PATOLOGIA CLINICA

Prévia do material em texto

PATOLOGIA CLÍNICA 
Semana n°/ Tema 
1 Apresentação do plano de ensino da disciplina. Hematopoese e Hemocaterese. 
Eritrograma. 
2 Anemias e Policitemias. 
3 Leucograma. 
4 Interpretação do Leucograma. 
5 Plaquetas e Fatores de Coagulação. 
6 Distúrbios da Coagulação Sanguínea. 
7 Enzimologia e Bioquímica clínica: introdução. 
8 Provas de função hepática. 
9 Provas de função renal. 
10 Urinálise. 
11 Testes pancreáticos. 
12 Minerais: cálcio, fosfato, magnésio, cobre, cobalto e selênio. 
13 Eletrólitos: sódio, potássio, cloreto, gás carbônico total e fluidoterapia. 
14 Distúrbios hidro-eletrolíticos. 
15 Endocrinologia Diagnóstica. 
16 Avaliação dos fluídos e efusões. 
17 Testes intestinais. 
Assunto teórico Assunto prático 
19/08 
 
21/08 
Apresentação do Plano de Ensino. 
Importância dos exames laboratoriais na clínica. Coleta de 
materiais para exames laboratoriais em geral. Uso de 
anticoagulantes e suas especificidades. 
Fundamentos de confecção e coloração de 
esfregaços hematológicos (coloração de May-
Grünwald e Giemsa). 
26/08 
29/08 
Hematopoiese. Fatores influentes. Síntese de hemoglobina. Técnicas hematológicas: determinação do 
volume globular. 
02/09 
04/09 
Noção de Eritron. Degradação de hemoglobina. Icterícias. Técnicas hematológicas: Dosagem de 
hemoglobina. Noções de espectrofotometria. 
Cálculo do fator da hemoglobina. 
09/09 
11/09 
 
Alterações Eritrocitárias. 
Diagnóstico hematológico. Anemias Regenerativas (Pós-
hemorrágicas e Hemolíticas). 
Técnicas hematológicas Uso da câmara de 
Neubauer: hematimetria. 
16/09 
 
18/09 
Diagnóstico hematológico. Anemias Arregenerativas 
(Carenciais e Medulares). 
Cálculo dos índices hematimétricos – VGM e 
CHGM, hematoscopia, contagem de 
reticilócitos), 
23/09 
 
25/09 
Policitemias. 
Classificações. Interpretação clínico-laboratorial. 
 
Pesquisa de hemoparasitos – microfilárias, 
através do exame direto e pela técnica de Knott 
Modificado). 
 
30/09 
02/10 
PROVA TEÓRICO /PRATICO Uso da câmara de Neubauer: plaquetometria 
07/10 
09/10 
Leucopoiese. Fórmula leucocitária de Schilling. Valores 
relativos e absolutos. Função e cinética leucocitárias. 
Uso da câmara de Neubauer: leucometria 
global. 
14/10 
16/10 
Interpretação do leucograma 
Respostas leucocitárias espécie-específicas. 
 
Leucometria relativa e absoluta e determinação 
do fibrinogênio. 
21/10 
23/10 
Vista de provas. Interpretação laboratorial do plaquetograma. 
Hemostasia primária / Hemostasia secundaria 
Hemograma completo e exames 
complementares em amostras de sangue 
de bovinos, caninos, equinos e felinos. 
4/11 
06/11 
Urinálise (EAS): Exames físicos e químicos. Interpretação clinico-laboratorial – 1ª parte Hemograma completo e exames 
complementares em amostras de sangue 
de bovinos, caninos, equinos e felinos. 
11/11 
13/11 
Urinálise (EAS): Cont. Exames químicos e sedimentoscopia. Interpretação clinico-
laboratorial. 2ª parte 
EAS em amostras de urina de bovinos, caninos, equinos 
e felinos. 
18/11 
20/11(f) 
Provas de função renal (uréia, creatinina, relação proteína/creatinina urinária, sódio, 
potássio, cloreto, cálcio, fósforo). 
EAS em amostras de urina de bovinos, caninos, equinos 
e felinos. 
25/11 
27/11 
Provas de função hepática. Icterícias. Bilirrubinemias e Enzimologia Clínica. 
Proteinograma. 
 
