setor de parasitologia - aula 5

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LAC – setor de Parasitologia 
Objetivo: diagnóstico das principais parasitoses intestinais e sanguíneas 
Tipos de exames laboratoriais 
 
Exames diretos: 
1) Exames macroscópicos: visualização de vermes adultos ou proglótides de Taenia sp expulsos nas 
fezes ou vômitos 
 
Ascaris lumbricóides 
Taenia sp 
Schistosoma mansoni - esquistossomose 
2) Exames microscópicos: O exame de esfregaço a fresco pelos métodos diretos é o método mais fácil 
e, talvez, o mais usado na rotina do laboratório, permitindo visualizar os estágios de diagnóstico dos 
protozoários (trofozoítas e cistos) e dos helmintos (ovos, larvas e pequenos adultos). Para uma 
diagnose absoluta é necessário observar o parasita em um de seus estágios de evolução. O simples 
exame microscópico é, em muitos casos, suficientemente para o diagnóstico. 
Giardia lamblia: 
trofozoíta e 
cisto 
Cisto de Ascaris 
Entamoeba sp 
Plasmodium falciparum - 
malária 
Tripomastigota de 
Trypanosoma cruzi 
Trichomonas vaginalis 
Exames indiretos: 
1) Pesquisa de anticorpos 
2) Biologia Molecular 
COMO ESCOLHER O EXAME ? 
Custo/risco X Benefício 
Desempenho (sensibilidade, especificidade) 
é a probabilidade de um teste dar positivo 
na presença da doença, isto é, avalia a 
capacidade do teste detectar a doença 
quando ela está presente. 
 
-> Necessário para o diagnóstico de doença 
potencialmente gravE 
-> Afastar doenças em fase inicial do 
diagnóstico 
 
é probabilidade de um teste dar 
negativo na ausência da doença, isto é, 
avalia a capacidade do teste afastar a 
doença quando ela está ausente. 
 
-> Confirmar um diagnóstico sugerido 
por outros dados 
 
Existem muitos erros no diagnóstico, devido a: 
 
o Mau treinamento 
o Escolha do método (baixa sensibilidade) 
o Inadequação do método 
o Leitura parcial da lâmina 
o Sobrecarga de trabalho 
 
o característica do parasita (por ex: baixa carga 
parasitária) 
 
1) Padronização dos procedimentos de 
coleta, 
2) Orientação correta do paciente, 
3) Padronização da análise do material, 
4) Leitura de mais lâminas, 
5) Evitar erro humano (no de lâminas por 
profissional compatível com a qualidade, 
aprimoramento profissional, supervisão) 
correção 
Exame parasitológico de fezes - Coleta 
 Instruções impressas 
 
Frasco: limpo, seco, boca larga, com capacidade adequada, tampa de rosca 
∗ obs: A tampa é particularmente importante (abrir, fechar e vedar) 
 
Amostra não pode ser contaminada com água ou urina 
∗ obs: A água pode conter microorganismos de vida livre e a urina destrói a mobilidade e os trofozoitas; 
 
Após coleta, o frasco deve ser transportado dentro de um saco plástico 
 
Transporte: cuidado, produto representa risco potencial de infecção (bactéria, vírus, parasitas) 
-Trofozoitas – amostras líquidas, recentes- 30min 
-Trofozoitas e cistos – amostras pastosas - 60min 
-Ovos, larvas, cistos – amostras fecais formadas (24h) 
∗ não se recomenda guardar amostras recentes em estufas e geladeiras 
∗ rejeitar amostras coletadas sem as especificações solicitadas 
-Amostras com conservador - 4 semanas ou mais. 
Estabilidade da amostra coletada 
Entregar de preferência imediatamente 
- Fezes – riscos de ingestão (ovos e cistos) , penetração na pele (larvas infectivas) 
- Lab Nível 2, uso de óculos de segurança, luvas e avental durante o processamento da amostra 
- Uso de capelas 
- Não comer, beber, fumar, usar cosméticos ou manipular lente de contato na área de trabalho 
- Descontaminar superfície de trabalho – 1 vez ao dia 
- Cobrir ferimentos 
- Remoção das luvas e lavagem das mãos – após manipulação das fezes 
Biossegurança 
Exame direto qualitativo - Técnica de Concentração por Sedimentação (por 
gravidade) Espontânea (Método de Hoffmann, Pons e Janer) : Indicada para o 
diagnóstico de ovos, oocistos e cistos em fezes, principalmente para nematóides cujos 
ovos são pesados 
Materiais e reagentes 
Métodos qualitativos: 
• Centrífugo - sedimentação pela formalina-éter, (Ritchie, 1948); 
• Centrífugo-flutuação: Indicada para o diagnóstico de ovos de helmintos 
e oocistos de coccídeos. 
 
Métodos quantitativos: 
• Método modificado de Kato-Katz (Kato,1960; Katz, Chaves e Pellegrino, 
1972); 
• Método de Baermann (1917) e Moraes (1948): Indicada para diagnóstico 
de larvas de estágio 1. 
• Método de Rugai, Mattos & Brisola (1954). 
• Método de McMaster: Constitu-se também uma técnica de OPG, 
empregada no diagnóstico de nematóides gastrintestinais 
Outros Métodos 
soro Lugol 
fezes 
Esfregaço de sangue + giemsa 
Cisto de Entamoeba 
Artefatos - microscopia 
Trofozoíto de E. hystolitica 
Célula epitelial 
Alga x cistos de helminto Esporo de fungo x cistos de helminto 
Pêlo ou larva ? Planta ou proglótide ? 
Automação no setor de Parasitologia 
DIFÍCIL => poucos laboratórios são automatizados 
Este equipamento reduz o custo da análise microscópica dos sedimentos concentrados das fezes, 
aumenta a segurança dos funcionários, reduz o tempo da análise, aumenta a clareza e os detalhes 
morfológicos. 
Existem aparelhos semi – automáticos que auxiliam no preparo do material e da lâmina para 
observação microscópica (que ainda depende do olho humano), diminuindo assim o tempo de preparo 
e o contato manual com a amostra. 
FE2 Series Workstation & Parasepâ Intestinal Parasite Concentrators/Maxifilter (DiaSys 
Corporation) 
Funcionamento do equipamento: com apenas um toque em um botão, em 5 segundos, o equipamento 
aspira, ressuspende o sedimento, cora e deixa a amostra pronta para análise. Como acessório, ele 
possui um Lâmina óptica para leitura das amostras preparadas, que é colocada no 
microscópico. 
Existem problemas na automação deste setor ???? 
ARTEFATOS 
FALSOS POSITIVOS 
(ALTA SENSIBILIDADE E 
 POUCA ESPECIFICIDADE)