Relatório Prática_Bioquímica Humana (1)

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RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS 
ENSINO DIGITAL 
	
RELATÓRIO 
01 e 02
	
	
	DATA:
10 / 03 / 23
RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS – EAD 
BIOQUÍMICA HUMANA
Nome: Monaline Meneses Feitoza
 
 Matricula: 28285858 
RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS: Bioquímica Humana
DADOS DO(A) ALUNO(A):
	NOME: Monaline Meneses Feitoza
	MATRÍCULA: 28285858
	CURSO: Nutrição
	POLO: Uninassau – Rio de Janeiro
	PROFESSOR(A) ORIENTADOR(A): Rosilma Oliveira
RELATÓRIO:
	ATIVIDADE CATALITICA DA AMILASE SALIVAR
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
Foi verificada a reação da hidrolise química utilizado ácido clorito e a hidrolise enzimática utilizada a amilase salivar 
através da utilização do agente Lugol 2%, que contém uma concentração de iodo que ao reagir com a composição do amido ganha uma coloração esverdeada escura ou azulada. Foi adicionado 5 gotas em cada tubo.
Tubos 1 
AA1- Adicionado 3ml de ácido clorito, em seguida 5 gotas de lugol teve modificações, ficou esverdeado, não aconteceu a hidrolise nesse tubo. 
AE1- Adicionado 3ml da solução amilase salivar utilizado 30ml de solução de amido 1%, em seguida 5 gotas de lugol, não aconteceu a hidrolise nesse tubo.
Seguidamente para o banho de gelo por dois minutos, apresentando a presença do amido, Não ocorreu hidrolise no tubo enzimático e químico. Ocorrendo a cor esverdeada.
Tubos 2
AA2: Retirado do banho maria, indo direto pro banho de gelo por 1 minuto para resfriar, em seguida adicionando 5 gotas de lugol perceptível a modificação para a cor azul escura. Identificando o lugol reagindo com o amido.
AE2: Retirado do banho maria, indo direto pro banho de gelo por 1 minuto para resfriar, em seguida adicionado 5 gotas de lugol perceptível a modificação para a cor azul escura. Identificando o lugol reagindo com o amido.
Tubos 3
AA3: Adicionado as 5 gotas de lugol percebemos que ficou uma cor azul escura. Identificando o lugol reagindo com o amido. 
AE3: Adicionado as 5 gotas de lugol percebemos que ficou uma cor azul escura. Identificando o lugol reagindo com o amido.
Conclusão: 
Os tubos 1 que foi submetida no banho de gelo apenas a cor ficou esverdeada, ocorrendo a degradação do amido.
Os tubos 2 e 3 foi submetido a duas temperaturas gelo e calor, banho maria por 10 minutos e tubo 3 por 20 minutos a 70°C ambos, após o banho maria foi direto para banho de gelo para resfriar e em seguida adicionado o lugol, não houve a degradação do amido. Evidenciando que a temperatura influência na atividade enzimática e química.
Materiais: 3- tubos para realização da atividade química (AA1, AA2, AA3)
3- tubos para atividade enzimática (AE1, AE2, AE3)
Pipeta, Pera de borracha, becker, cronometro, proveta, banho maria e banho de gelo
reagentes: Amilase salivar, Ácido clorídrico HCL, Amido 1 %, Lugol 2% 
2. Responda as Perguntas:
a) Qual a composição bioquímica do amido?
- Amilose
Homopolissacarídeo (Glc)
Linear α - (1-4)
- Amilopectina
Homopolissacarídeo (Glc)
Ramificado α – (1-4) e α – (1-6) 
b) Qual o objetivo do uso de HCl, aquecimento e resfriamento no procedimento da hidrólise química do amido?
O objetivo do HCI é a degradação do amido, já o objetivo do aquecimento e resfriamento é comprovar que de acordo com o meio que as enzimas são submetida sofre reação catalítica, alterando os substratos nos quais todos os componentes podem alterar a reação catalítica.
c) Descreva a sequência de transformações operadas pela amilase na molécula da amilose.
O iodo reagi com a molécula de amido e resulta na coloração azul, interagindo com a cadeia amilose, contento a estrutura helicoidal. Na cadeia amilopectina o resultado é uma coloração vermelha, por possuir muitas ramificações a reação é menor. 
d) Explique os resultados obtidos durante o ensaio bioquímico.
Tubos: AA1 e AE1, não aconteceu a hidrolise no tubo enzimático e químico, após adicionado as 5 gotas de lugol ocorrendo a coloração esverdeada em ambos, após o banho gelo, o amido permanece presente, e houve clareamento na cor com o tempo de resfriamento. 
AA2 e AE2, adicionando as 5 gotas de lugol ficou perceptivel a reação agindo com o amido e ficando com a coloração azul escura, em ambos os tubos.
AA3 e AE3, adicionando as 5 gotas de lugol ficou evidente a reação agindo com o amido e ficando com a coloração escura, em ambos os tubos.
	REAÇÃO DE SELIWANOFF (REAÇÃO PARA DISTINÇÃO ENTRE ALDOSES E CETOSES)
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
Foi utilizado 1 ml de frutose e 1 ml de água succionado com a pera de borracha no respectivo tubo em seguida 1 ml da glicose solução 1% e adicionado em cada tubo com sua identificação com respectivos nomes: glicose, frutose.
