Controle_Cultural_de_Doenas_de_Plantas

•

UFRRJ

Victor Ribeiro

14/11/2022

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Controle Cultural de
Doenças de Plantas
HELENA GUGLIELMI MONTANO,
FITOPATOLOGIA ESPECIAL - 2021.3 NÃO
AUTORIZO DIVULGAÇÃO DE SLIDES OU
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Qual o principal objetivo prático da Fitopatologia?

CONTROLAR AS DOENÇAS DE PLANTAS
HELENA GUGLIELMI MONTANO,
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AUTORIZO DIVULGAÇÃO DE SLIDES OU
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A Fitopatologia Geral está em dia?
Características dos Patógenos?
• Xanthomonas citri subsp. citri
• ‘Candidatus Liberibacter sp.’
• Puccinia graminis f. sp. tritici
• Phakopsora pachyrizi

Estruturas dos patógenos?
Escleródio/esclerócio
Clamidosporo

Doenças?
• Cancro cítrico
• Huanglongbing (greening)
• Ferrugem do colmo do trigo
• Ferrugem asiática da soja

Conceitos?
Sobrevivência e disseminação
Inóculo
Hospedeiro alternativo
Hospedeiro alternado ou intermediário
HELENA GUGLIELMI MONTANO, UFRRJ,
DEnF, Fitopatologia Especial (IB238) 2021.3
- NÃO AUTORIZO DIVULGAÇÃO DE SLIDES
ou GRAVAÇÃO NA INTERNET
Princípios de Controle de
Doenças
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Princípios de Controle de Doenças

Exclusão
Erradicação
Proteção
Imunização
Terapia
Regulação
Evasão ou escape

» Whetzel et al.,1925 e Whezel, 1929 + Marchionatto (1949) (Manual de Fitopatologia,
Volume I)

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Controle de Doenças
PRINCÍPIOS DE
CONTROLE
Exclusão
Erradicação
Proteção
Imunização
Terapia
Regulação
Evasão ou escape

MODALIDADES DE
CONTROLE DE
DOENÇAS
Controle cultural
Controle físico
Controle biológico
Controle genético
Controle químico

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Controle Cultural

Consiste na utilização de práticas
culturais, preferencialmente combinadas,
como contribuição para minimizar o efeito
de doenças sobre a produção de plantas
cultivadas.

Fonte: Bedendo et al. Cap 17, Controle cultural, físico e biológico de doenças de plantas,
Manual de Fitopatologia, Vol 1, 4ª edição, 2011.
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CARACTERÍSTICAS DE PRÁTICAS
DE CONTROLE CULTURAL
• Adoção envolve pouco ou nenhum custo (em alguns
casos são as práticas que podem ser adotadas por
pequenos produtores);
• Geralmente provocam pouco ou nenhuma
consequência ambiental indesejável;
• O controle cultural objetiva a prevenção ou redução
do surgimento de doenças;
• A adoção das práticas de controle cultural são
frequentemente específicas ao patógeno e à região.

W. Bajwa & M. Kogan , 2004. Cultural practices: springboard to IPM. CAB International 2004. In: International
Pest Management: Potential Constraints and Challenges..
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Controle cultural
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Princípios que fundamentam
o controle cultural
SÃO TRÊS PRINCÍPIOS:
a) supressão do aumento e/ou a destruição do
inóculo existente;
b) escape das culturas ao ataque potencial do
patógeno;
c) regulação do crescimento da planta direcionado
à menor suscetibilidade.

Erlei M. Reis, Ricardo T. Casa & Laércio L. Hoffmann, 2005. Controle Cultural de Doenças Radiculares. Michereff, S. J.,
Andrade, D.E.G.T. & Menezes, M. (Eds.) Ecologia e Manejo de Patógenos Radiculares em Solos Tropicais 2005. Recife,
UFRPE.
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Controle cultural

Em quais processos do CRPH atuam as
práticas culturais?

i. SOBREVIVÊNCIA DO INÓCULO
ii. PRODUÇÃO e DISSEMINAÇÃO DO
INÓCULO
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Vale a pena lembrar que os princípios de controle de
Whetzel atuam em fases do CRPH....
Exclusão
Proteção
Erradicação
I
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Modalidades de Parasitismo

Quais são elas?
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Revisando as modalidades de parasitismo.....
PARASITAS OBRIGATÓRIOS: vírus, viroides, molicutes,
algumas bactérias, nematoides, protozoários, e fungos
causadores de oídios, míldios, ferrugens são biotróficos
(necessitam do hospedeiro vivo) (Agrios, 2005)

PARASITAS FACULTATIVOS ( = HEMIBIOTRÓFICOS)
a maioria dos fungos e das bactérias podem viver tanto em
células vivas ou restos culturais (e em meio nutritivo);
alguns passam a maior parte do ciclo de vida como
parasitas, mas sob algumas condições podem viver
saprofiticamente em matéria organica em decomposição
(segundo Agrios (2005) são saprófitas facultativos)
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Revisando as modalidades de parasitismo.....

• PARASITAS NECROTRÓFICOS: patógenos que vivem
na maior parte do tempo em matéria orgânica em
decomposição, mas que sob algumas circunstâncias
podem atacar plantas vivas, exercendo parasitismo.
Exemplos: fungos dos gêneros Sclerotinia e,
Penicillium, Aspergillus, Rhizopus, esses três últimos
causadores de podridões pós-colheita.

Fonte: G. Agrios, 2005. Plant Pathology/
Manual de Fitopatologia Vol 1, 2011

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Podridão de Rhizopus – Bernardo Ueno
CONTROLE CULTURAL

MEDIDAS DE CONTROLE

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Medidas de controle cultural
• De um modo geral, pode-se considerar que as
medidas de controle cultural visam evitar a
doença ou suprimir o agente causal,
objetivando, portanto, a obtenção de plantas
sadias mais do que controlar o agente causal.

