Aula 12- 26 10 Automatização em Hemato

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Automatização 
em 
Hematologia
Introdução
• A avaliação do hemograma, utilizando os contadores globulares
automáticos, é feita com um pequeno volume de sangue total colhido para
um tubo com anticoagulante, preferencialmente o EDTA (ácido
etilenodiamino tetra acético).
• A amostra deve estar perfeitamente homogeneizada e sem coágulos e
deve ser processada até 2- 4 horas após a colheita.
As amostras “envelhecidas” podem apresentar alterações nas contagens 
celulares e seus índices.
Introdução
• A maioria dos aparelhos contém um sistema de identificação de amostras
por leitura ótica de código de barras, um sistema de controle do estado
de processamento das amostras, e uma ligação ao sistema informático do
laboratório para envio, análise e validação de resultados.
• Os aparelhos possuem sistemas gráficos de distribuição de resultados,
alertas de processamento relativos ao aparelho e às amostras (por
exemplo, alertas para a falha de reagente, entupimento de agulha, etc).
• Permitem, ainda, o processamento de amostras quer em modo
automático, quer em modo manual (mais usado para análise de amostras
isoladamente) e apresentam, ainda, a possibilidade de utilização do modo
capilar (em caso de baixo volume de amostra).
Fonte: Daniela Almeida Braga – FFUP – 2014
Introdução
• Os contadores apresentam um sistema de alertas (Flag) para alterações
morfológicas, alterações quantitativas e para a presença de células
precursoras.
• É também importante saber interpretar os alertas produzidos, que
auxiliam na identificação de erros ou alertam para alterações nas células
sanguíneas, que é necessário confirmar por visualização microscópica do
respetivo esfregaço de sangue periférico.
• Este aspeto é muito importante para a validação e quantificação de
alterações morfológicas e para identificação de células precursoras
Vantagens da Automação
• Os contadores automáticos apresentam diversas vantagens, relativamente
ao método manual, tais como:
• Maior segurança, com a análise das amostras em tubo fechado
• Maior reprodutibilidade, sem variabilidade inter-observador
• Maior precisão, resultante do elevado número de células contadas
• Possibilidade de avaliação de parâmetros não incluídos no hemograma,
mas muito úteis na avaliação hematológica, com o mesmo volume de
sangue
• Mais eficiente permitindo a realização de mais de 100 análises por hora
Sempre que a contagem globular automática forneça
resultados ou indique alarmes que o justifiquem, deve ser
realizada uma visualização microscópica do esfregaço de
sangue e, se necessário, uma contagem manual das células.
Fonte: Daniela Almeida Braga – FFUP – 2014
Método
Óptico
Introdução
• Os aparelhos que fazem a contagem celular pelo método ótico utilizam
uma luz laser para análise e contagem das células por citometria de
fluxo.
• Nestes contadores, o sangue é aspirado e introduzido num fluxo contínuo,
que faz com que as células se alinhem (uma a uma) no centro do fluxo,
prevenindo desta forma a geração de pulsos anormais.
• Um laser semicondutor é emitido para o fluxo de células atravessando-o
na perpendicular (90º), estando alinhado com um detetor.
https://www.youtube.com/watch?v=Mitt61jn1TE
https://www.youtube.com/watch?v=Mitt61jn1TE
Fonte: Daniela Almeida Braga – FFUP – 2014
Sistema de 
impedância
Introdução
• O sistema de impedância elétrica aplicado à contagem celular, é também
designado por corrente direta e tem como base o princípio de “Coulter”.
• Esta metodologia tem como base a medição de alterações numa corrente
elétrica durante a passagem de partículas, neste caso células sanguíneas
(suspensas numa solução salina, isotônica, boa condutora), através de um
pequeno orifício situado entre dois elétrodos.
• Como as células não são condutoras de corrente elétrica, a passagem de
cada célula através da abertura causa uma diferença de potencial entre os
dois elétrodos. Desta alteração da corrente gera-se um pulso elétrico
proporcional ao volume da célula que lhe deu origem.
Fonte: Daniela Almeida Braga – FFUP – 2014
Principais 
aparelhos
O Sysmex XE-5000 utiliza a tecnologia de 
citometria de fluxo (por fluorescência) 
para a contagem de Leucócitos, 
Plaquetas e Eritroblastos, e o método de 
impedância para a contagem de 
Eritrócitos e Plaquetas.
Empresa: Sysmex
Sede: Japão
Tabela I - Parâmetros avaliados pelo contador 
hematológico Sysmex Xe-5000.
Fonte: Daniela Almeida Braga – FFUP – 2014
Fonte: Daniela Almeida Braga – FFUP – 2014
https://www.youtube.com/watch?v=5uTH09jiUcA
https://www.youtube.com/watch?v=5uTH09jiUcA
https://www.youtube.com/watch?v=HPrjEmr-KBw
https://www.youtube.com/watch?v=HPrjEmr-KBw
Os resultados 
apresentados têm 
valores dentro dos 
limites de 
referência de Hb, 
VCM, CHCM, não 
existindo 
variações 
significativas, 
nem alertas a 
considerar.
