Estudo sobre eficácia da ivermectina contra o Cancer - Portal NIH GOV

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Eficácia da ivermectina contra diversos tipos de cânceres
o que é o NIH?
National Institutes of Health (NIH) é hoje um dos principais pólos de pesquisa em saúde do mundo, englobando 20 institutos e sete centros localizados nos EUA. O NIH é ligado ao Departamento de Saúde e Serviços Humanos americano e desenvolve estudos em várias áreas. 
As redes Adult Aids Clinical Trials Group (AACTG), HIV Prevention Trials Network (HTPN) e 
Comprehensive International Program of Research on Aids (Cipra) fazem parte do National Institute of Allergy and Infectious Diseases, unidade responsável por estudos em alergia e doenças infecciosas. Dentre esses diversos estudos científicos, o NIH possui diversos estudos sobre a eficácia da ivermectina contra o câncer, com diversas fontes científicas.
Segue abaixo um dos estudos traduzidos e o endereço de sua fonte:
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC7505114/
Ivermectina, um potencial medicamento anticancerígeno derivado de um medicamento antiparasitário
Resumo gráfico
A ivermectina tem poderosos efeitos antitumorais, incluindo a inibição da proliferação, metástase e atividade angiogênica, em uma variedade de células cancerosas. Isso pode estar relacionado à regulação de múltiplas vias de sinalização pela ivermectina através da PAK1 quinase. Por outro lado, a ivermectina promove a morte programada de células cancerígenas, incluindo apoptose, autofagia e piroptose. A ivermectina induz apoptose e a autofagia é mutuamente regulada. Curiosamente, a ivermectina também pode inibir as células-tronco tumorais e reverter a resistência a múltiplas drogas e exerce o efeito ideal quando usada em combinação com outras drogas quimioterápicas.
Abreviaturas: 
ASC, proteína do tipo mancha associada à apoptose contendo um CARD; ALCAR, acetil-L-carnitina; CSCs, células estaminais cancerosas; DAMP, padrão molecular associado a danos; EGFR, receptor do fator de crescimento epidérmico; EBV, vírus Epstein-Barr; EMT, transição mesenquimal epitelial; GABA, ácido gama-aminobutírico; GSDMD, Gasdermina D; HBV, vírus da hepatite B; HCV, vírus da hepatite C; HER2, receptor 2 do fator de crescimento epidérmico humano; HMGB1, proteína box-1 do grupo de alta mobilidade; HSP27, proteína de choque térmico 27; LD50, dose letal mediana; LDH, Lactato desidrogenase; IVM, Ivermectina; MDR, multirresistência; NAC, N-acetil-L-cisteína; OCT-4, proteína 4 de ligação ao octâmero; PAK1, quinases 1 ativadas por P-21; PAMP, padrão molecular associado a patógenos; PARP, poli(ADP-ribose) polimerase; P-gp, P-glicoproteína; PRR, receptor de reconhecimento de padrões; ROS, Espécies reativas de oxigênio; STAT3, transdutor de sinal e ativador de transcrição 3; SID, domínio de interação SIN3; siRNA, RNA interferente pequeno; SOX-2, caixa SRY 2; TNBC, câncer de mama triplo negativo; YAP1, proteína 1 associada a sim.
Compostos químicos revisados ​​neste artigo: 
ivermectina(PubChem CID：6321424), avermectina(PubChem CID：6434889), selamectina(PubChem CID：9578507), doramectina(PubChem CID：9832750), moxidectina(PubChem CID：9832912)
Palavras-chave: ivermectina, câncer, reposicionamento de drogas
Resumo
A ivermectina é um fármaco antiparasitário macrolídeo com anel de 16 membros que é amplamente utilizado para o tratamento de muitas doenças parasitárias, como oncocercose, elefantíase e sarna. Satoshi ōmura e William C. Campbell ganharam o Prêmio Nobel de Fisiologia ou Medicina de 2015 pela descoberta da excelente eficácia da ivermectina contra doenças parasitárias. Recentemente, foi relatado que a ivermectina inibe a proliferação de várias células tumorais por meio da regulação de múltiplas vias de sinalização. Isso sugere que a ivermectina pode ser uma droga anticancerígena com grande potencial. Aqui, revisamos os mecanismos relacionados pelos quais a ivermectina inibe o desenvolvimento de diferentes cânceres e promove a morte celular programada e discutimos as perspectivas para a aplicação clínica da ivermectina como droga anticancerígena para terapia de neoplasias.