• Erlei M. Reis, Ricardo T. Casa & Laércio L. Hoffmann, 2005. Controle Cultural de Doenças Radiculares. Michereff, S. J.,
Andrade, D.E.G.T. & Menezes, M. (Eds.)Ecologia e Manejo de Patógenos Radiculares em Solos Tropicais 2005. Recife,
UFRPE.

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MEDIDAS DE CONTROLE
 Uso de material propagativo sadio: sementes, elementos (órgãos) de
propagação vegetativa e mudas sadias;
 Plantio em áreas livres do patógeno e uso de substrato isento;
 Eliminação de plantas ou partes vegetais infectadas (doentes) –
erradicação; roguing; podas;
 Eliminação de hospedeiros alternativos ou de plantas voluntárias (plantas
guaxas ou tigueras);
 Uso de barreiras físicas;
 Alteração na época de plantio e redução da densidade de plantas;
 Desinfestação de ferramentas, implementos, bandejas, veículos...;
 Eliminação de restos de cultura e incorporação de matéria orgânica no
solo;
 Aração profunda;
 Rotação de culturas

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Uso de Material Propagativo Sadio

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Uso de Material Propagativo Sadio

“A utilização de material de plantio livre de
pragas e doenças deve ser o primeiro passo no
estabelecimento de novas lavouras (ou
pomares), sendo esse, aliás, um dos requisitos
para o sucesso de qualquer sistema de cultivo
agrícola”.

Fernanda Rausch Fernandes & Mirtes Freitas Lima, pdf sem data. A importância do uso de materiais de propagação vegetativa
de alta qualidade fitossanitária (livres de vírus): estudos de caso sobre alho, batata e batata-doce.
https://www.alice.cnptia.embrapa.br/alice/bitstream/doc/1086238/1/Sustentabilidadeehorticultura162202.pdf
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Uso de Material Propagativo Sadio

 Sementes, mudas e elementos (órgãos) de
propagação vegetativa de padrão fitossanitário
confiável, procedência conhecida e de fonte
idônea.
– Em áreas novas de plantio; ausência do
patógeno.

Se não for observado o uso de material propagativo sadio, pode
haver a inviabilização do investimento, danos e perdas.
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É importante conhecer os patógenos que são transmitidos por
material propagativo infectado.

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‘Candidatus Liberibacter asiaticus’
M. B da Silva & L. Zambolim, 2014. Controle cultural de doenças de plantas. Cap 9. P. 267 -300. In: O essencial da
Fitopatologia: controle de doenças de plantas. L. Zambolim et al, editores. UFV, 2014

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Fonte: grupocultivar.com.br
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Fonte: Ademir A. Henning, 2005
Patologia e tratamento de sementes:
noções gerais. Doc. 264. Embrapa Soja
PATÓGENOS
CAUSADORES DE
DOENÇA EM
SOJA,
ASSOCIADOS
COM SEMENTES
= nº 3, na tabela

Uso de material propagativo sadio
Sementes e mudas certificadas

Uso de batata-semente certificada
Exemplo da murcha bacteriana das solanáceas,
causada por Ralstonia solanacearum
Fonte: Lopes & Quezado-Soares, 1997
Manual de Fitopatologia, Vol. 2
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Murcha bacteriana das solanáceas

Romeiro, 1995
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Ralstonia solanacearum

Uso de Material Propagativo Sadio

– Uso de mudas provenientes de viveiros idôneos;
mudas certificadas de citros, de café.

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https://blog.aegro.com.br/producao-de-mudas-citricas/
Uso de material sadio
“Cadastro da produção de mudas de citros”
Serviço amparado na exigência do Decreto 45.211, de 19/09/2000, no
qual são coletados dados sobre a produção de mudas e o atendimento das
exigências legais quanto a sanidade para Certificação de Conformidade
Fitossanitária. Regulamentado por meio da Portaria CDA 17, de 05/04/2018.

“Vigilância fitossanitária da produção de materiais de propagação
de cafeeiro” - Descriçao Sumária do Programa
A Coordenadoria de Defesa Agropecuária (CDA) é o órgão responsável da produção de
materiais de propagação de café, em atendimento às determinações fitossanitárias
impostas pelo Decreto nº 45.211 de 19/09/2000 e Resolução SAA 49, de 23/10/2018.
Essa legislação estabelece que os viveiros de produção de materiais de propagação de
café, bem como sua produção, e os locais que armazenamento das mudas (depósitos)
deverão estar cadastrados na Coordenadoria de Defesa Agropecuária - CDA e estar em
conformidade com as normas fitossanitárias.

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Plantio em áreas livres do patógeno e,
Substrato isento

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Plantio em áreas livres do patógeno

 Vírus da mancha anelar e da meleira do mamoeiro

 Segundo o “Plano estratégico para a cultura do
mamoeiro: 2017-2021” (Embrapa Mandioca e
Fruticultura, 2019) as medidas utilizadas no controle da
meleira (causada pelo Papaya meleira virus, PMeV) e
da mancha anelar (causada pelo Papaya ringspot virus,
PRSV-P), duas viroses do mamoeiro, consistem nas
medidas de evasão (plantio em áreas sem
ocorrência) e erradicação (eliminação de plantas
sintomáticas)”.