Hemograma completo, EAS e exames complementares 
(incluindo bioquímicos) em amostras de sangue de 
bovinos, caninos, eqüinos e felinos. 
02/12 
04/12 
PROVA TEÓRICO PRATICO (OFICIAL) Hemograma completo, EAS e exames complementares 
(incluindo bioquímicos) em amostras de sangue de 
bovinos, caninos, equinos e felinos. 
16/10 
18/10 
PROVA TEÓRICA SUBSTITUTIVA 
REPOSIÇÃO 
• Precisamos de um sábado____________ 
 
• Aulas praticas: uso de EPI 
• Amostras (sangue /urina ) 
 
• Bibliografia: 
 
Coleta de materiais para exames 
laboratoriais(Hemograma e 
bioquimica). Uso de 
anticoagulantes e suas 
especificidades. 
 
Perguntas: 
• Qual exame? 
– Hemograma 
– Bioquímica 
 
• Que tipo de amostra? 
– Sangue total 
– Soro/ plasma 
 
• Local de punção? 
– Pequenos animais 
– Grandes animais 
– Silvestres 
• Envio para o laboratório 
– Com refrigeração/ sem refrigeração 
• SANGUE TOTAL: com anticoagulante 
 
• SORO: sem anticoagulante 
Que tipo de amostra? 
 
SANGUE COM 
EDTA 
• SANGUE TOTAL – COM ANTICOAGULANTE 
• COM ESFREGAÇO 
• SEM ESFREGAÇO 
• IMPORTÂNCIA DO ESFREGAÇO 
HEMATOLÓGICO 
– NO HEMOGRAMA 
– NA PESQUISA DE HEMOCITOPARASITAS 
 
COLHEITA DE AMOSTRA 
 CONFECÇÃO DO ESFREGAÇO 
HEMATOLÓGICO 
•MATERIAL NECESSÁRIO 
• TEMPO DE REALIZAÇÃO 
–SANGUE SEM ANTICOAGULANTE 
– SANGUE COM EDTA 
– SANGUE CAPILAR 
COLHEITA DE AMOSTRA 
• INORGÂNICOS 
- EDTA – ÁCIDO ETILENO DIAMINOTETRACÉTICO 
– SAL DE Na+ OU DE K+ 
– BACTERIOSTÁTICO 
– INIBIÇÃO PARCIAL DA ATIVIDADE PLAQUETÁRIA 
- FLUORETO DE SÓDIO 
– INIBIÇÃO ENZIMÁTICA DA VIA GLICOLÍTICA 
– HEMÓLISE 
– BIOQUÍMICA SECA 
- CITRATO DE SÓDIO 
– TESTES GLOBAIS DA COAGULAÇÃO 
– COMBINAÇÕES EM BOLSAS DE TRANSFUSÕES 
 
TIPOS DE ANTICOAGULANTES 
 
Os tubos EDTA VACUETTE® podem ser utilizados diretamente 
em analisadores de amostras, sem serem abertos. Eritrócitos, 
leucócitos e trombócitos são estáveis em sangue total 
com EDTA por até 24 horas. O esfregaço sangüíneo deve ser 
feito dentro de 3 horas após a coleta do sangue. Os 
tubos EDTA VACUETTE® são utilizados para análise de sangue 
total em laboratórios clínicos. 
 
 
Tubos EDTA VACUETTE® 
As paredes internas dos tubos são 
revestidas com EDTA K2 ou EDTA K3. O 
tubo é também disponível com uma 
solução de EDTA 8%. O EDTA liga-se aos 
íons cálcio, bloqueando assim a cascata 
de coagulação. 
 