Em seguida é adicionado 1,5 ml do ácido clorídrico utilizando uma pipeta de 2 succionando até 5,5 ml em cada tubo teste, após homogeneizada em cada. Em seguida é colocado 0,5 ml do reativo seliwanoff em cada tubo. Leve agitada nos tubos e levando ao banho maria ate ver o resultado não tem tempo estimado, a 70°C 
Glicose não alterou a cor, confirma que ela não é uma cetose, não tem produção do furfural e reação com resorcinol. Enquanto a frutose ficou com a coloração vermelho intenso indicando a reação do resorcinol com o furfural e afirmando que é uma cetose. A água que era o controle negativo permanece inalterado. 
Materiais utilizados: reativo seliwanoff, solução de HCL 0,1. 
 3 tubos um para frutose, glicose e água.
Pera de borracha, Becker e pipeta.
2. Responda as Perguntas:
a) Qual o princípio da técnica de Seliwanoff?
O princípio se baseia, que quando a cetose é aquecida sofre desidratação rapidamente já mudando a sua coloração, Já aldose a coloração muda mas lentamente.
b) Qual o objetivo de utiliza um tubo apenas com água destilada.
Controle negativo.
c) Porque é necessário aplicar fervura e ácido clorídrico (HCl) durante o teste de Seliwanoff?
Por que a fervura fornece a energia necessária para que ocorra a desidratação do carboidrato, ao acontecer a desidratação o HCI forma os furfural e assume a coloração vermelho.
d) Explique os resultados obtidos durante o ensaio bioquímico quanto a presença de aldose e cetoses.
O resultado confirma que a frutose é uma cetose, na reação ocorreu a produção do furfural e tendo a reação com o resorcinol através do reativo seliwanoff e foi notório a coloração da cor vermelho intenso do tubo respectivo a frutose.
	PRECIPITAÇÃO POR ÁCIDOS FORTES E METAIS PESADOS
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
Inicialmente foi homogeneizar o ovoalbumina, colocando 2 ml de ovoalbumina em cada tubo respectivo com identificação, ácido tricloroacético e acetado de chumbo, no tubo do ácido foi acrescentado 1, ml do ácido tricloroacético utilizando a pera de borracha. precipitação é imediata formando um líquido leitoso branco formando grumos da proteína.
No tubo de acetado foi adicionado 5 gotas do acetado de chumbo utilizando a pipeta formando uma cor clara mais clara e a reação é imediata.
Materiais utilizados: ácido tricloroacético 20%, acetado de chumbo, matéria prima ovoalbumina 10%, pera de borracha, pipeta, becker e 1 tubo para ácido e 1 tubo para acetado de chumbo.
2. Responda as Perguntas:
a) Por que a ovoalbunina precipita na presença de ácidos fortes e metais pesados?
Porque a precipitação contém elementos químicos que consegue clivar e quebrar as ligações peptídicas da proteína.
b) Explique por que a ovoalbumina torna-se insolúvel após a precipitação.
Porque contém cátions pesados, formando precipitados insolúveis de proteína denominados de acordo com cada elemento formador.
c) Explique os resultados encontrados no experimento.
 Tubo de ácido tricloroacético reação imediata formando um líquido leitoso branco, tubo de acetado de chumbo tem uma reação imediata formando uma coloração mais clara.
Na pratica é possível ver a modificaçãodo ponto elétrico, do meio de cargas iônicas, podendo observar a precipitação imediata nos quais os elementos químicos conseguem clivar e quebrar as estruturas da proteína.
	PRECIPITAÇÃO FRACIONADA POR SOLUÇÕES SALINAS CONCENTRADAS
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
Foi utilizado no tubo A 2 ml de ovoalbumina em cada tubo utilizando a pipeta.
 2 ml de concentração de salina utilizando a pera de borracha, homogenizar e observar a reação que é imediata, formando um composto leitoso esbranquiçado afirmando a precipitação das proteínas.
Tubo B foi utilizado 2 ml ovoalbumina e concentração de sulfato de amônia, e água, como padrão negativo. Reação imediata, porém, não foi possível perceber a formação desse precipitado, água diminui e interfere na questão iônica das cargas elétricas.
Materiais utilizados: ovoalbumina 10%, sulfato de amônia concentrada de sais, água para utilizar como padrão negativo, 2 tubos, pipeta, becker 
2. Responda as Perguntas:
a) Explique os conceitos de “Salting out”, “Salting in” e camada de solvatação?
As moléculas de água ocupadas, em interagir com íons, deixam a estrutura proteica, tento maior interação proteína- proteína, tento insolubilidade dá-se o nome de Salting out.
Quando se tem um aumento de solubilidade da proteína no meio aquoso é dá-se o nome de Salting in. 
A água, apresenta grande poder de solvatação de partículas menores nesses casos íons.
b) Qual o princípio bioquímico do experimento?
Principio é realizar um experimento que demostre o ponto isoelétrico das proteínas. 
 