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Substrato isento

“O tratamento sanitário de substratos é uma
operação importante no processo de produção de
mudas e no cultivo de plantas em vasos ou outros
recipientes. O processo visa eliminar
organismos causadores de doenças que
podem provocar a morte das mudas e/ou servir
como fonte de inóculo para disseminação de
patógenos durante o transplante”
SILVA, J.B.C.; OLIVEIRA-NAPOLEÃO, I.T.; FALCÃO, L.L. Desinfestação de substratos para produção de mudas,
utilizando vapor de água. Horticultura Brasileira, Brasília, v. 19, n. 2, p. 155-158 julho 2.001
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Substrato isento
• Substrato isento é importante:
 Em sementeiras: pois pode ocorrer tombamento ou
outras doenças devido patógenos dos genêros Pythium,
Rhizoctonia, Phytophthora e Fusarium.
 Na produção de mudas: perda do valor comercial
das plantas.

ATENÇÃO: mesmo empregando substratos idôneos,
propágulos de patógenos podem atingi-los via água de
irrigação, ventos e até por sementes infectadas.
M. B da Silva & L. Zambolim, 2014. Controle cultural de doenças de plantas. Cap 9. P. 267 -300. In: O essencial
da Fitopatologia: controle de doenças de plantas. L. Zambolim et al, editores. UFV, 2014
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Eliminação de plantas e
partes de plantas
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Eliminação de plantas
Erradicação do hospedeiro

Realizada sob a condução de agências públicas
de defesa fitossanitária;
A erradicação de doenças somente é
tecnicamente possível nas seguintes condições:
 Patógenos de restrito círculo de hospedeiros;
 Patógenos de baixa capacidade de disseminação;
 Patógenos de difícil sobrevivência no solo;
 Intervenção rápida e efetiva do Estado na
destruição das plantas doentes.

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Eliminação de plantas
Erradicação do hospedeiro

Adotado para controle do cancro cítrico -
causado por Xanthomonas citri subsp. citri
(disseminada por chuva+vento (aerosol) a curtas
distâncias).

1957 : Remoção e destruição (queima) de plantas
sintomáticas e não sintomáticas vizinhas ao foco.

Até 2016: Praticada em pomares comerciais ou não
comerciais e plantios de fundo de quintal, em SP.

Fonte: Cenargen, CT 86, 2003
Amorim & Bergamin Fº, 1999
Fundecitrus, 2005
Rossetti, 2001

HELENA GUGLIELMI
MONTANO,
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Erradicação
Prof. HELENA GUGLIELMI MONTANO,
UFRRJ, FITOPATOLOGIA GERAL, NÃO
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Agência de Defesa Agropecuária do Estado do Ceará (Adagri) em Limoeiro do Norte, no Vale do
Jaguaribe- erradicação de focos de Cancro Cítrico, em 2017

Eliminação de plantas
Erradicação do hospedeiro

Controle do huanglongbing/greening dos citros
 “De acordo com a Instrução Normativa nº 53, publicada pelo
Ministério da Agricultura em outubro de 2008, o produtor deve
inspecionar e eliminar as plantas com greening. As inspeções
devem ser feitas pelo menos a cada três meses e os resultados
encaminhados à Secretaria de Agricultura e Abastecimento do
Estado por meio de relatórios semestrais. Talhões com incidência
superior a 28% de plantas com sintomas devem ser totalmente
eliminados.
.
A eliminação das plantas é obrigatória por lei. A multa para o citricultor que não as
elimina varia de 501 a 3.500 UFESPs (o valor da UFESP em 2018 é de R$ 25,07).

Fonte: Fundecitrus, https://www.fundecitrus.com.br/doencas/greening
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EUA, início do século XX

PROGRAMA DE ERRADICAÇÃO de Berberis vulgaris,
hospedeiro alternado ou intermediário
de Puccinia graminis f. sp. tritici, agente causal da
ferrugem do colmo do trigo. O programa foi lançado
em 1918 e perdurou até 1975.
CICLO DA
FERRUGEM DO
COLMO DO TRIGO
FONTE:
apsnet.org/edcenter

Eliminação de plantas
“Roguing”

Consiste na eliminação de plantas vivas
doentes no campo ou em casa-de-vegetação;

“O ‘roguing’ terá maior chance de sucesso
para o controle de doenças cujo agente causal
infecta somente a espécie cultivada ou possui
uma restrita gama de hospedeiros”

Eliminação de plantas
“Roguing”

 Importante na cultura do mamão para o manejo
de viroses, principalmente o mosaico e a
meleira.

Instrução Normativa IDAF Nº 2 DE 24/04/2019
 Art. 1º Disciplinar os procedimentos para a inspeção fitossanitária
nos pomares de mamoeiro (Carica papaya L.), com o objetivo de
identificar e eliminar as plantas infectadas pelos vírus da
meleira (Papaya meleira virus - PMeV) e do mosaico ou mancha
anelar (Papaya ringspot virus - PRSV) no Estado do Espírito Santo.
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Monitoramento e eliminação de
mamoeiros com viroses – IDAF, ES
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Eliminação de partes vegetais
Eliminação de partes vegetais
Poda fitossanitária para remoção de “vassouras” em
cacaueiro, assim como de almofadas florais e frutos.
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Fotos de sintomas causados pelo fungo da
vassoura-de-bruxa do cacaueiro: retiradas
de SODRÉ, G. A. ed. 2017. Cultivo do
cacaueiro no estado da Bahia.
Ilhéus, BA, MAPA/Ceplac/Cepec. 126.

Eliminação de hospedeiros alternativos
ou de plantas voluntárias

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Eliminação de hospedeiros alternativos ou de plantas
voluntárias(= plantas guaxas ou tigueras)

Parasitas biotróficos* tem sua principal forma
de sobrevivência em plantas hospedeiras
alternativas.
*parasitas biotróficos: não apresentam fase saprofítica

Vazio sanitário da soja para controle da
ferrugem asiática da soja: eliminação de
plantas tigueras, havendo redução da fonte de
inóculo.