 
Tubos para Glicemia VACUETTE® 
Os tubos para glicemia são disponíveis com 
diferentes aditivos. Os tubos contêm um 
anticoagulante e um estabilizador, por exemplo, 
EDTA e fluoreto de sódio / oxalato de potássio e fluoreto de sódio 
/heparina sódica e fluoreto de sódio / heparina lítica e iodoacetato. 
Os tubos para glicemia VACUETTE® são indicados para análises de 
glicemia e lactato. 
Tubos para Coagulação VACUETTE® e 
tubos CTAD VACUETTE® 
Os tubos para coagulação contêm em seu interior, solução 
tamponada de citrato trissódico. Tanto as concentrações de 
citrato 0,109 mol/l (3,2%) ou 0,129 mol/l (3,8%) estão 
disponíveis. A escolha da concentração varia mediante as 
políticas dos laboratórios. A hemodiluição consiste em 1 parte 
de citrato para 9 partes de sangue.Os tubos CTAD contêm 
além de solução tamponada de citrato, teofilina, adenosina e dipiridamol.Os tubos para 
coagulação VACUETTE® e tubos CTAD são utilizados para testes de coagulação. 
Tubos para Sorologia VACUETTE® 
Os tubos para sorologia são revestidos internamente 
com partículas de sílica micronizada, as quais ativam a 
coagulação quando os tubos são gentilmente 
invertidos. 
Os tubos para sorologia com gel contêm uma barreira 
de gel presente no fundo do tubo. Este material possui 
densidade intermediária entre o sangue coagulado e o 
soro. Durante a centrifugação, a barreira de gel move-
se para cima posicionando-se entre o soro e o coágulo, 
onde forma uma barreira estável, separando o soro dos 
outros componentes celulares. 
O soro pode ser utilizado diretamente do tubo de coleta, eliminado a necessidade de 
transferência para outro recipiente. Esta barreira permite a estabilização da maioria 
dos parâmetros no tubo primário, sob as condições dearmazenamento 
recomendadas, por até 48 horas.Os tubos para sorologia com esferas contêm esferas 
de poliestireno, as quais estão presentes no fundo do tubo.As esferas 
possuêm densidade intermediária entre o coágulo e o soro. Durante a centrifugação, 
as esferas movem-se para cima posicionando-se entre o soro e e o coágulo. 
 
Local de punção? 
 
Pequenos animais 
Grandes animais 
Silvestres 
 
• Cão/ felinos: cefálica , jugular, safena 
• Bovino : Jugular, mamária 
• Equino: Jugular 
• Suinos: Cava anterior, Marginal da orelha 
• Coelhos: Marginal da orelha 
• Aves: a veia jugular direita, a veia ulnar (ou da 
asa) e a metatarsiana medial 
• Cágados e os Jabutis : Jugular/ veia caudal 
 
 
– Jejum 
– Sedativos 
–Colheita rápida, evitar garrote prolongado 
– Eliminar causas de hemólise: seringas molhadas, 
agitação, calor... Descarga violenta 
–Quantidade de sangue 
 
CUIDADOS NA COLHEITA 
DE AMOSTRA 
 
QUANTO DE SANGUE COLETAR? 
 
As aves, em geral, possuem o volume sanguíneo correspondente a 10% de seu peso, 
nestes casos o volume coletado deve ser de até 10% desse volume (equivalente a 1% do 
peso total do animal), ou seja, um papagaio com peso de 350 gramas poderá ser 
submetido a uma coletada de no máximo 3,5 ml de sangue. 
 
 
Em répteis o volume sanguíneo é, aproximadamente, de 5 a 8% do peso corpóreo. É 
possível coletar, com segurança até 10% do volume total sanguíneo. Por exemplo, um 
réptil com 100 gramas poderá ser submetido a uma coleta de 0,5 a 0,8 ml de sangue. 
 
Para mamíferos silvestres as instruções são as mesmas utilizadas para cães e gatos, 
coletas com até 1% do peso corpóreo podem ser feitas com segurança. 
 
O jejum alimentar deve ser realizado de acordo com o metabolismo de cada espécie. 
Para aves, não ultrapassar um período de 4 horas de jejum, para mustelídeos( Lontra, 
doninha), lagomorfos( coelhos , lebres) e roedores, não ultrapassar o período de 6 horas 
de jejum. 
CONFECÇÃO DO ESFREGAÇO 
SISTEMA DE COLHEITA A VÁCUO 
CONFECÇÃO DO ESFREGAÇO 
GOTA DE SANGUE 
DESLIZAR EXTENSORA 
SECAR BALANÇANDO 
ESFREGAÇO SANGUÍNEO 
IDENTIFICAÇÃO 
LEUCOMETRIA 
ESPECÍFICA 
LEUCOMETRIA 
ESPECÍFICA 
HEMATOSCOPIA 
PESQUISA DE HEMOCITOPARASITAS 
LÂMINA 
ESFREGAÇO