c) Explique os resultados encontrados durante o experimento.
Tubo A- reação imediata, formando um composto leitoso esbranquiçado afirmando a precipitação das proteínas.
Tubo B- reação imediata, não foi possível perceber a formação do precipitado. Água por ser usada como um padrão negativo, diminui e interfere na questão iônica das cargas elétricas. 
	REAÇÃO DE BENEDICT (IDENTIFICAÇÃO DE AÇÚCARES REDUTORES)
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
Foi utilizado três tubos com respectiva descrição, glicose, sacarose e água será para controle negativo, em seguida utilizando a pera de borracha 5 ml do reativo de Benedict 5 ml em cada um dos tubos, 5 ml de água no tubo com identificação de água e homogenizar, 5ml no tubo com identificação sacarose 1 % antes de colocar os 5 ml no tubo foi homogenizar a solução aspirando e liberando para homegenizar com o reativo Benedict. Tubo de glicose foi adicionado 5 ml de glicose e em seguida homogenizar. 
Em seguida levado ao banho maria temperatura alta a 70°C, e deixando os tubos por 5 minutos para ver a reação.
 Tudo água não teve reação, tubo sacarose não teve reação, tudo glicose houve uma modificação na reação com a coloração esverdeada. 
Materiais utilizados: Pera de borracha, pipeta, becker, Banho maria, glicose 1%, solução de sacarose 1%, reativo de Benedict, água, cronometro e três tubos.
 