1. Introdução
A ivermectina (IVM) é um fármaco antiparasitário macrolídeo com um anel de 16 membros derivado da avermectina que é composto por 80% de 22,23-diidroavermectina-B1a e 20% de 22,23-diidroavermectina-B1b [1]. Além de IVM, os atuais membros da família de avermectina incluem selamectina, doramectina e moxidectina [[2], [3], [4], [5]] (Fig. 1). A IVM é atualmente a droga da família avermectina de maior sucesso e foi aprovada pela FDA para uso em humanos em 1978 [6]. Tem um bom efeito no tratamento de doenças parasitárias, como oncocercose, elefantíase e sarna. Os descobridores do IVM, o cientista japonês Satoshi ōmura e o cientista irlandês William C. Campbell, ganharam o Prêmio Nobel de Fisiologia ou Medicina em 2015 [7,8]. A IVM ativa os canais de cloreto controlados por glutamato no parasita, causando uma grande quantidade de influxo de íons cloreto e hiperpolarização neuronal, levando à liberação de ácido gama-aminobutírico (GABA) para destruir os nervos, e a transmissão nervosa das células musculares induz a paralisia de músculos somáticos para matar parasitas [9,10]. A MIV também demonstrou efeitos benéficos contra outras doenças parasitárias, como malária [11,12], tripanossomíase [13], esquistossomose [14], triquinose [15] e leishmaniose [16].
IVM não só tem fortes efeitos sobre os parasitas, mas também tem potenciais efeitos antivirais. A IVM pode inibir a replicação de flavivírus, visando a NS3 helicase [17]; também bloqueia o transporte nuclear de proteínas virais, agindo no transporte nuclear mediado por α/β e exerce atividade antiviral contra os vírus HIV-1 e dengue [18]. Estudos recentes também apontaram que tem um efeito inibitório promissor sobre o vírus SARS-CoV-2, que causou um surto global em 2020 [19]. Além disso, a MIV mostra potencial para aplicação clínica na asma [20] e doenças neurológicas [21]. Recentemente, os cientistas descobriram que o IVM tem um forte efeito anticancerígeno. Desde o primeiro relato de que a MIV poderia reverter a resistência a múltiplas drogas do tumor (MDR) em 1996 [22], alguns estudos relevantes enfatizaram o uso potencial da MIV como um novo câncer
tratamento [[23], [24], [25], [26], [27]]. Apesar do grande número de estudos relacionados, ainda existem algumas questões importantes que não foram resolvidas. Em primeiro lugar, o mecanismo específico da citotoxicidade mediada por IVM em células tumorais não é claro; pode estar relacionado ao efeito da IVM em várias vias de sinalização, mas não é muito claro em geral. Em segundo lugar, a IVM parece induzir a morte celular mista em células tumorais, o que também é uma questão controversa. Portanto, esta revisão resumiu as últimas descobertas sobre o efeito anticancerígeno do IVM e discutiu o mecanismo de inibição da proliferação tumoral e a maneira como o IVM induz a morte celular programada do tumor para fornecer uma base teórica para o uso do IVM como um potencial fármaco anticancerígeno. À medida que o custo da pesquisa e desenvolvimento de novas drogas anticancerígenas continua a aumentar, o reposicionamento de drogas tornou-se cada vez mais importante. O reposicionamento de medicamentos refere-se ao desenvolvimento de novas indicações de medicamentos que foram aprovados para uso clínico [28]. Para alguns medicamentos mais antigos que são amplamente utilizados por suas indicações originais e possuem dados clínicos e informações de segurança, o reposicionamento de medicamentos permite que eles sejam desenvolvidos por meio de um ciclo mais barato e mais rápido e sejam usados ​​de forma mais eficaz no uso clínico clinicamente [29]. Aqui, resumimos sistematicamente o efeito anticancerígeno e o mecanismo da IVM, que é de grande importância para o reposicionamento da IVM para o tratamento do câncer.
