Método de Hoffman

Esta é uma pré-visualização de arquivo. Entre para ver o arquivo original

��__________________________________��������������������������_________________________________________________________________________________
Autorizado pela Portaria no. 609 de 22.06.2007 do Ministério da Educação e Cultura
 Mantido pelo Centro de Estudos Octavio Dias de Oliveira – CNPJ 06.152.582/0001-08
Relatório de Aula Prática
Disciplina de Parasitologia clinica 
Prof. Luciano G. Nogueira
 
	Aluna: Jaqueline Rosa Ferreira
	Curso: Biomedicina
	6º Período Matutino
	TEMA DA AULA 
	
MÉTODO DE HOFFMAN
	INTRODUÇÃO
	 
Os exames parasitológicos podem ser qualitativos ou quantitativos, apresentando diferentes sensibilidades na detecção de ovos e larvas de helmintos e cistos de protozoários. O sucesso diagnóstico das parasitoses depende da coleta das fezes e do número de amostras.
 É recomendado que a amostra seja colhida num frasco estéril, numa quantidade mínima de 100 gramas, e que seja analisada o mais rápido possível, para que não ocorra deterioração dos parasitas mais frágeis. Quando não é possível se seguir essas especificações, as amostras deverão ser colocadas em recipientes que contenham conservantes, a fim de preservar as formas parasitárias existentes.
 Deve se salientar ainda que, o histórico do paciente e o exame macroscópico das fezes são dados importantíssimos que participam da escolha do método parasitológico a ser empregado. Uma vez no setor técnico, deve-se empregar os métodos diagnósticos mais indicados e específicos para a amostra em questão. 
 O método de concentração fecal geralmente mais empregado é Método de Hoffman (sedimentação espontânea), mais indicado para detecção de ovos pesados (A. lumbricóides inférteis, T.trichiura e S.mansoni) 
	OBJETIVOS
	Detectar ovos pesados
	MATERIAIS E MÉTODOS
	
Materiais: béquer, espátula de madeira, gaze, peneira, taça de sedimentação, pipeta Pasteur, lâmina, lamínula, lugol, microscópio, fezes frescas.
Métodos: Dissolver 2 a 5 g de fezes no béquer com um pouco de água. Coar a suspensão em gaze, em uma taça de sedimentação, com auxilio de uma pipeta de Pasteur, coletar do fundo cônico da taça um poço do sedimento. Passar o material para uma lâmina de vidro, adicionar 1 ou 2 gotas de lugol, cobrir com lamínula e realizar leitura em microscópio ótico. 
	RESUTADOS E DISCUSSÃO
	 
Obteve-se como resultado a visualização de cistos de Giárdia Lamblia, Entamoeba hystolitica, e sedimento 
	BIBLIOGRAFIA CONSULTADA
Parasitologia humana David Pereira Nunes- 11-Ed-São Paulo: Editora Atheneu 2005
Apostila de Parasitologia Clinica – Professor Luciano.
