RESUMÃO - área 1

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RESUMÃO ÁREA 1 
PARASITO CLÍNICA – TEÓRICO-PRÁTICA 
 
TRÊS FASES DOS EXAMES LABORATORIAIS: 
 
PRÉ-ANALÍTICA ANALÍTICA PÓS-ANALÍTICO 
• Orientação ao paciente: 
Não utilizar certos 
medicamentos – 
Antidiarreicos e 
Antibióticos. 
• Coleta: não utilizar 
produtos químicos que 
possam prejudicar a 
amostra 
• Transporte 
• Conservação: Fechar bem 
o recipiente da amostra 
• Registro da amostra – 
identificação: Registro do 
paciente: nome, 
data/local da coleta e 
sintomatologia do 
paciente. 
• Exames macroscópicos: 
Análise do material 
biológico quanto ao odor, 
consistência, presença de 
sangue/muco ou Vermes 
Adultos. 
• Processamento da 
amostra: escolha da 
metodologia e Controle 
de Qualidade 
• Exame microscópico: 
utilizando coloração: 
Visualização, identificação 
e quantificação das 
estruturas. 
• Emissão do laudo: Deve 
conter os achados macro 
e microscópico, 
especificando estágio 
morfológico e o nome do 
parasito. 
 
POSITIVO NEGATIVO 
Presença de ovos de... 
Presença de larvas de... 
Presença de cistos de... 
Presença de verme adulto de... 
Não foram observados ovos, 
larvas e cistos de parasitas. 
TUDO que for encontrado no microscópio deve ser relatado no diagnóstico. 
 
 
 
AMOSTRAS: 
1. Número de amostras: varia de 6 a 3 amostras, em dias alternados num período de 14 ou 10 dias; 
2. Em quanto tempo, após ser evacuada, uma amostra fecal formada, pastosa e líquida, deve ser 
examinada? 
• Amostra fecal formada: examinar em até 24 horas. 
• Amostra fecal pastosa: examinar uma hora após a evacuação. 
• Amostra fecal líquida: examinar em até 30 minutos após a evacuação. 
 
3. Tipos de amostras: FEZES 
• Diarreicas: 
- Análise pelo método direto (lâmina com amostra fresca), para visualização do movimento 
de trofozoítos; 
- Concentração da amostra para visualização de parasitos; 
- Coloração permanente; 
- Análise não pode ultrapassar 30 minutos da coleta, caso contrário necessário usar métodos 
de conservação. 
 
• Esteatorréicas: análise pela técnica de Ritchie; 
 
• Formadas: análises diversas 
 
• Pastosas: análise não pode ultrapassar 1 hora da coleta. 
 
 
 
 
4. Conservação: PRESERVAR A MORFOLOGIA E PREVENIR DESENVOLVIMENTO DE ALGUNS OVOS OU LARVAS. 
a. Temporária – Refrigeração (3° a 5°C) em recipientes fechados (evitar dessecamento). Ovos, 
cistos viáveis por alguns dias, já larvas de S. stercoralis e Ancilostomídeos tornam-se inviáveis 
para pesquisa; 
b. Permanentes – Soluções de formaldeído, álcool polivinílico (PVA). 
 
5. Coloração: 
• Temporária – solução de iodo (Iodo De Lugol). Coloração de ovos, cistos, larvas e trofozoítos. 
 
• Permanente – método do Tricrômio (mais simples), hematoxilina. Identificação de 
trofozoítos, ocasionalmente cistos e confirmação de espécie. 
 