2. O papel da MIV em diferentes tipos de câncer 
2.1. Câncer de mama
O câncer de mama é um tumor maligno produzido por mutação genética nas células epiteliais da mama causada por múltiplos carcinógenos. A incidência do câncer de mama tem aumentadoa cada ano, tornando-se um dos tumores malignos femininos com maior incidência no mundo. Em média, um novo caso é diagnosticado a cada 18 segundos em todo o mundo [30,31]. Após o tratamento com IVM, a proliferação de várias linhas celulares de câncer de mama, incluindo MCF-7, MDA-MB-231 e MCF-10, foi significativamente reduzida. O mecanismo envolveu a inibição pela IVM da via Akt/mTOR para induzir autofagia e a quinase 1 (PAK1) ativada por p-21 foi o alvo da IVM para câncer de mama [32]. Além disso, o estudo de Diao mostrou que a IVM pode inibir a proliferação das linhagens de células tumorais de mama canina CMT7364 e CIPp bloqueando o ciclo celular sem aumentar a apoptose, e o mecanismo da IVM pode estar relacionado à inibição da via Wnt [33].
O câncer de mama triplo negativo (TNBC) refere-se ao câncer que é negativo para o receptor de estrogênio, receptor de progesterona e receptor do fator de crescimento epidérmico humano 2 (HER2) e é o subtipo mais agressivo de câncer de mama com o pior prognóstico. Além disso, também não há droga terapêutica clinicamente aplicável atualmente [34,35]. Um estudo de triagem de drogas de TNBC mostrou que IVM pode ser usado como um domínio de interação SIN3 (SID) para bloquear seletivamente a interação entre SID e a-hélice pareada2. Além disso, o IVM regulou a expressão do gene E-caderina relacionado à transição mesenquimal epitelial (EMT) para restaurar a sensibilidade das células TNBC ao tamoxifeno, o que implica a possibilidade de que o IVM funcione como um regulador epigenético no tratamento do câncer[36] .
Estudos recentes também descobriram que a IVM pode promover a morte de células tumorais ao regular o microambiente tumoral no câncer de mama. Sob a estimulação de um microambiente tumoral com um alto nível de trifosfato de adenosina (ATP) fora das células tumorais, a IVM poderia aumentar a liberação mediada por P2 × 4/ P2 × 7/Pannexina-1 da proteína box-1 do grupo de alta mobilidade (HMGB1) [ 37]. No entanto, a liberação de uma grande quantidade de HMGB1 no ambiente extracelular promoverá morte imunogênica mediada por células imunes e reações inflamatórias, que terão um efeito inibitório sobre o crescimento de células tumorais. Portanto, acreditamos que o efeito anticancerígeno do IVM não se limita à citotoxicidade, mas envolve também a regulação do microambiente tumoral. A IVM regula o microambiente tumoral e medeia a morte celular imunogênica, o que pode ser uma nova direção para pesquisas que explorem mecanismos anticancerígenos no futuro.
2.3. Câncer do sistema urinário
O carcinoma de células renais é um tumor maligno fatal do sistema urinário derivado de células epiteliais tubulares renais. Sua morbidade aumentou em média 2% ao ano em todo o mundo e o efeito do tratamento clínico não é satisfatório [[45], [46], [47]]. Experimentos confirmaram que o IVM pode inibir significativamente a proliferação de cinco linhagens celulares de carcinoma de células renais sem afetar a proliferação de células renais normais, e seu mecanismo pode estar relacionado à indução de disfunção mitocondrial [48]. A IVM pode reduzir significativamente o potencial de membrana mitocondrial e inibir a respiração mitocondrial e a produção de ATP. A presença do combustível mitocondrial acetil-L-carnitina (ALCAR) e do antioxidante N-acetil-L-cisteína (NAC), poderia reverter a inibição induzida pela IVM. Em experimentos com animais, os resultados imuno-histoquímicos para tecidos tumorais tratados com IVM mostraram que a expressão do marcador de estresse mitocondrial HEL foi significativamente aumentada e os resultados foram consistentes com os dos experimentos com células.
O câncer de próstata é um tumor maligno derivado das células epiteliais da próstata, e sua morbidade perde apenas para o câncer de pulmão entre os homens nos países ocidentais [49]. No experimento de Nappi, descobriu-se que a IVM poderia aumentar a atividade da droga antiandrogênica enzalutamida na linha celular de câncer de próstata LNCaP e reverter a resistência da linha celular de câncer de próstata PC3 ao docetaxel [50]. Curiosamente, o IVM também restaurou a sensibilidade do câncer de mama triplo negativo ao medicamento antiestrogênio tamoxifeno [36], o que também implica o potencial do IVM para ser usado na terapia endócrina. Além disso, o IVM também demonstrou ter um bom efeito inibitório sobre a linhagem celular de câncer de próstata DU145 [51].
