbendazole, que possui 
efeito contra o flagelado (ANDERSON, 2004). 
O uso de metronidazol na dose de 15 a 25 mg/kg, por via oral, BID por 5 a 7 dias e 
fenbendazole na dose de 50 mg/kg via oral, diariamente por 3 a 5 dias é usado 
frequentemente em gatos. Vômito, inapetência, toxicidade nervosa central, podem ocorrer 
com o tratamento com o metronidazol, porém a toxicidade nervosa só ocorre em tratamentos 
prolongados e em doses muito elevadas (SCORZA, 2004). Nitazoxanida (NTZ) é um anti-
helmíntico veterinário conhecido pela sua ação contra Giardia lamblia, Entamoeba 
histolytica, Cryptosporidium parvum e pelo seu efeito em bactérias anaeróbias que infectam 
tanto homens quanto animais. Também demonstrou atividade in vitro contra Neospora 
caninum. Esta droga é utilizada frequentemente nos EUA para tratamento de 
mieloencefalopatia equina causada por Sarcocystis neurona e o tratamento de diarréia 
crônica causada por Giardia lamblia e Cryptosporidium parvum (SCORZA & LAPPIN, 
2003). 
 Devido ao uso popular de plantas no tratamento das parasitoses intestinais, 
especialmente a giardíase, efeitos colaterais de drogas e ao aumento da resistência dos 
parasitos aos fármacos comumente utilizados, foi realizada uma investigação de produtos 
 18
naturais que tivessem propriedade giardicida e quais as possibilidades de terapias. Foi 
constatado nesse estudo que as espécies advindas das famílias Asteraceae, Fabaceae, 
Rutaceae e Verbenaceae possuem atividade giardicida (AMARAL, et al., 2006). 
Spelmann (1985) realizou um estudo para analisar a eficácia do uso de tinidazol e 
metronidazol no tratamento de giardíase em humanos. A dose de tinidazol usada foi de 50 
mg/kg chegando ao máximo de 2 g por paciente tratado. A dose de metronidazol utilizada foi 
de 60 mg/kg chegando ao máximo de 2,4 g por paciente. Os pacientes tratados com tinidazol 
tiveram uma eficácia de 94 % e com metronidazol de 56 %. 
Segundo GARDNER & HILL (2001), secnidazol pode ser usado no tratamento para 
giardíase, podendo ser usado da mesma forma que o tinidazol, em dose única. A dose 
utilizada em humanos é de 2 g por paciente ou 30 mg/kg em crianças, sendo comprovado 
uma eficácia de 85% quando utilizado dessa forma em adultos e em crianças apresenta o 
mesmo efeito do uso de 7 a 10 dias de metronidazol. O uso de secnidazol pode levar ao 
aparecimento de distúrbios gastrointestinais, porém desaparecem quando suspenso o 
tratamento. 
2.12 Profilaxia 
 O melhor meio de contaminação de Giardia spp. é através de água e alimentos 
contendo cistos. O uso de água filtrada, fervida e a desinfecção de áreas contaminadas 
diminuem a possibilidade de infecção por esse flagelado e outros parasitas gastrintestinais 
(SCORZA, 2004). No Brasil é encontrada para venda uma vacina chamada Giardia Vax que 
auxilia na eliminação dos cistos, diminuindo a contaminação do ambiente, diminui o potencial 
zoonótico da doença e garante imunidade por um ano (FORT DODGE, 2001). 
 19
 O uso de vacina para Giardia spp. induz uma resposta imune específica em filhotes 
com uma rápida eliminação dos trofozoítos, mesmo que esteja com alto grau de 
contaminação, passando a ser uma forma de controlar os animais doentes e impedir a 
contaminação de animais sadios (OLSON, MORCK.; CERI, 1996). 
 A vacina reduz o número cistos e previne os sinais clínicos de giardíase em cães, foi 
licenciada no Canadá e consiste de trofozoítos inativados quimicamente. Essa vacina só 
deveria ser usada em casos de giardíase crônica em cães, ou quando o tratamento realizado 
não obtém sucesso (ANDERSON, 2004). O efeito da vacinação em felinos é desconhecido e 
não se sabe ainda se ela protege efetivamente os felinos de Giardia sp. 
 20
3 CONCLUSÃO 
A Giardia é um parasito de extrema importância em saúde pública, devido ao seu alto 
poder zoonótico. O uso de água filtrada e/ou fervida, tanto para uso humano quanto para 
animais domésticos, diminui a possibilidade de contaminação, principalmente em crianças. 
Deve-se escolher o exame de melhorsensibilidade e especificidade para diagnosticar 
giardíase, tanto em humanos quanto em animais. Nem sempre a técnica de maior 
sensibilidade é a de maior especificidade ou vice-versa, devendo se escolher a de maior 
facilidade de realização, de acordo com as condições financeiras do proprietário e o intuito 
desse diagnóstico. Análises extremamente específicas e sensíveis ainda não são viáveis para 
rotina clínica de algumas regiões, devido ao elevado custo. 