2. Responda as Perguntas:
a) Explique o princípio da técnica bioquímica do experimento.
Alguns carboidratos apresenta estrutura hidroxila em um dos carbonos o c1, e essa hidroxila, consegue reagir com vários íons principalmente metálicos, na qual se baseia na ligação onde a carbonila se liga a um reativo chamado reativo de Benedict.
b) Qual o conceito de “açúcares redutores”?
Reduzir os sais de cobre, prata e bromo em soluções alcalinas, pois possuem grupos aldeídos ou cetonas livres.
c) Explique os resultados encontrados no experimento.
Resultado: Tubo água que foi utilizada como controle negativo, não deve reação.
Tubo sacarose foi observado que permaneceu a cor do reagente e não deve redução e nem houve reação entre os íons significa que a sacarose não é um carboidrato redutor e não tem a hidroxila, a carbonila que faz a reação com os íons cúpricos.
Tubo glicose: deve uma modificação com uma coloração esverdeada indicada que houve de fato uma redução dos íons, havendo uma reação do cobre. E nesse caso não a formação do ácido cuproso, reduzindo o máximo o cobre, porém foi possível perceber uma diferença entre a sacarose e a glicose, significando que a glicose geralmente a aldose é um agente redutor e a frutose e a sacarose não é um redutor.
d) Explique como o experimento pode ser aplicado nas atividades na área clínica.
Esse experimento pode ser utilizado para detectar a presença de glicose e outros açúcares redutores. É usado para testar a urina de diabéticos.
	REAÇÃO DE BIURETO
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
Foi adicionado no tubo 1 ml de água destilada no tubo utilizando a pera de borracha, em seguida adicionada a solução de biureto. No tubo correspondente foi adicionado o reagente biureto com ovoalbumina, já ficando com a coloração na cor violeta
Materiais utilizados: reativo biureto, solução ovoalbumina, água destilada, becker, pera de borracha e dois tubos 
2. Responda as Perguntas:
a) Explique o princípio bioquímico da Reação de Biureto.
Principio do método biureto consiste em detectar as ligações peptídicas de proteínas existentes em um meio.
b) Qual o tipo de ligação que ocorre entre o Biureto e as moléculas identificadas?
Ligações peptídicas, dando positiva para proteínas e peptídeos com três ou mais resíduos de aminoácidos.
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
A mudança da coloração acontece aos poucos, em seguida já notável a cor violeta em torno de 1 a 2 minutos começar a se intensificar, indicando a presença de proteína. Indicativo dos grupamentos de carbanimicos que interagem com o reativo Biureto.
	REAÇÃO DO LUGOL (IDENTIFICAÇÃO DE POLISSACARÍDEOS)
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
Inicialmente foi retirado o ar da pera de borracha para realizar a sucção, em seguida homogienizar o amido e aspirado 1 ml de amido e 5 gotas de lugol colocado no tubo respectivo. Houve uma reação, a coloração ficou azulada, esverdeada indicando a presença de amido.
Novamente retirar ar da pera de borracha sucção da água e em seguida acrescentar 5 gotas de lugol no amido. Não houve reação, a coloração ficou amarronzada indicando que não tem presença do amido.
Materiais utilizados: solução de amido 1%, solução de lugol a 2%, água destilada, pipeta de 1 ml, 2 tubos e pera de borracha
2. Responda as Perguntas:
a) Explique o princípio bioquímico da utilização do lugol na identificação de polissacarídeos.
A amilose e a amilopectina reagi com o iodo resultando uma coloração azul, quanto maio a sua intensidade maior a quantidade de amido encontrado.
b) Explique para quais situações essa técnica pode ser utilizada. 
 Indicado para identificar a quantidade de amido nos alimentos.
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
A primeira amostra houve reação, a sua coloração ficou azulada, esverdeada, indicando a presença do amido, já a segunda amostra não houve reação o que indica que não tem amido.
	REAÇÃO DE SAPONIFICAÇÃO
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
Foi efetuado um teste para verificação de água dura, na qual é composta por vários sais como cálcio, magnésio e os sais fazem com que diminua a reação do sabão com a água reduzindo a produção de espuma. No tubo foi adicionado 5 ml de solução de hidróxido de potássio e em seguida 2 ml de óleo de milho e hemogenizar. Houve formação de duas fases aquosas e do óleo, o óleo por se mais denso ele fica precipitado no fundo do tubo. Após foi levado ao banho maria por 5 minutos, quando a hidrolise acontecer, essa parte que separa não vai ocorrer mais e vai ter uma solução homogênea. Havendo a hidrolise 
Com a hidrolise foi reservado em um tubo, em seguida foi pego um tubo vazio e colocado água e colocar 2 ml da hidrolise de sabão e homogienizar, conseguindo perceber o sabão e mudando a coloraçãobranca de espuma e sentir a textura escorregadia. Em seguida foi utilizado outro tubo e adicionando 2 ml da hidrolise de sabão e adicionado 5 gotas de cloreto de cálcio para verificar se o cálcio interfere na produção de espuma e homogenizar e tem a percepção visualmente que não tem a formação de espuma e tem pequenas precipitações que são do cálcio, quando a água tem uma consistência com muita quantidade de íons, sais, cálcio e magnésio, interferindo na produção de espuma características do ácido graxos.
Materiais utilizados: óleo de milho, água destilada, solução etanolica hidróxido de potássio, becker, pera de borracha, pipeta 1 ml, banho maria, cronômetro e três tubos.
2. Responda as Perguntas:
a) Explique bioquimicamente o que são ácidos graxos e triglicerídeos.
São lipídios mais abundantes na natureza, são compostos por uma molécula de glicerol ligada a três de ácidos graxos esterificados.
b) Explique a fundamentação teórica da técnica de saponificação. 
Os triglicerídeos, na presença de bases, podem ser hidrolisados liberando glicerol e sais de ácidos graxos, os sais e ácidos graxos apresentam uma característica anfipática onde em solução aquosa diminuem a tensão superficial da água formando espuma.
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
No primeiro tubo foi possível observa a espuma e a mudança de coloração para cor branca, mudando a textura e ficando, mas escorregadia, havendo a hidrolise. Já o segundo tubo é perceptivel que a coloração fica um pouco amarelada e contento pequenos cristais e não havendo formação de espuma, não aconteceu a hidrolise.
	SOLUBILIDADE DOS LIPÍDIOS
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
Tubo 1 foi adicionado 3 ml de água e 1 ml de óleo, Óleo não se dissolvendo na água, o lipídeo está sendo introduzido em meio líquido, pois precisa ser carreado principalmente por proteínas, por mais que agite não é possível hemogienizar.
Tubo 2 ácidos clorídrico foi adicionado 3 ml de ácido clorídrico e 1 ml de óleo, observando a reação e foi possível ver que mesmo em ácido não consegui dissolver o lipídeo.
 