2.4. Câncer hematológico
A leucemia é um tipo de doença clonal maligna causada por células-tronco hematopoiéticas anormais [52]. Em um experimento projetado para rastrear drogas potenciais para o tratamento da leucemia, o IVM matou preferencialmente as células leucêmicas em baixas concentrações sem afetar as células hematopoiéticas normais [51]. O mecanismo foi relacionado ao aumento do influxo de íons cloreto na célula por IVM, resultando em hiperpolarização da membrana plasmática e indução da produção de espécies reativas de oxigênio (EROs). Também foi comprovado que o IVM tem um efeito sinérgico com citarabina e daunorrubicina no tratamento da leucemia. O experimento de Wang descobriu que a IVM pode induzir seletivamente a disfunção mitocondrial e o estresse oxidativo, fazendo com que as células K562 da leucemia mielóide crônica sofram aumento da apoptose dependente de caspase em comparação com as células normais da medula óssea [53]. Também foi confirmado que o IVM inibiu o crescimento tumoral de maneira dose-dependente e o dasatinibe melhorou a eficácia.
2.5. Câncer do sistema reprodutor
O câncer do colo do útero é uma das neoplasias malignas ginecológicas mais comuns, resultando em aproximadamente 530.000 novos casos e 270.000 mortes em todo o mundo a cada ano. A maioria dos cânceres cervicais é causada pela infecção pelo papilomavírus humano (HPV) [54,55]. A IVM provou inibir significativamente a proliferação e migração de células HeLa e promover a apoptose [56]. Após intervenção com IVM, o ciclo celular das células HeLa foi bloqueado na fase G1/S, e as células apresentaram alterações morfológicas típicas relacionadas à apoptose.
O câncer de ovário é um câncer maligno que não apresenta sintomas clínicos iniciais e tem uma resposta terapêutica pobre. A taxa de sobrevida em 5 anos após o diagnóstico é de aproximadamente 47% [27,57]. Em um estudo de Hashimoto, descobriu-se que o IVM inibiu a proliferação de várias linhagens de células de câncer de ovário, e o mecanismo estava relacionado à inibição da PAK1 quinase [58]. Em pesquisas para rastrear potenciais alvos para o tratamento do câncer de ovário através do uso de uma biblioteca de shRNA e uma biblioteca CRISPR/Cas9, o oncogene KPNB1 foi detectado. A IVM pode bloquear o ciclo celular e induzir a apoptose celular através de um mecanismo dependente de KPNB1 no câncer de ovário [59]. Curiosamente, IVM e paclitaxel têm um efeito sinérgico no câncer de ovário, e o tratamento combinado em experimentos in vivo inibiu quase completamente o crescimento do tumor. Além disso, de acordo com um relatório de Zhang, o IVM pode aumentar a eficácia da cisplatina para melhorar o tratamento do câncer de ovário epitelial, e o mecanismo está relacionado à inibição da via Akt/mTOR [60].
2.6. Glioma cerebral
O glioma é o tumor cerebral mais comum e aproximadamente 100.000 pessoas em todo o mundo são diagnosticadas com glioma todos os anos. O glioblastoma é o glioma mais letal, com um tempo médio de sobrevivência de apenas 14-17 meses [61,62]. Experimentos mostraram que IVM inibiu a proliferação de células G de glioblastoma humano U87 e T98 de maneira dose-dependente e induziu apoptose de maneira dependente de caspase [63]. Isso foi relacionado à indução de disfunção mitocondrial e estresse oxidativo. Além disso, IVM poderia induzir a apoptose de células endoteliais microvasculares do cérebro humano e inibir significativamente a angiogênese. Esses resultados mostraram que o IVM tinha o potencial de resistir à angiogênese tumoral e à metástase tumoral. Em outro estudo, IVM inibiu a proliferação de células de glioma U251 e C6inibindo a via Akt/mTOR [64].
Nos gliomas, o miR-21 pode regular a via de sinalização Ras/MAPK e aumentar seus efeitos na proliferação e invasão [65]. A atividade da helicase DDX23 afeta a expressão de miR-12 [66]. A IVM pode inibir a via de sinalização DDX23/miR-12, afetando a atividade da DDX23 helicase, inibindo assim comportamentos biológicos malignos. Isso indicou que IVM pode ser um potencial inibidor de RNA helicase e um novo agente para o tratamento de tumores. No entanto, aqui, devemos enfatizar que, como a MIV não pode passar efetivamente pela barreira hematoencefálica [67], a perspectiva do uso da MIV no tratamento de gliomas não é otimista.