O uso de soluções de flutuação produzidas inadequadamente ou análise da lâmina num 
tempo posterior a 10 minutos após o seu processamento pode levar a distorção dos cistos de 
Giardia sp., levando a diagnósticos errôneos. A solução da técnica de flutuação com sulfato 
de zinco a 33% deve ser confeccionada usando um hidrômetro para se obter uma densidade 
específica entre 1,18 e 1,21. Mesmo com tantas técnicas mais modernas, extremamente 
específicas e sensíveis, esta continua sendo a melhor opção, devendo ser realizado o exame 
de três amostras para aumentar a sensibilidade em até 96%. 
É um gênero que apesar das evoluções em diagnóstico, necessita ainda muitos estudos 
para realizar a sua classificação genética. 
A vacinação dos cães também é um fator a se considerar para diminuir o grau de 
infecção em animais e há a necessidade de estudos para avaliar o seu potencial em outras 
espécies animais. 
 21
REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS 
AMARAL, Flávia M. M.; et al. Planta e constituintes químicos com atividade giardicida. 
Ver. Brás. Farmacogn. V. 16 suppl.0 João Pessoa Dez. 2006. 
ANDERSON, Kirten A., et. al. Impact of Giardia vaccination on asymptomatic Giardia 
infections in dogs at a research facility. Canadian Veterinary Journal. V.45(11), p.924-930. 
Nov, 2004. 
ANJOS, Karla Graziela Santana. Estresse oxidativo como ferramenta na terapia contra a 
giardíase. Acessado em: www.biologia.ufba.br/Monografia_2005/estresse_oxidativo_2005_2.pdf - 
em 29/05/2009. 
BECK, Cristiane, et al. Freqüência da infecção por Giardia lamblia (Kunstler 1882) em 
cães (canis familiares) avaliada pelo método de Faust (1939) e pela coloração de Auramina, 
no município de Canoas, RS, Brasil. Ciência Rural, Santa Maria, v. 35, n.1. Acessado em: 
www.scielo.br em 19/05/2009. 
BRINKMAN, M.; et al. Diagnosis of Giardia lamblia with microscopy, striptest, ELISA 
and real-time PCR.. Acessado em: http://registration.akm.ch/eccmid2006/posterpdf/856.pdf 
em 25/05/2009DRYDEN, M. W.; PAYNE, P.A.; SMITH, V. Accurate diagnosos of 
Giardia spp and Proper Fecal Examination Procedures. Veterinary Therapeutics. v. 7, n.1, p. 
4-14. 2006. 
FLANAGAN, PA. Giardia—diagnosis, clinical course and epidemiology. A review. 
Epidemiol Infect. V.109 n. 1. P. 1-22. Aug. 1992. 
http://www.biologia.ufba.br/Monografia_2005/estresse_oxidativo_2005_2.pdf - em 29/05/2009�
http://www.biologia.ufba.br/Monografia_2005/estresse_oxidativo_2005_2.pdf - em 29/05/2009�
http://www.scielo.br/�
http://registration.akm.ch/eccmid2006/posterpdf/856.pdf em 25/05/2009�
http://registration.akm.ch/eccmid2006/posterpdf/856.pdf em 25/05/2009�
 22
FRANCIS, J.; Barrett, S. P.; Chiodini, P. L. Best practice guidelines for the examination 
of specimens for the diagnosis of parasitic infections in routine diagnostic laboratories. 
Journal of Clinical Pathology. V. 56(12), p.888-891. Dec. 2003. 
FORT DODGE, saúde animal. Acessado em: 
http://www.fortdodge.com.br/pets/giardiavax/giardiav/reveland.html 
GARCIA, J. G. D.; Simões, M.J. S.; Alvarenga, V.L.S. Avaliação de diferentes métodos 
no diagnóstico laboratorial de Giardia lamblia. Rev. Ciênc. Farm. Básica Apl. v. 27, n. 3, p. 
253-258, 2006. 
GOKA, AK., Roíston DD., Mathan VI, Farthing MJ. Diagnosis of giardiasis by specific 
IgM antibody enzyme-linked immunoabsorbent assay. Lancet. v.2 n. 8500 p. 184-186. Jul. 
1986. 