Tubo 3 hidróxidos de sódio foi adicionado 3 ml de hidróxido de sódio e 1 ml de óleo, não conseguiu a solubilidade, mesmo em uma solução alcalina.
Tubo 5 etanol foi adicionado 3 ml de etanol e 1 ml de óleo, Houve uma reação foi possível observar algumas bolhas pequenas da molécula do lipídeo, o álcool etílico consegue fazer um pouco da solubilidade.
Tubo 6 éter foi adicionado 3 ml de etanol e 1 ml de óleo, foi observado uma melhor solubilidade o éter é o solvente que consegue fazer essa solubilidade do lipídeo.
Materiais utilizados: óleo de milho, pera de borracha, pipeta, tubos, água destilada, ácido clorídrico, hidróxido de sódio, solvente ético etílico, álcool etílico ou etanol.
2. Responda as Perguntas:
a) Explique a estrutura bioquímica dos lipídios correlacionado com sua característica de insolubilidade em soluções aquosas.
São compostos por moléculas apolares, não contendo carga elétrica e a água, sendo polar, não exerce influência na sua estrutura.
 
b) Explique a fundamentação teórica da técnica de solubilidade dos lipídios. 
Lipídeos são apolares apresenta baixa solubilidade em água e boa solubilidade em solventes orgânicos, a amostra que contém lipídeos formarão soluções de apenas uma fase com as substâncias apolares; e com as substâncias polares formarão soluções onde observamos mais de uma fase.
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
Dos 4 tubos não teve solubilidade, o 5 tubo etanol teve reação parcialmente, porém não dissolvendo.
Tubo 6 foi observado uma melhor solubilidade o éter é o solvente que conseguiu fazer a solubilidade do lipídeo.
 
Referências:
Aulas gravadas grupo ser educacional
https:edisciplinas.usp.br
https://cursobioquimica.iq.usp.br
 artigo determinação de açucares redutores, açucares solúveis totais e sacarose em vinhaças da cana-de açúcar doi 10.37885/210303948