Atlas Parasitologia - Hemoparasitas

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PP1. Parasitologia. Gabriela Záttera. 
 
COLETA E PROCEDIMENTOS PARA DIAGNÓSTICO DE PARASITAS NO SANGUE 
 
 Coleta na polpa digital do dedo anular esquerdo, lóbulo da orelha ou punção venosa. 
 Análises devem ser feitas imediatamente, do contrário, utilizar EDTA ou heparina (não 
interfere na morfologia dos parasitas, mas dilui o material, o que pode comprometer a 
microscopia). 
 
Preparação dos esfregaços 
 
 Exame direto: gota de sangue no centro da lâmina → cobre com lamínula e analisa 
imediatamente. Não há coloração, mas é o único método usado para visualização de 
parasitas vivos. 
 Esfregaço estirado: “esfregaço”. Boa identificação das células. 
 Gota espessa: 3 a 4 gotas de sangue fresco em lâmina → com outra lâmina “reunir” o 
sangue em área de 2cm de diâmetro, durante 30 segundos (evita formação de fibrina). 
Material concentrado, possibilita quantificação dos parasitas. 
 
Coloração de Walker 
 
 Material é fixado com metanol. Desmoglobinização com azul de metileno fosfatado. 
Coloração com solução de Giemsa (deixa corar por 10 minutos). Favorece a diferenciação celular 
e não necessita de corante específico. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
PP1. Parasitologia. Gabriela Záttera. 
 
IDENTIFICAÇÃO E MORFOLOGIA DE PARASITAS NO SANGUE 
 
 
 
 
Vetor: Triatomíneos hematófagos. Hematofagia noturna, ocorre defecação logo após a picada e 
introdução das formas tripomastigotas na corrente sanguínea. 
 Triatoma: marrom, probóscida inserida no meio da cabeça; 
 Rhodnius: castanho, probóscida inserida na ponta? 
 Panstrongylus: preto, maior, probóscida inserida próxima aos olhos. 
 
Amastigota 
Fase crônica da doença – células do HV. Núcleo e cinetoplasto; flagelo não externalizado. 
 
 
 
Epimastigota 
Trato digestório do Barbeiro. Núcleo e cinetoplasto - anterior ao flagelo. 
 
 
 
 
Trypanosoma cruzi 
 
PP1. Parasitologia. Gabriela Záttera. 
 
Tripomastigota 
Fase aguda da doença – Sangue pcte. Núcleo anterior ao flagelo; membrana ondulante. 
 
 
 
 
 
 
 Hematofagia das fêmeas do mosquito Lutzomya (somente após a cópula). Diferentes 
espécies, cada uma responsável por uma manifestação da doença (visceral ou tegumentar). 
 
Amastigota 
Células do HV. Infectante para HI – forma ingerida pelo mosquito. 
 
 
 
 
 
FÍGADO PELE 
Leishmania sp. 
 
PP1. Parasitologia. Gabriela Záttera. 
 
Promastigota 
Trato digestório HI. Infectante HV. Extracelular – forma introduzida na picada. 
 
 
 
Mosquito – Flebotomíneo 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
PP1. Parasitologia. Gabriela Záttera. 
 
 
 
 
 
 Qualquer forma é infectante. Hospedeiros definitivos são os felinos jovens. 
 
Bradizoíto (cistos) 
Fase crônica da doença – tecido dos hospedeiros (dependendo do tecido pode apresentar 
sintomatologia). Infectante HD e HI. 
 
 
 
Taquizoíto 
Fase aguda da doença (líquor, sangue, saliva, sêmen...). Forma ativa no HI. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Toxoplasma gondii 
 
PP1. Parasitologia. Gabriela Záttera. 
 
Oocisto 
Infectante HI. Fezes do HD. *Não visto em prática 
 
 
 
 
 
 
 Agente etiológico da malária. Vetor: fêmeas do mosquito Anopheles. Hepatócito é primeira 
célula parasitada, depois invade as hemácias na corrente sanguínea. 
 Febre no mesmo período do dia, calafrios, sudorese. 
 
TROFOZOÍTOS JOVENS 
Trofozoíto jovem – P. vivax Trofozoíto jovem – P. malariae 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Trofozoíto jovem - P. falciparum 
 
 
 
 
Plasmodium sp. 
PP1. Parasitologia. Gabriela Záttera. 
 
TROFOZOÍTOS MADUROS 
Trofozoíto maduro – P. falciparum* Trofozoíto maduro – P. malariae 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
*Não vê em sangue periférico. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Trofozoíto maduro – P. vivax 
 
 
 
ESQUIZONTES 
Esquizonte – P. falciparum* Esquizonte – P. malariae 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
*Não vê em sangue periférico. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
PP1. Parasitologia. Gabriela Záttera. 
 
Esquizonte – P. vivax 
 
 
 
GAMETÓCITOS 
Gametócito – P. vivax Gametócito – P. malariae 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Gametócito – P. falciparum