GONZÁLEZ, Félix H. Diaz; Silva, Sérgio Ceroni. Patologia Clínica Veterinária: texto 
introdutório. p. 8-13. Porto Alegre: Universidade Federal do Rio Grande do Sul, 2008 
Giardiose. Acessado em: HTTP://pt.wikipédia.org/wiki/giardiose em 26/05/2009 
GUIMARÃES, Semiramis; Sogayar, Maria Inês Leme; FRANCO, Marcello F. Giardia 
duodenalis: INTER-STRAIN VARIABILITY OF PROTEINS, ANTIGENS, PROTEASES, 
ISOENZYMES AND NUCLEIC ACIDS. Rev. Inst. Med. S. Paulo. v. 41 n.1 São Paulo 
Jan./Feb. 1999 
GUY, Rebecca A.; Xiao, Chongxie; Horgen, Paul A. Real-time PCR assay for Detection 
and Genotype differentiation of Giardia lamblia in Stool Specimens. Journal of Clinical 
Microbiology, v.42, n. 7. p. 3317-3320. Canada. Jul. 2004 
http://pt.wikipédia.org/wiki/giardiose�
 23
HELLER, Léo; et AL. Oocistos de Cryptosporidium e cistos de Giardia: circulação no 
ambiente e riscos à saúde humana. Epidemiol. Serv. Saúde v. 13. n.2. Brasília. Jun. 2004. 
HUBER, Francisca; Bonfim, Teresa C.; Gomes, Raquel S. Comparação da eficiência da 
técnica de sedimentação pelo formaldeído-éter e da técnica de centrífugo- flutuação 
modificada na detecção de cistos de Giardia sp. e oocistos de Cryptosporidium sp. em 
amostras fecais de bezerros. Revista Brasileira de Parasitologia. v.12, n.2, p 135-137, 2003. 
KATANIK, M. T.; et. al. Evaluation of ColorPAC Giardia/cryptoposridium Rapid Assay 
and ProspecT Giardia/Cryptosporidium Microplate Assay for detection of Giardia and 
Cryptosporidium in fecal specimens. Journal of Clinical Microbiology. V. 39 n. 12. P-4523-
4525. Dec. 2001 
MACHADO, Ricardo Luiz Dantas, et al. Comparação de quatro métodos laboratoriais para 
diagnóstico da Giardia lamblia em fezes de crianças residentes em Belém, Pará. 2000. 
Acessado em: www.scielo.br/pdf/rsbmt/v34n1/4324.pdf em 25/05/2009. 
MILLER, Kathryn M.; Sterling, Charles R. Sensivity of Nested PCR in the Detection of 
Low Numbers of Giardia lamblia cysts. Applied and Environmental Microbiology, v.73, n. 
18. P. 5949-5950. Sep. 2007. 
MINVIELLE, Marta C.; et al; First genotyping of Giardia lamblia from human and animal 
feces in Argentina, South America. Mem. Inst. Oswaldo Cruz v. 103 n. 1 Rio de Janeiro. Feb. 
2008 
MISKA , K. B. et al. Detection virus detection in Giardia. J Parasitol. 2009 Mar 25:1. 
http://www.scielo.br/pdf/rsbmt/v34n1/4324.pdf�
javascript:AL_get(this, 'jour', 'J Parasitol.');�
 24
MÜLLER, Joachim; et al. A novel Giardia lamblia Nitroreductase, GINR1, Interacts with 
Nitazoxanide and other Thiazolides. Antimicrobial Agentes and Chemotherapy. v. 51. n. 6. p. 
1979-1986. Jun. 2007. 
MUNDIM, M.J.S.;et. AL. Frequência de Giardia spp. por duas técnicas de diagnóstico em 
fezes de cães. Arq. Bras. Med. Vet. Zootec. V. 55. N.6 Belo Horizonte Dez. 2003. 
Nested-PCR. V.40, n.2. Uberaba. Mar./Apr. 2007. Ver Soc Bras Med Trop v. 40 n. 2. 
Uberaba. Mar./Apr. 2007. Acessado em: www.scielo.br/cgi-bin/fbpe/fbtext?pid=S0037-
86822007000200013 em 26/05/2009. 
OLSON, M. E.; Morck, D. W.; Ceri, H. The efficacy of Giardia lamblia vaccine in kittens. 
Can. J. Vet. Res. v. 60. n.4. p. 249-256. Canada. Oct. 1996. 
OVERGAAUW. Paul A. M.; et al. Zoonotic parasites in fecal samples and fur from dogs 
and cats in The Netherlands. Acessado em www.sciencedirect.com em 25/05/2009. 
SCORZA, Valeria. Feline giardiasis. Suppl Compend Contin Educ Pract Vet v. 26, n. 6(A), 
2004. 
SCORZA, Andrea V.; Lappin, Michael R. Metronidazole for the treatment of feline 
giardiasis. Journal of Feline Medicine & Surgery. v.6 n. 3. P. 157-160. June 2004. 
SOUZA, Doris Sobral Marques; et. al. Comparação entre imuno-separação, acoplada à 
imunofluorescência, e as técnicas de Faust et al. E de Lutz para o diagnóstico de cistos de 
Giardia lamblia em fezes humanas. Ver. Inst. Med. Trop. S. Paulo v. 45, n. 6, São Paulo. 
