Exames de Parasitoses

Prévia do material em texto

Exames de Parasitoses 
Relação de Parasitoses e 
Pobreza 
 As doenças parasitárias são relacionadas 
à pobreza, uma vez que elas geralmente 
ocorrem em países cujas condições de 
saneamento, acesso à boas condições de 
moradia e trabalho e promoção de saúde 
são ineficazes ou inexistentes. Além de 
serem deixadas de lado pelas grandes 
empresas de pesquisa e tratamento 
médico, devido à falta de retorno 
financeiro. 
 
Doenças Tropicais 
Negligenciadas (Parasitoses) 
 
 
 
 
 
 
 
Diagnósticos para Parasitoses 
- Métodos Parasitológicos: exames que 
demonstram a presença o parasita. 
- Métodos Imunológicos: exames que 
pesquisam antígenos do parasita. ou 
anticorpos produzidos frente à infecção. 
- Métodos Moleculares: Muito caro e 
pouco aplicado. 
 
Tipos de Parasitos 
- Helmintos 
- Protozoários 
 
- Doença de Chagas 
- Leishmaniose 
- Esquistossomose 
- Ascaridíase 
- Ancilostomose 
- Tricuríase 
- Teníase e Cisticercose 
- Filariose Linfática e Etc. 
Formas Encontradas 
Helmintos: Ovos e Larvas 
Protozoários: Oocistos, Cistos e Trofozoítos. 
 
Principais Parasitoses Intestinais do Brasil 
Protozoários: amebíase (Entamoeba hystolitica), giardíase (Giardia duodenalis), 
Criptosporidíase (Cryptosporidium spp.), ciclosporíase (Cyclospora spp.), isosporíase 
(Isospora spp.) 
 Helmintos:esquistossomose (Schistossoma mansoni), fasciolíase (Fasciola hepática), 
teníase/cisticercose (Taenia spp.), ascaridíase (Ascaris lumbricoides), ancilostomose, 
enterobíase. 
 
(crianças são mais expostas às fontes de exposição, e, depois disso, provavelmente não 
vai se infectar novamente, devido à presença de resposta imune eficaz).
Casos Particulares: 
- Enterobius vermiculares: Preferível o Swab Anal 
- Isospora belli 
- Cryptosporidium parvum 
- Cyclospora cayetanensis 
- Entamoeba coli 
- Endolimax nana 
 
 
Se junto com diarreia crônica em imunossuprimidos, 
pedir Pesquisa por Oportunistas. 
São comuns de encontrar e não apresentam riscos. 
Observação dos parasitas em suas formas encontradas nas fezes. 
 
Fatores que podem alterar o 
resultado 
A positividade do exame vai depender de 
diferentes fatores: 
 Estágio da infecção (muitas vezes o 
teste dá negativo pois a infecção é 
muito primária, levando a um falso 
negativo); 
 Eliminação intermitente de formas 
de resistência (não haverá 
liberação de formas parasitárias o 
tempo todo, o que pode causar um 
falso negativo); 
 Intensidade do parasitismo (quanto 
maior for a carga parasitária, maior 
será a taxa no exame); 
 Porção da amostra fecal analisada 
(muitas vezes os ovos/cistos não se 
distribuem de forma homogênea no 
material fecal, podendo levar a um 
falso negativo). 
 
 
Coleta do Material 
- Frasco limpo, seco e hermeticamente 
fechado após coleta. 
- Coleta em penico ou recipiente 
adequado e seco, qualquer horário do dia. 
- Evitar contaminação por urina, terra e 
água. 
- Quantidade de 10mL (colher de sopa). 
 
Conservação do Material 
- Encaminhar em até duas horas para 
laboratório. 
- Caso não seja possível, refrigerar as 
fezes líquidas por até 1 hora e as sólidas 
por até 24 horas. 
- Pode-se utilizar conservantes, como o 
formol. Sendo a proporção de 1:3. 
 
Processamento e Análise 
 
Exame Macroscópico 
- Feito com fezes frescas 
- Observação de cor e odor 
- Presença de sangue ou muco 
- Presença de proglotes ou vermes 
adultos 
- Observar consistência das fezes 
Exame Microscópico Direto 
- Lâmina + solução salina + fezes + 
lamínula (três vezes) 
- Baixa sensibilidade 
- Usado para procura de trofozoítos 
(Ameba e Giárdia) 
Se encontrado algo, pode-se corar para 
diferenciar parasitos! 
Coloração: útil para diferenciação de 
cistos, trofozoítos e larvas; ovos podem 
ser identificados sem corantes. 
 