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VAZIO SANITÁRIO DA SOJA

 “O objetivo do vazio sanitário é manter o período de
entressafra sem plantas vivas de soja no campo,
para reduzir o inóculo do fungo Phakopsora
pachyrhizi. Esse período varia de 60 a 90 dias, de
acordo com cada estado que apresenta o período do
vazio sanitário regulamentado. Essa medida tem
retardado o início de epidemias e é importante que cada
produtor de soja continue aplicando essa medida,
rigorosamente, pois é fundamental para evitar maiores
prejuízos devido à ferrugem” (Margarida F. Ito. PRINCIPAIS DOENÇAS DA
CULTURA DA SOJA E MANEJO INTEGRADO. 1º ENCONTRO TÉCNICO SOBRE AS CULTURAS DA SOJA E
DO MILHO NO NOROESTE PAULISTA Nucleus, Edição Especial, 2013 )
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VAZIO SANITÁRIO DA SOJA
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Adoção de barreiras
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Barreira física

Telados a prova de
insetos vetores para
controle de viroses.
 empregados em
viveiros de mudas
cítricas; matrizes
fornecedoras de
borbulhas
protegidas por
telas, a campo.

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http://www.sdr.ba.gov.br/node/6636
Conjunto de plantas básicas e plantas matrizes
que fornecem borbulhas para o sistema de
produção de mudas do Estado de São Paulo -
http://oagronomico.iac.sp.gov.br/
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“Plantio de barreiras vegetais

O plantio de barreiras vegetais ao
redor da área de cultivo propicia o
isolamento da área contra insetos e
ácaros transmissores de viroses e
dificulta a disseminação de
patógenos por meio do vento.
As barreiras podem ser formadas com
o plantio de algumas gramíneas de
maior porte, como milho e sorgo,
cana-de-açúcar, mandioca,
bananeiras, capim-colonião, árvores e
arbustos”.

Fonte: Ricardo B. Pereira & Jadir B. Pinheiro.
2012. Manejo integrado de doenças em
hortaliças em cultivo orgânico. CT 111, Embrapa
Hortaliças.

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 Adoção de quebra-ventos em pomares cítricos para
controle do cancro cítrico:
 redução de ferimentos e redução da disseminação.

Época e densidade de plantio
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Época de Plantio

 Maior severidade de Puccinia polysora e Pantoea annanatis = semeaduras até
10/03.
 Exserohilum turcicum = semeadura após 10/03, maior intensidade
 Cercospora zeae-maydis = época de semeadura não demonstrou ter efetiva
influência.

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Cunha, B.A. da; Negreiros, M.M. de; Alves, K.A; Torres, J.P. Influência da época de semeadura na severidade
de doenças foliares e na produtividade do milho safrinha. Summa Phytopathologica, v.45, n.4, p.424-427, 2019.
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C,D = OUTUBRO
E,F = NOVEMBRO
G,H = JANEIRO
PARANÁ

Epidemias provocadas
pelo Tobacco streak virus
em soja.

Diferente comportamento em
função da época de plantio.

Epidemias mais severas no
plantio de primavera que no
plantio de verão.

Bedendo et al. Cap 17, Controle cultural, físico e biológico
de doenças de plantas, Manual de Fitopatologia, Vol 1, 4ª
edição, 2011.

A,B = OUTUBRO
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Análise de epidemias de podridão branca do alho (causada por Sclerotium cepivorum), em
diferentes épocas de plantio, e avaliaram as variáveis: dia do início da epidemia, incidência
final de doença e duração da epidemia.
Concluiu-se que, antecipando-se a época normal de plantio, março-abril, para fevereiro,
ocorreu atraso no início da epidemia, menor duração da epidemia e menor incidência
final. (Luiz A. Maffia & Eduardo S.G. Mizubuti, 2005. Epidemiologia de doenças radiculares. In: Michereff, S. J., Andrade,
D.E.G.T. & Menezes, M. (Eds.) Ecologia e Manejo de Patógenos Radiculares em Solos Tropicais 2005. Recife, UFRPE.)

Densidade de Plantio

“Em áreas com alta concentração de inóculo
de Sclerotium cepivorum no solo e condições
ambientais favoráveis ao patógeno, a adoção de
altas populações de cebola aumenta os danos
causados pela podridão branca”.

Fonte: Valter R. Oliveira et al,: 2019
Embrapa Hortaliças, ISSN 1677-2229 .
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Densidade de Plantio – o manejo da
densidade pode reduzir danos

 Mofo branco (ou podridão branca da haste) da soja, causada
por S. sclerotiorum:

 Maior severidade em espaçamentos menores entre linhas do
que em espaçamentos maiores.
 Recomendado pela pesquisa: uma densidade populacional de 25-
30 plantas/m2 .
 Em algumas lavouras comerciais: se tem encontrado populações
de até 80 plantas/m2.
 A ocorrência alta desta doença em soja pode estar relacionada
com a alta população de plantas. Desta maneira, os danos
causados poderiam ser reduzidos pelo manejo da densidade de
plantas.
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Desinfestação/Higienização
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Desinfestação/Higienização
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Foto: Warren E. Copes, Research
Plant Pathologist, USDA. Pacific Northwest
Plant Disease Management Handbook.
Printed
page.https://pnwhandbooks.org/node/22106
 Desinfestação de: ferramentas, calçados, mãos, veículos, caixaria e
sacaria, bancadas.
 Troca de vestimentas em instalações utilizadas para produção de
mudas certificadas.
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Manual de Cancro Cítrico, Fundecitrus - 2006
Arco Rodolúvio
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M. B da Silva & L. Zambolim, 2014. Controle cultural de doenças de plantas. Cap 9. P. 267 -300. In: O essencial da
Fitopatologia: controle de doenças de plantas. L. Zambolim et al, editores. UFV, 2014