Fonte: Daniela Almeida Braga – FFUP – 2014
Está apenas representado o resultado 
para a contagem de Leucócitos (WBC) e 
respetivos parâmetros. Verifica-se no 
exemplo que a contagem de Leucócito 
está aumentada (leucocitose) devido a 
neutrofilia (aumento dos NEUT) e 
monocitose (aumento dos MONO). 
Estão presentes alguns granulócitos imaturos (IG), o que 
poderá estar relacionado com um ligeiro aumento da atividade 
da medula óssea, em resposta a uma possível infeção vírica. 
Fonte: Daniela Almeida Braga – FFUP –
2014
O autoanalisador Advia 120, utiliza o método ótico para 
todas as determinações. O aparelho funciona com uma 
tecnologia designada de UFC (“Unified Fluids Circuit”), 
que é um circuito fechado com válvulas e bomba de 
fluídos, em que a junção de várias placas acrílicas origina 
diferentes câmaras/canais onde ocorrem as reações para 
análise das amostras
Empresa: Siemens Healthineers
Sede: Alemanha
No canal RBC/PLT, um reagente (SDS – “sodium
dodecyl sulfate” com glutaraldeído) torna os 
eritrócitos e plaquetas esféricos. 
Ao tornar todas as células esféricas, a forma 
deixa de ser uma variável a ter em conta e 
apenas é importante a medição do volume para 
distinguir estas duas populações celulares 
(eritrócitos e plaquetas).
Os reticulócitos são contados no canal RET, onde 
um reagente torna os RBC esféricos e cora 
(corante catiónico de oxazina) as células de 
acordo com o seu conteúdo em RNA.
Fonte: Daniela Almeida Braga – FFUP –
2014
Tabela II - Parâmetros avaliados pelo contador 
hematológico Advia 120.
Fonte: Daniela Almeida Braga – FFUP – 2014
Tabela II - Parâmetros avaliados pelo contador 
hematológico Advia 120.
Fonte: Daniela Almeida Braga – FFUP – 2014
https://www.youtube.com/watch?v=xAxY39NMpFo
https://www.youtube.com/watch?v=xAxY39NMpFo
Podemos verificar que o valor de Hb é 
inferior ao valor de referência, assim como 
alguns índices eritrocitários (VCM e HCM).
Fonte: Daniela Almeida Braga – FFUP – 2014
Verifica-se a presença de células microciticas e 
hipocrómicas, resultado concordante com os 
valores de VCM e HCM apresentados acima. 
Estes resultados sugerem a presença de uma 
anemia microcitica hipocrómica. 
Fonte: Daniela Almeida Braga – FFUP – 2014
O Coulter LH 750 utiliza a impedância para a contagem 
celular (eritrócitos, leucócitos e plaquetas) e uma 
tecnologia designada por VCS (“volume, high frequency
conductivity, scatter”) que permite a diferenciação dos 
leucócitos e a contagem de reticulócitos. 
Esta tecnologia permite diferenciar linfócitos, 
monócitos, eosinófilos, neutrófilos, basófilos e 
reticulócitos com base no volume da célula, na sua 
condutividade, estrutura e forma (VCS).
Empresa: Beckman Coulter
Sede: Estados Unidos
Determinação do volume Condutividade Dispersão da radiação VCS (combinação de todos)
No Coulter LH 750 os parâmetros (Eritrócitos, Leucócito e 
Plaquetas) são determinados usando a tecnologia “AccuCount” 
que combina a impedância (principio de Coulter) com algoritmos 
matemáticos. Esta tecnologia permite que as contagens sejam 
automaticamente corrigidas, como é o caso da contagem de 
Eritrócitosna presença de Eritroblastos, no caso da presença de 
Plaquetas gigantes, agregados plaquetários, Eritrócitos não 
lisados ou fragmentos de Eritrócitos.
Fonte: Daniela Almeida Braga – FFUP – 2014
Tabela III - Parâmetros avaliados pelo contador 
hematológico Coulter LH 750.
Fonte: Daniela Almeida Braga – FFUP – 2014
Tabela III - Parâmetros avaliados pelo contador 
hematológico Coulter LH 750.
Fonte: Daniela Almeida Braga – FFUP – 2014
https://www.youtube.com/watch?v=lQmUN7dk4zQ
https://www.youtube.com/watch?v=lQmUN7dk4zQ
É possível observar alterações ao nível das três linhagens 
celulares. A contagem de Leucócitos (WBC) está aumentada 
(leucocitose com neutrofilia e monocitose), o valor de Hb
está diminuído (anemia) e o valor de Plaquetas está muito 
baixo (trombocitopenia). Os alertas do equipamento 
sugerem como principal achado a presença de agregados 
plaquetários (“PLT clumps”). 
