Nematoides na cultura da Soja

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Nematoides na
Cultura da Soja
Camilla Buiatti Vicente
Engª Agrônoma/ Mestre em Nematologia
Fitonematoides de importância primária para a soja:
Meloidogyne incognita/ M. javanica
M. arenaria (regiões de temperaturas mais baixas)
Heterodera glycines
Rotylenchulus reniformis
Pratylenchus brachyurus
Tubixaba sp.
Aphelenchoides besseyi
Meloidogyne incognita/ M. javanica
• nematoides das galhas;
• endoparasito sedentário;
• As duas espécies apresentam alta
gama de hospedeiros.
Identificação de espécies:
• Corte perineal;
• Método bioquímico: eletroforese de isoenzimas;
• Métodos moleculares.
M. incognita M. javanica
Raízes de soja com galhas
Reação das 
cultivares de 
soja ao 
Nematoide de 
Galhas, M. 
javanica e M. 
incognita. 
Heterodera glycines
• nematoide de cisto da soja (NCS)
• endoparasito sedentário
O NCS afeta negativamente a fixação biológica de nitrogênio 
(Bradyrhizobium japonicum) = plantas ficam mais cloróticas 
(deficiência pronunciada de nitrogênio)
Fêmeas de Heterodera glycines
Heterodera glycines
Fonte: https://www.google.com.br/search?q=nematoides+em+soja+em+Mato 
+Grosso+do+Sul
Fonte: http://www.avifran.com.br/news_detalhes.php?not_id=627
Fêmea exposta para a cópula 
com o macho
Machos de Heterodera glycines ao redor da fêmea
Fêmea com massa de ovos (1/3 dos ovos produzidos)
Cistos de Heterodera glycines
(viáveis e inviáveis)
Cistos (fêmeas mortas) de Heterodera glycines mostrando o seu
conteúdo ovos e juvenis do nematoide
• Rotylenchulus reniformis
nematoide reniforme
• ectoparasito sedentário
• Polífago: 314 espécies
vegetais pertencentes a 77 
famílias botânicas
MachoFêmea 
imatura
Fêmea 
madura
Representação do sítio de alimentação de Rotylenchulus reniformis
Nicola Vovlas
R.N. Inserra
R. reniformis: fêmeas com matriz gelatinosa e ovos
Soja com sintomas do ataque de R. reniformis
Pratylenchus brachyurus  nematoides das lesões radiculares
endoparasito migrador
Oviposição de Pratylenchus no interior da raiz
Oviposição de Pratylenchus no solo
Raiz de soja com lesões provocadas por 
Pratylenchus
Detalhe das plantas de soja com sintomas reflexos na parte aérea
Fatores de reprodução (FR) 
de P. brachyurus em 
cultivares de soja 
recomendadas no Brasil 
Central. Médias de seis 
repetições. Embrapa Soja, 
março de 2007. 
Tubixaba tuxaua
Comprimento do corpo = 9,44-11,66 mm
Diâmetro do corpo = 57-71 m
Monteiro e Lordello (1980) descreveram Tubixaba tuxaua da
rizosfera de soja no Paraná;
Carneiro e Carneiro (1983) relataram redução de produção em
plantas de trigo cultivadas em vasos contendo solo infestado
por esse nematoide;
É um nematoide ectoparasito da Ordem Dorylaimida – Família
Aporcelaimidae Heyns 1965;
Oeste do Paraná = soja (Roese et al., 2001; Franzener et al.,
2005; Seifert et al., 2006), café (Portz et al., 2006), milho e
trigo (Seifert et al., 2006).
O nematoide Tubixaba tuxaua prejudica o
desenvolvimento de culturas como:
• Soja;
• Milho;
• Trigo;
• Aveia;
• Mandioca;
• Crotalária, feijão de porco e as mucunas preta e
anã (adubo verde).
Tubixaba tuxaua no Estado do Paraná – safra 2009/2010
Furlanetto et al., 2010
76 %
75 %
• Há mais de 10 anos os pesquisadores da Embrapa e parceiros
trabalhavam na identificação da causa da Soja Louca II (SL-II),
que foi reconhecida em setembro de 2015 pelo Ministério da
Agricultura, Pecuária e Abastecimento (MAPA) como uma
doença causada pelo nematoide Aphelenchoides sp.
• Desde a safra 2005/2006, a Soja Louca II vem causando
reduções de até 60% na produtividade da soja, principalmente
em regiões quentes e chuvosas como os estados do
Maranhão, Tocantins, Pará e Mato Grosso.
• A doença apresenta como sintomas principais: plantas de soja
com haste verde, retenção foliar e abortamento de vagens
antes de finalizar seu ciclo.
Soja Louca II – Aphelenchoides sp.
Deformação foliar (afilamento e engrossamento das nervuras). 