Desinfestação/
higienização
Preparo convencional do solo

Eliminação de restos de cultura

Incorporação de matéria orgânica no
solo

Adição de material orgânica ao solo

Aração profunda
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Preparo convencional do solo
ELIMINAÇÃO DE RESTOS DE CULTURA
INCORPORAÇÃO DE MATÉRIA ORGÂNICA NO SOLO

Aração + gradagem: promovem o revolvimento
da camada superficial do solo (exposição à
radiação UV e à temperatura).
O material orgânico (restos de cultura ou
matéria orgânica) que pode favorecer a
sobrevivência de patógenos necrotróficos será
exposto à radiação solar e sofrerá o efeito da
temperatura redução do inóculo.
Efeitos da decomposição mais rápida e
atividade microbiana.
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“A destruição dos restos culturais do
algodoeiro após a colheita é uma prática
recomendada como medida profilática, de forma a
reduzir as populações de pragas (...). Esse
procedimento também é válido para as doenças
ramulose (Colletotrichum gossypii var.
cephalosporioides), mancha-angular (Xanthomonas
axonopodis pv. malvacearum) e doença-azul (Cotton
leafroll dwarf virus), que ocorrem na cultura do
algodoeiro e comprometem a produção e a
produtividade brasileira.”
“Essa prática em que o produtor precisa
destruir os restos culturais do algodoeiro – não só em
benefício próprio, mas também em benefício das lavouras
vizinhas – é uma prática obrigatória por lei. Existe, na
maioria dos estados brasileiros produtores de algodão,
legislação que regulamenta o cumprimento dessa prática.”
Autores: Valdinei Sofiatti ,
Odilon Reny Ribeiro Ferreira
da Silva, Edson Ricardo de
Andrade Júnior, Alexandre
Cunha de Barcellos Ferreira
Adição de matéria orgânica ao solo
 “Solos ricos em matéria orgânica (MO) tem capacidade de suportar
maior atividade microbiana, melhorar a estrutura do solo,
propiciando maior aeração e retenção de umidade. MO pode ainda
servir como fontes de micronutrientes, hormônios, substâncias de
sua decomposição, aminoácidos e outras. Esses compostos
químicos podem induzir a resistência do hospedeiro ou
controlar diretamente o patógeno” (Bettiol & Ghini, 2005)
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ARAÇÃO PROFUNDA
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“Para as doenças do amendoim causadas
por Rhizoctonia solani e para a murcha de
Sclerotium recomenda-se a modificação de
práticas culturais, como fazer aração profunda -
para incorporação dos restos de cultura ou sua
eliminação”.

Moraes de, S. A. Amendoim: Principais doenças, manejo integrado e recomendações de
controle. 2006. Artigo em Hypertexto. Disponível em:
<http://www.infobibos.com/Artigos/2006_2/amendoim/Index.htm>. Acesso em: 11/7/2006

Foto: Nelson Dias
Suassuna. Murcha de
Sclerotium rolfsii no
amendoim – à direita

Rotação de Culturas
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Rotação de culturas

 Conceitualmente, a rotação de culturas
consiste em alternar no tempo, o cultivo de
espécies vegetais numa determinada área,
preferencialmente com culturas que possuem
sistemas radiculares diferentes (gramíneas e
leguminosas, por exemplo) onde cada espécie
deixa um efeito residual positivo para o solo e para
a cultura sucessora.

Sergio Luiz Gonçalves et al., 2007. Rotação de Culturas. CT 45. Embrapa Soja.

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Rotação de Cultura – SOJA
• Soja em monocultura ou mesmo os sistemas de sucessão de
culturas de trigo e soja ou, milho safrinha após a soja, promovem,
ao longo do tempo, alterações negativas para o sistema produtivo
(degradação química, física e/ou biológica do solo).

• Esse tipo de condução contribui para a diminuição da produtividade,
além de incrementar as condições favoráveis para o surgimento de
doenças

• Havendo predomínio da monocultura da soja, torna-se necessária
rotação de cultura com outras espécies para beneficiar o sistema
produtivo.

Sergio Luiz Gonçalves et al., 2007. Rotação de Culturas. CT 45. Embrapa Soja.
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Rotação de Cultura – SINOPSE DA SEQUÊNCIA DE CULTURAS INDICADAS
PREFERENCIALMENTE EM RELAÇÃO À CULTURA PRINCIPAL, PARA COMPOR
SISTEMAS DE ROTAÇÃO COM A SOJA E TRIGO, NO PR.
Sergio Luiz Gonçalves et al., 2007. Rotação de Culturas. CT 45. Embrapa Soja.

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Rotação de culturas no controle de
doenças de plantas

 “A rotação de culturas (RC) é uma das
melhores e menos dispendiosas formas de se
erradicar certos patógenos, reduzindo custos
com uso de fungicidas, além de contribuir para a
fertilidade e facilitar o manejo do solo”.