6. Outras amostras: 
• Urina 
 
• Escarro – larvas de Ascaris lumbricoides, S. stercoralis e de Ancilostomídeo; protozoários como 
Entamoeba histolytica. Examinado a fresco com solução de lugol; 
 
• Swab Anal – Enterobius vermicularis, devido à deposição de ovos na região perianal; 
 
• Secreção Vaginal – T. vaginalis 
 
• Conteúdo Duodenal – larvas de S. stercoralis 
 
TÉCNICAS (INCLUEM CONDUTAS, REAGENTES E INSTRUMENTOS) 
 1. DE FLUTUAÇÃO: baseia-se na diferença de densidade entre os ovos de helmintos, cistos de protozoários 
e a solução (ZnSO4 ou sacarose) de elevada densidade. Divide-se em simples ou por centrifuga. 
✓ Vantagens: formação na superfície do tubo de uma membrana clara com poucos detritos 
fecais e a remoção seletiva de ovos e cistos, mesmo quando em pequeno número no bolo 
fecal. 
✓ Desvantagens: baixa especificidade para ovos “pesados”, a densidade dos reagentes pode 
alterar a parede dos ovos e dos cistos – dificultando a identificação. 
✓ Técnica de flutuação mais utilizada: de Faust et al. 
 
• FAUST et al. – centrifugo-flutuação em SULFATO DE ZINCO (ZnSO4): Estruturas leves, alta carga 
parasitária; NÃO usar fezes esteatorréicas! 
 
 
 
2. DE SEDIMENTAÇÃO: baseia-se na sedimentação pela gravidade ou por centrifugação. 
✓ Desvantagens: grande quantidade de detritos fecais no sedimento. 
✓ Técnicas de sedimentação mais usadas: Lutz (Hoffman, Pons & Janer - HPJ); Ritchie. 
• LUTZ ou HPJ – sedimentação espontânea em água. 
 
3. MÉTODOS PARA O ISOLAMENTO DE LARVAS DE NEMATÓIDES: pesquisa de estágios de evolução de 
larvas de S. stercoralis e de ancilostomídeo. 
✓ Material biológico analisado: fezes e escarro 
✓ Material fecal NÃO preservado (fezes/escarro frescos) 
• BAERMANN e MORAES – Termotropismo e hidro tropismo positivo de larvas - Utiliza água aquecida 
 
 
 
4. MÉTODO DE GRAHAM (OU FITA ADESIVA OU ANAL SWAB) 
✓ Especialmente para E. vermicularis 
✓ Visualização de ovos até vermes adultos; 
✓ Coleta ideal: pela manhã, antes da higiene da área, sem ter “ido aos pés”. 
 
MÉTODOS QUANTITATIVOS: 
Os únicos parasitas humanos para os quais é possível correlacionar a produção de ovos com a carga 
parasitária são Ascaris lumbricoides, Trichuris trichiura, ancilostomídeos (Ancylostoma duondenale e 
Necator americanus) e Schistosoma mansoni. 
 
• KATO-KATZ – quantificação de ovos de helmintos em amostras fecais. 
✓ Usado para determinar a intensidade da infecção; 
✓ NÃO há como usar fezes diarreicas; 
✓ SEM emprego de concentração de amostras (DIRETO), com baixa quantidade de fezes 
(50/60mg); 
✓ Lamínulas de celofane mergulhadas em solução de verde de malaquita e glicerina (24h antes); 
Verde de malaquita: confere proteção aos olhos durante o exame microscópico 
Glicerina: conserva as fezes e CLARIFICA as formas parasitárias. 
✓ Laudo: nº de ovos encontrados x 24 (fatos) = ovos de ....../g fezes (OPG); 
✓ Ovos por grama (OPG) é o número de ovos por grama de fezes e pode ser definido como um 
índice de densidade dos ovos nas fezes. 
 
 
 
 
 
 
NEMATÓIDES INTESTINAIS: 
Ascaris lumbricoides, Trichuris trichiura, Enterobius vermicularis, Ancilostomídeos, Strongyloides stercoralis 
PRÁTICA: TÉCNICA DA SEDIMENTAÇÃO ESPONTÂNEA EM ÁGUA (HPJ) 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
TREMATÓDEOS DO FÍGADO, PULMÕES E SANGUE: 
Fasciola hepática e Schistosoma mansonia 
PRÁTICA: SEDIMENTO FECAL DE HELMINTOS 
Método de KATO-KATZ 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
CESTOIDES INTESTINAIS 
Taenia solium, Taenia saginata, H. nana e H. diminuta 
PRÁTICA: SEDIMENTO FECAL DE HELMINTOS