Nov./Dez. 2003. 
http://www.sciencedirect.com/�
 25
SOUZA, Silvio Luis Pereira. Caracterização genética de isolados de Giardia spp. 
provenientes de amostras fecais de origem humana e animal. Acessado em 
HTTP://www.teses.usp.br/teses/disponiveis/10/10134/tde-17052007-145523/ em 27/05/2009. 
SCHUURMAN T.; et al.Comparison of microscopy, real-time PCR and a rapid 
immunoassay for the detection of Giardia lamblia in human stool specimens. Acessado em : 
http//cat.inest.fr em 25/05/2009. 
SOUZA, Sara Zardini; et al. Determinação da prevalência de Giardia sp. e estudo 
comparativo de duas técnicas de diagnóstico, utilizando-se fezes de cães procedentes de canis 
de Uberlândia- Minas Gerais. Monografia de Graduação. Acessada em: 
www.prpp.ufu.br/revistaeletronica/vida2003/determinação em 19/05/2009. 
SPELMANN, P. Single – dose tinidazole for the treatment of giardiasis. Antimicrob. 
Agents Chemother. v.27 n. 2 p. 227–229. Feb. 1985. 
TEODOROVIC, S.; Braverman, John M.; Elmendorf, Heidi G. Unusualluy low levels of 
Genetic Variation among Giardia lamblia isolates. Eukaryotic Cell, v. 6. n. 8. P. 1421-1430. 
Aug. 2007. 
GARDNER, Timothy B.; Hill, David. Treatment of Giardiasis. Clin Microbiol Rev. v. 14 n. 
1 p. 114-128. Jan. 2001. 
VERWEIJ, Jaco J.; et al. Real-time PCR for the detection of Giardia lamblia. Acessado em 
www.sciencedirect.com em 25/05/2009. 
VIDAL, Alaíde Mader Braga; Catapani, Wilson Roberto. O método imunoenzimático 
ELISA versus microscopia: vantagens e desvantagens no diagnóstico de giardíase. São Paulo 
Med. J. v. 123, n.6, São Paulo. Nov./Dez. 2005. 
http://www.teses.usp.br/teses/disponiveis/10/10134/tde-17052007-145523/�
http://www.prpp.ufu.br/revistaeletronica/vida2003/determinação em 19/05/2009�
http://www.sciencedirect.com/�
 26
WINKWORTH, Cynthia L.; et al. Molecular characterization of Giardia Isolates from 
calves and humans in a region in which dairy farming has recently intensified. Appl Environ 
Microbiol. v. 74. n. 16. P. 5100-5105. Aug. 2008. 
 TROUT, James M.; Santín, Mônica; Fayer, Ronald. Detection of Assemblages A, 
Giardia duodenalis and Eimeria spp. In alpacas on two Maryland farms. Acessado em: 
http://www.ars.usda.gov.research/publications/Publications.htm?seq_no_115=218244 em 
27/05/2009. 
TROUT, James. Et AL. Prevalence and Genotypes of Giardia duodenalis in 1-2 year-
old. Acessado em: http://www.sciencedirect.com/science?_ob=ArticleURL&_udi=B6TD7-
4JVSWWV-
&_user=10&_rdoc=1&_fmt=&_orig=search&_sort=d&view=c&_acct=C000050221&_versi
on=1&_urlVersion=0&_userid=10&md5=23c336b74685fe869122786571908fd3 
http://www.ars.usda.gov.research/publications/Publications.htm?seq_no_115=218244�
http://www.sciencedirect.com/science?_ob=ArticleURL&_udi=B6TD7-4JVSWWV-&_user=10&_rdoc=1&_fmt=&_orig=search&_sort=d&view=c&_acct=C000050221&_version=1&_urlVersion=0&_userid=10&md5=23c336b74685fe869122786571908fd3�
http://www.sciencedirect.com/science?_ob=ArticleURL&_udi=B6TD7-4JVSWWV-&_user=10&_rdoc=1&_fmt=&_orig=search&_sort=d&view=c&_acct=C000050221&_version=1&_urlVersion=0&_userid=10&md5=23c336b74685fe869122786571908fd3�
http://www.sciencedirect.com/science?_ob=ArticleURL&_udi=B6TD7-4JVSWWV-&_user=10&_rdoc=1&_fmt=&_orig=search&_sort=d&view=c&_acct=C000050221&_version=1&_urlVersion=0&_userid=10&md5=23c336b74685fe869122786571908fd3�
http://www.sciencedirect.com/science?_ob=ArticleURL&_udi=B6TD7-4JVSWWV-&_user=10&_rdoc=1&_fmt=&_orig=search&_sort=d&view=c&_acct=C000050221&_version=1&_urlVersion=0&_userid=10&md5=23c336b74685fe869122786571908fd3