M. B da Silva & L. Zambolim, 2014. Controle cultural de doenças de plantas. Cap 9. P. 267 -300. In: O essencial
da Fitopatologia: controle de doenças de plantas. L. Zambolim et al, editores. UFV, 2014

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Principais vantagens da rotação de
culturas no manejo de doenças
 Baixo custo;
 Promove a redução ou a erradicação de patógenos, com
possibilidade de ser facilmente integrada com outros métodos;
 Geralmente não provoca danos ao meio ambiente;
 Incrementa a produtividade e a qualidade dos produtos devido à
manutenção e melhoria das propriedades físicas, químicas e
biológicas do solo;
 Permite reduzir as perdas por erosão devido à presença constante
de cobertura vegetal;
 Promove a diversificação de renda da propriedade e aumento do
lucro para o produtor com melhor aproveitamento no uso da terra e
da mão de obra.

Valdir Lourenço Jr et al., 2016. Rotação e Sucessão de Culturas em Hortaliças Cultivadas em Pequenas Áreas no Manejo de Doenças. CT 152. Embrapa
Hortaliças.

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Rotação de culturas
 A RC reduz a densidade de inóculo através de dois mecanismos:
1- supressão do alimento: leva à competição microbiana e “inanição”
do fitopatógeno.
2- desenvolvimento da supressividade do solo, ou aumento da
atividade de microrganismos antagonistas no solo.

Reis, E.M.; Casa, R.T.; Bianchin, V. Controle de doenças de plantas pela rotação de culturas. Summa Phytopathologica,
v.37, n.3, p.85-91, 2011.

Supressividade? O fenômeno de alguns solos prevenirem naturalmente o
estabelecimento de patógenos ou inibirem as suas atividades patogênicas é
denominado supressividade e os solos com essas características,
denominados solos supressivos, oposto de solos conducentes. (W. Bettiol & R. Ghini, 2005
Solos supressivos. In :Michereff, S. J., Andrade, D.E.G.T. & Menezes, M. (Eds.) Ecologia e Manejo de Patógenos Radiculares em Solos
Tropicais.

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Rotação de Culturas
• Antes de falarmos sobre a rotação de
culturas (RC) no controle de doenças,
precisamos fazer considerações sobre o
sistema de plantio direto (SPD) e adoção
de monocultura, em relação às doenças
de plantas........
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Sistema de plantio direto
Benefícios
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Sistema de plantio direto
Doenças de plantas – como são favorecidas?
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Como o SPD pode favorecer o surgimento de
doenças?

 Todos os restos culturais são deixados sobre o solo.
 Na superfície do solo há menor competição
microbiana.
 Presença de condições favoráveis à multiplicação e a
sobrevivência de fitopatógenos necrotróficos* em
restos culturais: resíduos deixados na superfície do
solo decompõem-se mais lentamente do que ocorre no
plantio convencional.

*fitopatógenos necrotróficos = os agentes causais de manchas foliares, de
cancros, de podridões de colmo e da espiga e de podridões radiculares.

Reis, E.M.; Casa, R.T.; Bianchin, V. Controle de doenças de plantas pela rotação de culturas. Summa Phytopathologica,
v.37, n.3, p.85-91, 2011.

 Monocultura consiste no cultivo da mesma espécie
vegetal no mesmo local da lavoura, onde estão
presentes seus próprios restos culturais. De modo
geral, as doenças de plantas tem sua intensidade
agravada quando se pratica monocultura.

Reis, E.M.; Casa, R.T.; Bianchin, V. Controle de doenças de plantas pela rotação de culturas. Summa
Phytopathologica, v.37, n.3, p.85-91, 2011.

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Sobrevivência de fitopatógenos no SPD
 A sobrevivência e multiplicação do patógeno são favorecidas
sob MONOCULTURA E PLANTIO DIRETO.
 Eficiência da inoculação é função do maior potencial de
inóculo e da proximidade da fonte aos sítios de infecção.

 Há uma relação direta entre a quantidade de resíduo
cultural no solo após a colheita e o potencial de inóculo
de fungos (causadores de manchas foliares, cancros e
antracnose) produzidos nesses resíduos.

Reis, E.M.; Casa, R.T.; Bianchin, V. Controle de doenças de plantas pela rotação de culturas. Summa Phytopathologica,
v.37, n.3, p.85-91, 2011.

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Como o SPD pode favorecer o surgimento de
doenças?

O acúmulo de restos culturais favorece o aumento da
população de patógenos, resultando em maior intensidade
de doenças nas culturas.

Reis, E.M.; Casa, R.T.; Bianchin, V. Controle de doenças de plantas pela rotação de culturas. Summa
Phytopathologica, v.37, n.3, p.85-91, 2011.

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SPD - Processos biológicos que
ocorrem nos restos culturais
Como favorecem o surgimento
de doenças?
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SPD - Processos biológicos
que ocorrem nos restos culturais
Segundo Reis et al., 2011, os seguintes processos
biológicos ocorrem nos restos culturais:
 produção de inóculo na fase saprófítica – sobre o solo
 liberação e remoção do inóculo – livre na superfície
 transporte e deposição – proximidade da fonte de
inóculo dos sítios de infecção
 inoculação – maior eficiência no plantio direto
 crescimento da doença – proporcional à densidade de
inóculo ou inóculo disponível

Reis, E.M.; Casa, R.T.; Bianchin, V.
Controle de doenças de plantas pela rotação de culturas. Summa
Phytopathologica, v.37, n.3, p.85-91, 2011.

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Rotação de culturas
• A RC é um método para o controle de doenças em
SPD.
• A RC é condição indispensável para o sucesso do
sistema de semeadura direta.
• A RC age sobre a fase saprofítica dos fitopatógenos
nos restos culturais das plantas hospedeiras.
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Rotação de culturas sob o ponto de
vista fitopatológico
O que significa? Qual o objetivo?
Como conduzir?
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Rotação de culturas aplicada ao controle
de doenças de plantas
• Rotação de culturas pode ser definida como a
alternância anual de espécies vegetais,
preferencialmente de famílias distintas, no mesmo
local e na mesma estação de cultivo. (Valdir Lourenço Jr et al.,
2016. Rotação e Sucessão de Culturas em Hortaliças Cultivadas em Pequenas Áreas no
Manejo de Doenças. CT 152. Embrapa Hortaliças.)