Foto: Divulgação Epamig
Manejar é integrar medidas 
de controle
Combinar (somar)
-Limpeza de maquinário
-Destruição de plantas daninhas e remanescentes
-Revolvimento do solo e exposição ao sol
-Plantas antagonistas (principalmente crotalárias)
-Plantas de cobertura de solo
-Rotação de culturas/ Sucessão de culturas
-Cultivares e híbridos resistentes aos nematoides
-Adubação orgânica
-Controle químico (principalmente tratamento de sementes)
-Controle biológico
Máquinas e Implementos 
Agrícolas
LIMPEZA = Antes de iniciar qualquer
tarefa na propriedade
Eliminação de plantas infestantes na safra e na 
entressafra
Evitar a sua presença na lavoura é muito
importante para impedir o aumento e a
manutenção desse nematoide e, assim, não
comprometer a eficiência de outras medidas de
controle.
Pratylenchus brachyurus:
√ carrapicho-rasteiro
√ carrapichinho
√ picão preto
√ capim marmelada
√ capim carrapicho
√ corda de viola
√ capim-gordura
√ beldroega
Meloidogyne javanica:
√ Mentrasto
√ Apaga-fogo
√ Fedegoso
√ Trapoeraba
√ Capim-pé-de-galinha
√ Beldroega
√ Caruru
√ Carrapichinho
√ Joá
√ Capim-marmelada
√ Melão-de-são-caetano
√ Capim-gordura
Meloidogyne incognita:
√ Capim-marmelada
√ Beldroega
√ Caruru
√ Maria pretinha
√ Mentrasto
√ Carrapichinho
√ Picão preto
√ Tiririca
√ Fedegoso
√ Capim-pangola
√ Falsa serralha
√ Melão-de-são-caetano
√ Corda-de-viola
√ Joá
√ Capim-pé-de-galinha
√ Capim-colonião
Manso et al (1994)
Pratylenchus zeae:
√ Capim-colchão
√ Capim-colonião
√ Capim-carrapicho
√ Tiririca
√ Carrapicho-de-carneiro
√ Capim-pangola
√ Capim-napier
√ Capim-marmelada
√ Picão preto
√ Fedegoso
Dias et al., 2012
Brida, 2012
Brida, 2012
Conforme Inomoto et al. (2008):
- Sorgo granífero: mau hospedeiro de Meloidogyne
javanica.
- Sorgo silageiro: bom hospedeiro de Meloidogyne
javanica. Excetuando-se BRS 601 que é mau
hospedeiro.
Nikuma et al., 2012
Soja 
TMG 115
Mendonça Filho et al., 2012
DOW Sementes, 2016
Somente SS318 é silageiro. Os demais graníferos.
Inomoto; Asmus (2009)
Costa et al, 2014
Pratylenchus brachyurus X soja
Avaliação aos 40DAE
1,8%MO 3,5%MO
Costa et al., 2014
Pratylenchus brachyurus x soja
Avaliação aos 70DAE
1,8%MO 3,5%MO
Matéria orgânica:
- favorece as propriedades físico-químicas do solo, as plantas
crescem adequadamente e são mais tolerantes ao ataque de
nematoides.
- propicia o crescimento das populações de inimigos naturais
dos nematoides e sua decomposição libera compostos
altamente tóxicos a eles (Oliveira e Inomoto, 2010).
Nematicidas
Químicos e biológicos  AGROFIT
 Químicos: cultura e alvo
 Biológicos: alvo
➢ Tabela AGROFIT
Abamectina em tratamento de sementes protegendo da penetração de 
Meloidogyne incognita em plântulas de tomate
testemunha Abamectina 
(0,3 mg/semente)
Fonte: Becker (2008)
Proteção inicial da lavoura = 20 dias
CONTROLE BIOLÓGICO
Manipulação de antagonismos entre 
microrganismos (fungos, bactérias) e patógenos 
(nematoide):
Competição, antibiose, predação, parasitismo
OU
Manipulação de mutualismos entre 
microrganismos e planta hospedeira:
indução de resistência
Arthrobotrys spp. = fungo predador apresentando anéis 
constritores como armadilhas
Purpuriocillium lilacinum (= Paecilomyces lilacinus) = 
fungo parasito de ovos e de fêmeas
http://images.google.com.br/imgres?imgurl=http://www.mycology.adelaide.edu.au/images/Plilicanis2.gif&imgrefurl=http://www.mycology.adelaide.edu.au/Fungal_Descriptions/Hyphomycetes_(hyaline)/Paecilomyces/&usg=__ZdK1_bVdVzj7079o6oG1xdoagCc=&h=200&w=209&sz=38&hl=pt-BR&start=9&tbnid=0J7tuZfVaeHCEM:&tbnh=101&tbnw=106&prev=/images?q=Paecilomyces+lilacinus&gbv=2&hl=pt-BR&sa=G
Hifas do fungo Purpuriocillium lilacinum parasitando a casca do ovo do 
nematoide = parasito de ovos e de fêmeas do nematoide
Fotomicrografia de juvenil de Meloidogyne paranaensis
colonizado por Purpuriocillium lilacinum no interior dacasca do
ovo. Krzyzanowski (2006)
Pochonia chlamydosporia
em ovo de Heterodera 
avenae (Kerry, 2017)
Monteiro, 2017
Pochonia chlamydosporia x Meloidogyne javanica
Pasteuria spp.
Especificidade das espécies de Pasteuria com os 
fitonematoides
Pasteuria nishizawae  nematoide de cisto
Pasteuria penetrans nematoide de galhas
Pasteuria thornei  nematoide das lesões
Obrigada
camilla_buiatti@yahoo.com.br