Métodos de Concentração 
1 – Flutuação (Willis-Mollay) 
- Empregam reagentes de densidade 
mais alta que ovos, oocistos e cistos, que 
por sua vez flutuam na superfície das 
soluções. 
- Observação de cistos, ovos leves e 
larvas. 
 
2 – Sedimentação (Hoffman, Pons e 
Janer) 
- Sedimentação por gravidade ou por 
centrifugação, o que favorece a 
deposição das formas parasitárias 
- Observação de ovos pesados (Ascaris e 
Schistosoma) 
 
 
3 – Termo-Hidrotropismo 
(Baermann-Moraes) e (Rugai) 
- Larvas tem tendência a ir para regiões 
mais quentes 
- As fezes precisam estar frescas 
- Observações de larvas na área 
aquecida 
 
4 – Quantitativo (Kato-Katz) 
- Permite saber a quantidade 
- Recomendado pela OMS para 
diagnóstico da Esquistossomose e de 
Parasitoses transmitidas pelo solo 
 
5 – Fita Gomada (Graham) 
- Feito com uma fita adesiva transparente 
- Coleta ao amanhecer, antes da higiene 
pessoal 
- Para diagnóstico da enterobíase 
(Enterobius vermicularis) 
 
Resultado Final 
O laudo deve apresentar: 
- Métodos executados 
- Observação sobre o número de 
amostras colhidas 
- Aspecto macroscópico das fezes 
- Achados patogênicos e não-patogênicos 
- Formas evolutivas encontradas 
- Nome científico dos parasitos 
encontrados 
 
 
 
Realizado quando não há perda de sangue evidente para o médico e há suspeita de 
doenças ligadas a isto. 
Doenças Relacionadas 
- Esofagite, 
- Úlceras pépticas, 
- Gastrite, 
- Doença intestinal inflamatória, 
- Ectasias vasculares, 
- Gastropatia hipertensiva porta, 
- Ectasias vasculares antrais gástricas, 
- Câncer colorretal, 
- Pólipos do sistema digestório, 
- Diverticulite e colite, 
- Doença de Crohn, 
- Traumatismos e diáteses hemorrágicas, 
- Amiloidose, 
- Hérnia de hiato, 
- Neurofibromatose, 
- Sarcoma de Kaposi 
- Hematobilia. 
 
Métodos de Análise 
Baseado em Guáiaco (PSOFg) 
precisa ser feita com três amostras 
colhidas em casa. 
- Necessário fazer dieta, evitando carne e 
alimentos que podem ser corados 
- Pode ser realizado com fezes 
conservadas 
 
Imunoensaios (FIT) 
- Não necessita de dietas restritivas 
- Precisa ser realizado logo após coleta 
- Não pode ser realizado com fezes 
conservadas 
- Mais específico para o sangue humano 
 
Orientações Comuns 
Evitar fármacos como corticoesteroides e 
AINEs 
Colher 3 amostras em horários alternados
 
Observação dos parasitas presentes no sangue. 
 
Método a Fresco (Direto) 
- Sangue coletado no nódulo da orelha, 
punção da polpa digital ou punção venosa 
- Uso de Lâmina e Lamínula 
- Pesquisa de tripanossomos e 
microfilárias 
- Detecta forma e movimento 
- Alta sensibilidade em altas cargas 
parasitárias 
- Requer rápido processamento 
- Não permite detalhamento morfológico 
- Sensibilidade reduzida em baixas cargas 
parasitárias 
- Necessita de repetições por ser em 
pequenas amostras 
 
Esfregaço Delgado 
- Sangue coletado e gotejado na lâmina 
- Uso de corantes: Giemsa e Leishman 
- Usado em diagnósticos morfológicos 
- Alta especificidade 
- Baixa sensibilidade 
Esfregaço Espesso 
- Sangue coletado no nódulo da orelha, 
punção da polpa digital ou punção venosa 
- De 3 a 4 gotas na lâmina e unidas 
- Realização de desemoglobinização 
- Corantes: Giemsa ou Leishman 
- Padrão ouro para descoberta de Malária 
- Alta sensibilidade 
- Requer experiência do analista 
- Pouco tempo até a fixação de 
hemoglobinas 
 
Métodos de Concentração 
- Aumentam a sensibilidade 
- Principalmente para achar e 
tripanossomos e microfilárias quando 
ocultos nos métodos diretos 
Método de Strout 
- Mistura de sangue venoso, água 
destilada e solução salina 
- Centrifugação com hemólise 
- Sobrenadante de parasitas de hemácias 
Exame do Creme Leucocitário 
- Uso de 10mL de sangue venoso em 
tubo com anticoagulante 
- Centrifugações múltiplas para separação 
do plasma, creme leucocitário e eritrócitos 
 