• A rotação de culturas, com o emprego de espécies de
plantas de famílias botânicas diferentes, contribui para
a eliminação ou redução do inóculo de patógenos na
área cultivada. (Reis, E.M.; Casa, R.T.; Bianchin, V. Controle de doenças de plantas pela
rotação de culturas. Summa Phytopathologica, v.37, n.3, p.85-91, 2011.)

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Não podemos confundir......
 É importante não confundir rotação de culturas e sucessão de
culturas.

 Rotação de culturas pode ser definida como a alternância anual de
espécies vegetais, preferencialmente de famílias distintas, no
mesmo local e na mesma estação de cultivo.

 Sucessão de culturas refere-se ao estabelecimento em sequência
de duas ou mais espécies de plantas na mesma área de cultivo
em período igual ou inferior a um ano (na sucessão poderá haver
duas monoculturas numa mesma área).

Valdir Lourenço Jr et al., 2016. Rotação e Sucessão de Culturas em Hortaliças Cultivadas em Pequenas Áreas
no Manejo de Doenças. CT 152. Embrapa Hortaliças. / M. B da Silva & L. Zambolim, 2014.
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Valdir Lourenço Jr et al., 2016. Rotação e Sucessão de Culturas em Hortaliças Cultivadas em Pequenas
Áreas no Manejo de Doenças. CT 152. Embrapa Hortaliças.

Rotação de culturas
O que se pretende com a RC?
Reduzir a quantidade de inóculo de
patógenos no solo abaixo do nível de dano ou
até a níveis insuficientes para a infecção.

 pode-se planejar controle de doença, visando reduzir o inóculo do patógeno, através
da rotação de culturas, conhecendo-se: (A) as informações a respeito do
patógeno, e (B) o tempo de sobrevivência na ausência dos hospedeiros, numa
determinada região.

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Rotação de culturas
Vimos que:
 Rotação de culturas pode ser definida como a
alternância anual de espécies vegetais,
preferencialmente de famílias distintas, no mesmo
local e na mesma estação de cultivo.

Faz-se importante ressaltar que ....
 A RC deve considerar o tempo necessário para a
degradação dos restos culturais e, com esses, as
estruturas de sobrevivência.
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Esquema simplificado de
RC: todas as culturas
estão presentes em um
certo ano e ao final de
um ciclo de rotação,
todas as culturas
estiveram presentes em
cada campo, conferindo
diversidade em campos
(mosaicos no tempo) e
entre campos (mosaicos
no espaço).

Carolina Leoni. 2013. Doctorate Thesis. Crop
rotation design in view of soilborne pathogen
dynamics. A methodological approach
illustrated with Sclerotium rolfsii and Fusarium
oxysporum f.sp. cepae. University of
Wagening

Como determinar o intervalo da
rotação de culturas?
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Determinação do intervalo de rotação de
culturas - o que se faz necessário?
Conhecer a gama de hospedeiros;
Conhecer os mecanismos de sobrevivência dos
fungos;
Quantificar o período de decomposição dos
restos culturais e o período de viabilidade das
estruturas de resistência dos patógenos

Erlei M. Reis, Ricardo T. Casa & Laércio L. Hoffmann, 2005. Controle Cultural de Doenças Radiculares. In: Michereff, S.
J., Andrade, D.E.G.T. & Menezes, M. (Eds.) Ecologia e Manejo de Patógenos Radiculares em Solos Tropicais 2005. Recife,
UFRPE.
.
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Estudo de um caso – o mal-do-pé do trigo
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Foto: Marcelo Madalosso
Gaeumannomyces graminis var. tritici sobrevive
no solo associado aos restos culturais, principalmente,
em tecidos das plantas suscetíveis.
Se o trigo ou a cevada deixarem de ser cultivados
na mesma área, tal patógeno é incapaz de parasitar a
soja, a aveia, o tremoço ou a ervilhaca, sendo, portanto,
dependente dos restos culturais do centeio, cevada, trigo e
triticale.
Quando se deixa um inverno sem semear trigo,
cultivando-se então aveia, por exemplo, passaram-se 18
meses. Portanto, tempo suficiente para a mineralização dos
restos culturais, que ocorre em torno de 16 a 18 meses.
Esta doença só é importante em monocultura
de plantas suscetíveis. O mal-do-pé é controlado por
rotação de um e de dois invernos. A monocultura, por
outro lado, realimenta o fungo a cada 6-7 meses, tempo
requerido para que o trigo volte a ser cultivado na mesma
área. Erlei M. Reis, Ricardo T. Casa & Laércio L. Hoffmann, 2005. Controle Cultural de Doenças
Radiculares. Michereff, S. J., Andrade, D.E.G.T. & Menezes, M. (Eds.) Ecologia e Manejo de Patógenos
Radiculares em Solos Tropicais 2005. Recife, UFRPE.
.

A RC tem sido recomendada com sucesso para o
controle de diferentes enfermidades do trigo
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Patógenos controláveis pela rotação de
culturas
Características

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Patógenos controláveis pela rotação de
culturas - características
 fitopatógenos necrotróficos (saprófitas) que sobrevivem pela
colonização saprofítica dos restos culturais do hospedeiro e
não apresentam habilidade de competição saprofítica;
 não apresentam estruturas de resistência, as quais poderiam
mantê-los viáveis por vários anos, livres no solo, sem acesso a
fonte nutricional. (Exemplos de estruturas de resistência:
esclerócios, clamidósporos, oósporos);
 apresentam restrita gama de hospedeiros (possuem poucos
ou
nenhum hospedeiro secundário). A presença de hospedeiras
alternativas em determinadas condições pode anular o efeito do
controle conferido pela rotação de culturas.