2.7. Câncer do sistema respiratório
O carcinoma nasofaríngeo é um tumor maligno derivado de células epiteliais da mucosa nasofaríngea. A incidência é obviamente regional e familiar, e a infecção pelo vírus Epstein-Barr (EBV) está intimamente relacionada [68]. Em um estudo que rastreou drogas para o tratamento de câncer de nasofaringe, IVM inibiu significativamente o desenvolvimento de carcinoma de nasofaringe em camundongos nude em doses que não eram tóxicas para timócitos normais [69]. Além disso, o IVM também teve efeito citotóxico em uma variedade de células cancerígenas da nasofaringe in vitro, e o mecanismo está relacionado à redução da atividade da PAK1 quinase para inibir a via MAPK.
O câncer de pulmão tem a maior morbidade e mortalidade entre os cânceres [70]. Nishio descobriu que IVM poderia inibir significativamente a proliferação de células de câncer de pulmão H1299 inibindo a atividade YAP1 [43]. O experimento de Nappi também provou que IVM combinado com erlotinib para alcançar um efeito de morte sinérgico regulando a atividade de EGFR e em células de câncer de pulmão HCC827 [50]. Além disso, IVM poderia reduzir a metástase de células de câncer de pulmão inibindo EMT.
2.8. Melanoma
O melanoma é o tumor maligno de pele mais comum, com alta taxa de mortalidade. Medicamentos direcionados a mutações BRAF, como vemurafenibe, dabrafenibe e anticorpos monoclonais PD-1, incluindo pembrolizumabe e nivolumabe, melhoraram muito o prognóstico do melanoma [71,72]. Gallardo tratou células de melanoma com IVM e descobriu que poderia efetivamente inibir a atividade do melanoma [73]. Curiosamente, IVM também pode mostrar atividade contra células de melanoma BRAF de tipo selvagem, e sua combinação com dapafinib pode aumentar significativamente a atividade antitumoral. Além disso, foi confirmado que PAK1 é o principal alvo do IVM que medeia sua atividade anti-melanoma, e o IVM também pode reduzir significativamente a metástase pulmonar do melanoma em experimentos com animais. Deng descobriu que IVM poderia ativar a translocação nuclear de TFE3 e induzir a morte celular autofagia-dependente por desfosforilação de TFE3 (Ser321) em células de melanoma SK-MEL-28 [74]. No entanto, o NAC reverteu o efeito do IVM, o que indicou que o IVM aumentou a autofagia dependente de TFE3 através da via de sinalização de ROS.
3.Morte celular programada induzida por IVM em células tumorais e mecanismos relacionados
3.1. Apoptose
IVM induz diferentes padrões de morte celular programada em diferentes células tumorais (Tabela 1). Conforme mostrado na Tabela 1, a principal forma de morte celular programada induzida por IVM é a apoptose. A apoptose é uma morte celular programada que é regulada por genes para manter a estabilidade celular. Ela pode ser desencadeada por duas vias de ativação: a via de estresse do retículo endoplasmático/mitocondrial endógena e a via do receptor de morte exógeno [75,76]. A diminuição do potencial de membrana mitocondrial e a liberação do citocromo c das mitocôndrias para o citoplasma foi detectada após a intervenção da MIV nas células Hela [56]. Portanto, inferimos que a MIV induz a apoptose principalmente pela via mitocondrial. Além disso, foram observadas alterações morfológicas causadas pela apoptose, incluindo condensação da cromatina, fragmentação nuclear, fragmentação do DNA e formação de corpos apoptóticos. Finalmente, IVM alterou o equilíbrio entre proteínas relacionadas com a apoptose por regulação positiva da proteína Bax e regulação negativa da proteína anti-apoptótica Bcl-2, ativando assim a caspase-9/-3 para induzir apoptose [48,53,63] (Fig. 2).