Fonte: Daniela Almeida Braga – FFUP – 2014
Cada equipamento apresenta as suas especificações 
e alertas, que podem incluir:
• Alertas gerados pelo Sysmex XE-5000: “PLT clumps”; “PLT ABN distribution”; “WBC
ABN scattergram”; “Blasts”; “left shift”; “atypical lymphocytes”; “abnormal
lymphocytes/blasts”; “RBC ABN distribution”; “RBC lyse resistence”; “RBC
agglutinins”; “turbidity”.
• Alertas gerados pelo Advia 120: “left shift”; “atyp”; “blasts”; “immature grans”;
“myeloperoxidase deficiency”; “aniso”; “micro”; “macro”; “Hb variation”; “hypo”;
“hyper”; “NRBC”; “RBC fragments”; “RBC ghost”; “large PLT”; “PLT clumps”.
• Alertas gerados pelo Coulter LH750: “user-definable age”; “gender”; “location-based
reference intervals”; “action and critical limits”; “user – definable RBC morphology”;
“gradient messages (+,++,+++)”; “user – selectable sensivity for differential abnormal
population suspected messages”
Histogramas
(Scattergram)
Introdução
• Com a computadorização e novas
tecnologias para avaliar conteúdos e
formas foi possível mapear as
células e construir um gráfico com
suas populações.
• A distribuição em gráficos facilita o
estudo das patologias porque as
diferenças do normal mostradas no
gráfico são muito evidentes.
O gráfico é composto por
diferentes setores como:
ROXO: LINFÓCITOS
Quando se observa uma elevação dessa nuvem,
dependendo de outros parâmetros do hemograma,
pode ser observada uma elevação na quantidade de
linfócitos circulantes ou até mesmo um aumento de
material citoplasmático, revelando a presença de
possíveis linfócitos reativos e consequentemente um
processo de ação imunológica contra agentes
biológicos, como em um processo infeccioso viral.
Quando existe uma disfunção proliferativa de 
medula óssea ocorrendo, o gráfico pode 
apresentar deformidades e sobreposição de 
nuvens, levando o profissional hematologista a 
concluir seu diagnóstico com base da 
observação de lâminas de esfregaço sanguíneo 
corado.
VERDE: MONÓCITOS
São células grandes e de complexidade média em
relação ao seu citoplasma, por isso são localizados
mais centralmente ao gráfico. Quando processos
infecciosos estão ocorrendo no organismo, os
monócitos são sinalizados logo após a chegada dos
neutrófilos para que possam realizar a fagocitose e a
eliminação de agentes patológicos, como bactérias.
Quando se observa um aumento da nuvem 
de células pode-se inferir em uma 
monocitose, porém algumas distorções da 
nuvem podem ser presuntivas de 
vacuolização citoplasmática ou de 
especialização de monócitos.
AZUL: NEUTRÓFILOS
Correspondente à linhagem de neutrófilos
corresponde àquela de tamanho celular pequeno a
médio e de complexidade moderada a alta. Sabe-se
que neutrófilos são os primeiros agentes celulares da
imunidade inata à chegarem no local da infecção e
são responsáveis pelo primeiro combate à agentes
infecciosos e pela sinalização química que permite a
convocação de outras células para o local de ação.
São células granulares que podem ou não 
apresentar grumos grosseiros, conhecidos 
como granulações tóxicas e que provocam 
uma distorção da nuvem para o lado direito 
do gráfico. Processos infecciosos podem 
aumentar o número de neutrófilos 
circulantes no sangue e podem aumentar o 
tamanho da nuvem.
VERMELHO: EOSINÓFILOS
Possui um volume menor já que a quantidade de
eosinófilos circulantes no sangue tende a ser menor
que outras linhagens celulares, como monócitos e
linfócitos. São células grandes e complexas, por isso
ocupam uma posição mais a direita do gráfico, já que
seus grânulos são bem destacados e seu citoplasma
possui uma pigmentação eosinofílica marcante.
Em processos infecciosos desencadeados 
pela entrada e proliferação de parasitas e 
fungos há um aumento considerável na 
quantidade de eosinófilos circulantes no 
sangue periférico, além de uma migração 
dos mesmos para o sítio de ação do 
parasita. 
Para aprofundamento...
Referências
• Daniela Almeida Braga – FFUP – 2014. Contagem globular automática:
parâmetros avaliados, significado clínico e causas de erro. Disponível em:
https://sigarra.up.pt/ffup/pt/pub_geral.show_file?pi_doc_id=27068.
Último acesso em 08 de setembro de 2022.
• Entendendo gráficos de Hematologia. Instituto GPI. Disponível em:
https://www.institutogpi.com/post/entendendo-graficos-de-hematologia.
Último acesso em 08 de setembro de 2022.