Reis, E.M.; Casa, R.T.; Bianchin, V. Controle de doenças de plantas pela rotação de culturas. Summa
Phytopathologica, v.37, n.3, p.85-91, 2011.

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M. B da Silva & L. Zambolim,
2014. Controle cultural de
doenças de plantas. Cap 9. P. 267
-300. In: O essencial da
Fitopatologia: controle de
doenças de plantas. L. Zambolim
et al, editores. UFV, 2014

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CONTINUAÇÃO DA TABELA

M. B da Silva & L. Zambolim, 2014. Controle
cultural de doenças de plantas. Cap 9. P. 267 -
300. In: O essencial da Fitopatologia: controle
de doenças de plantas. L. Zambolim et al,
editores. UFV, 2014

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CONTINUAÇÃO DA TABELA

M. B da Silva & L. Zambolim, 2014. Controle
cultural de doenças de plantas. Cap 9. P. 267 -
300. In: O essencial da Fitopatologia: controle de
doenças de plantas. L. Zambolim et al, editores.
UFV, 2014

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• https://maissoja.com.br/mofo-
branco-e-sua-relacao-com-a-
rotacao-de-culturas/José Alencar
Jr. e Otávio Ajala Fiorentin
Avaliação da incidência da doença mofo-branco
em lavouras comerciais da cultivar de soja
BMX Ativa, em sistema de semeadura direta
em rotação a milho ou monocultura de soja.
Resultados demonstram a importância da
rotação de culturas: a incidência de mofo-
branco nas lavouras conduzidas em rotação
com milho variou de 0 % até 15 %, com
média de 4 %. Diferindo, estatisticamente, da
incidência em monocultura de soja, que foi de
31%, com variação de 10 % até 49 %.
Patógenos de mais difícil controle pela
rotação de culturas
Características
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Patógenos de difícil controle pela rotação de
culturas - características
Possuem
HABILIDADE DE
COMPETIÇÃO
SAPROFÍTICA.
Ex.:Rhizoctonia
solani (capaz de
se manter viável
indefinidamente
no solo, pois
apresenta a
capacidade de
trocar de
substrato
saprofítico)

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Patógenos de difícil controle pela rotação de
culturas - características
 apresentam estruturas de sobrevivência (repouso): oósporos
(Pythium e Phytophthora); clamidósporos (em Fusarium);
escleródios (em Sclerotium, Sclerotinia, Macrophomina e
Verticillium).

HELENA GUGLIELMI MONTANO,
FITOPATOLOGIA ESPECIAL - 2021.3 NÃO
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Fonte::http://www.botany.hawaii.edu/
Patógenos de difícil controle pela rotação de
culturas - características

 Apresentam ampla gama de hospedeiros.
 Ex.: Gibberella zeae e Pyrycularia grisea parasitam inúmeras
gramíneas e podem colonizar saprofiticamente os restos culturais
de hospedeiros secundários.
 Sclerotinia sclerotiorum, além de produzir estrutura de
resistência, também coloniza inúmeros hospedeiros.
 Para Macrophomina phaseolina foram relatados 500 hospedeiros,
distribuídos em 100 famílias botânicas.
 Ralstonia solanacearum possui uma ampla gama de hospedeiros,
inclusive entre as plantas daninhas.

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• “Outro exemplo de patógeno de difícil controle pela rotação de
culturas é o fungo Fusarium solani f.sp. phaseoli, que causa a podridão
seca da raiz em feijoeiro.
• Este patógeno é habitante do solo, vivendo saprofiticamente nos restos
culturais, podendo, na ausência da planta hospedeira, sobreviver no
solo por muitos anos na forma de clamidosporos, além do que, pode
sobreviver colonizando as raízes de plantas não hospedeiras sem
causar sintoma secundário.
• A rotação de culturas com plantas da família das gramíneas (atualmente
Poaceae) por um período de 4 a 5 anos pode reduzir a população do
fungo no solo. Neste caso, mesmo com período longo de rotação a
população do fungo pode ser reduzida e não eliminada da lavoura.
Deve ser enfatizado que os fungos habitantes do solo são dificilmente
eliminados do solo por práticas culturais. Dependendo do manejo da cultura
e das condições ambientais, podem se manifestar com maior ou menor
intensidade. O manejo deve objetivar reduzir a população a uma densidade
de inóculo que não cause danos à cultura. Embora pouco explorado, o
desenvolvimento da supressividade de solo deveria ser prioritário na
pesquisa para este patossistema”. (pág. 286 - Erlei M. Reis, Ricardo T. Casa & Laércio L. Hoffmann, 2005.
Controle Cultural de Doenças Radiculares. Michereff, S. J., Andrade, D.E.G.T. & Menezes, M. (Eds.) Ecologia e Manejo de
Patógenos Radiculares em Solos Tropicais 2005. Recife, UFRPE.
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M. B da Silva & L. Zambolim, 2014. Controle cultural de doenças de plantas. Cap 9. P. 267 -300. In: O essencial da
Fitopatologia: controle de doenças de plantas. L. Zambolim et al, editores. UFV, 2014

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M. B da Silva & L. Zambolim, 2014. Controle cultural de doenças de plantas. Cap 9. P. 267 -300. In:
O essencial da Fitopatologia: controle de doenças de plantas. L. Zambolim et al, editores. UFV, 2014