Teste do Microhematócrito 
- Uso de tubo capilar 
- Centrifugação deste tubo 
- Usado para diagnóstico de Chagas 
Teste da Membrana Filtrante 
- Uso de membranasemipermeável 
- Ideal para encontrar microfilárias 
 
Métodos Indiretos 
Métodos mais usados em centro de 
pesquisas e de referência 
- Possuem alta especificidade 
- Maior sensibilidade 
- Permite identificar e isolar espécie 
- Alto custo 
- Alto risco de acidentes laboratoriais 
- Resultados são mais demorados 
Xenodiagnóstico Direto 
- Os triatomíneos são colocados em 
contato direto com a pele do paciente, e 
pode causar irritação local com máculas 
ou pápulas pruriginosas e, raramente, 
choque anafilático 
Xenodiagnóstico Indireto 
- O sangue venoso é colhido do paciente 
e colocado num artefato de látex 
- Em uma máquina com água quente e os 
triatomíneos 
- Triatomíneos entram em contato com o 
sangue no preservativo 
Hemocultura 
- De difícil aplicabilidade 
- Bom para detecção do T. cruzi e 
Leishmania 
Inoculação em Animais 
- Inocula o sangue em animais para 
pesquisa 
- Bom para detecção do T. cruzi e 
Leishmania 
 
Outros Exames 
Hemograma 
- Sinais sugestivos, como Eosinofilia, 
Pancitopenia e Anemias 
Imunoensaios 
- Verificação de parasitos e resposta 
imunológica 
- ELISA e Imunofluorecência 
Exames Moleculares (PCR) 
- Detecção dos Ácidos Nucleicos dos 
parasitas 
- Pouco usados por serem caros e de 
difícil manejo 
 
 
 
 
 
Doenças de Chagas 
Agente etiológico: Trypanosoma 
(Schizotrypanum) cruzi 
 
Fase Aguda 
- Até 30 Dias: Exame a fresco (também 
pode se utilizar os esfregaços, porém com 
menor sensibilidade) 
- Após 30 Dias: Métodos de concentração 
(Strout, Microhematócrito ou Creme 
leucocitário) 
Fase Crônica 
- Padrão-Ouro (Combinação de dois): 
 Hemaglutinação Indireta (HAI) 
 Reação de Imunofluorecência 
Indireta (RIFI) 
 Enzyme linked immunosorbent 
assay (ELISA) 
- Pode-se usar também: 
 Xenodiagnóstico (sens. 55%) 
 Hemocultura (sens. 69%) 
 Inoculação em camundongos 
 
 
 
Malária 
Agentes etiológicos: Plasmodium 
falciparum (BR), Plasmodium malariae, 
Plasmodium vivax (BR) e Plasmodium 
ovale 
Identificação 
- Padrão-Ouro: Esfregaço Espesso 
- Pode-se usar junto o Esfregaço Delgado 
Critérios para Diferenciação 
- Formas amebóides encontradas no 
interior das hemácias; 
- Características do núcleo, do 
protoplasma e pigmento constituem 
elementos essenciais nesse processo; 
- Tamanho e quantidade desses 
elementos; 
- Alterações produzidas no glóbulo 
parasitado. 
Método tradicional de avaliação 
semiquantitativa (em cruzes) 
 
Teste Rápido 
- Detectam antígenos específicos dos 
parasitos de malária humana, que estão 
presentes no sangue 
- Identifica a espécie de plasmódio 
 
 
Leishmaniose Visceral 
Agente etiológico no Brasil: Leishmania 
(Leishmania) infantum 
 
Diagnóstico Parasitológico 
Tipos de punção para esfregaço delgado 
corado pela técnica de Giemsa: 
- Punção aspirativa esplênica: 93-99% 
- Punção aspirativa de medula óssea: 53-
83% (Espécime clínico) 
- Biópsia hepática: 80% 
- Punção aspirativa de linfonodos: 53-65% 
Diagnóstico Sorológico 
- Anticorpos anti- Leishmania por reação 
de imunofluorescência indireta 
- Anticorpos anti-Leishmania por teste 
imunocromatográfico rápido (It-Leish ou 
OnSite Leishmania) 
 
 
 
 
 
 
 
 
Leishmaniose tegumentar 
americana 
Agente etiológico: 
Leishmania amazonenses 
Diagnóstico Parasitológico 
- Observação Direta a partir de 
escarificação, biópsia com impressão por 
aposição e punção aspirativa 
- Isolamento em cultivo in vitro: Cultivo da 
biópsia da borda da ulceração 
Diagnóstico Imunológico 
- Teste intradérmico (Intradermoreação de 
Montenegro ou da leishmanina) 
- Testes sorológicos (Pesquisas) 
Diagnósticos Moleculares 
- PCR (Pesquisas)