3.2. Autofagia
A autofagia é uma forma de morte celular programada dependente de lisossomas. Ele utiliza lisossomos para eliminar organelas supérfluas ou danificadas no citoplasma para manter a homeostase. É caracterizada por estruturas vacuolares de camada dupla ou multicamada contendo componentes citoplasmáticos, que são conhecidos como autofagossomos. Nos últimos anos, muitos estudos mostraram que a autofagia é uma faca de dois gumes no desenvolvimento de tumores. Por um lado, a autofagia pode ajudar os tumores a se adaptarem à deficiência nutricional do microambiente tumoral e, até certo ponto, proteger as células tumorais de lesões induzidas por quimioterapia ou radioterapia. Por outro lado, alguns ativadores de autofagia podem aumentar a sensibilidade dos tumores à radioterapia e quimioterapia induzindo a autofagia, e a ativação excessiva da autofagia também pode levar à morte das células tumorais [[78], [79], [80], [81] ]. No geral, o ambiente específico das células tumorais determinará se a autofagia aumenta ou inibe o desenvolvimento do tumor e melhorar a atividade da autofagia também se tornou uma nova abordagem na terapia do câncer. A morte celular programada mediada por autofagia após a intervenção da IVM e o aumento da eficácia anticancerígena da IVM pela regulação da autofagia são tópicos interessantes. A intervenção com IVM nas linhas celulares de câncer de mama MCF-7 e MDA-MB-231 aumentou significativamente o fluxo autofágico intracelular e a expressão de proteínas-chave da autofagia, como LC3, Bclin1, Atg5, e a formação de autofagossomos podem ser observadas [32]. No entanto, depois de usar os inibidores de autofagia cloroquina e wortmannin ou derrubar Bclin1 e Atg5 por siRNA para inibir a autofagia, a atividade anticancerígena de IVM diminuiu significativamente. Isso prova que o IVM exerce principalmente um efeito antitumoral através da via de autofagia. Além disso, os pesquisadores também usaram o ativador de Akt CA-Akt para provar que IVM induz principalmente autofagia por inibir a fosforilação de Akt e mTOR (Fig. 3). O fenômeno da autofagia induzida por IVM também foi relatado em glioma e melanoma [64,74]. Todos os achados acima indicam o potencial de IVM como um ativador de autofagia para induzir a morte dependente de autofagia em células tumorais.
3.3. Conversa cruzada entre apoptose induzida por IVM e autofagia
A relação entre apoptose e autofagia é muito complicada, e a conversa cruzada entre os dois desempenha um papel vital no desenvolvimento do câncer [82]. Obviamente, os resultados existentes sugerem que a apoptose e a autofagia induzidas por IVM também exibem conversa cruzada. Por exemplo, foi encontrado em células de melanoma SK-MEL-28 que IVM pode promover apoptose, bem como autofagia [74]. Depois de usar o inibidor de autofagia bafilomicina A1 ou siRNA para regular negativamente Beclin1, a apoptose induzida por IVM foi significativamente aumentada, o que sugeriu que a autofagia aprimorada reduzirá a apoptose induzida por IVM e que a autofagia induzida por IVM pode proteger as células tumorais da apoptose. No entanto, em experimentos com células de câncer de mama, também foi descoberto que a IVM pode induzir autofagia, e a autofagia aprimorada pode aumentar a atividade anticancerígena da IVM [37]. A pesquisa mais recente mostra que, em circunstâncias normais, a autofagia impedirá a indução de apoptose e a ativação da enzima caspase relacionada à apoptose inibirá a autofagia. No entanto, em circunstâncias especiais, a autofagia também pode ajudar a induzir apoptose ou necrose [83]. Em suma, a relação entre apoptose induzida por IVM e autofagia envolve um mecanismo regulatório complexo, e o mecanismo molecular específico precisa de mais estudos. Acreditamosque a exploração mais profunda do mecanismo pode orientar ainda mais o uso da IVM no tratamento do câncer.
3.4. Piroptose
A piroptose é um tipo de morte celular inflamatória induzida por inflamassomas. O inflamassoma é um complexo multimolecular contendo receptor de reconhecimento de padrões (PRR), proteína do tipo speck associada à apoptose contendo um CARD (ASC) e pró-caspase-1. O PRR pode identificar padrões moleculares associados a patógenos (PAMPs) que são estruturalmente estáveis ​​e evolutivamente conservados na superfície de microrganismos patogênicos e padrões moleculares associados a danos (DAMPs) produzidos por células danificadas [84,85]. Os inflamassomas iniciam a conversão de pró-caspase-1 via auto-cisalhamento em caspase-1 ativada. A caspase-1 ativada pode fazer com que a pró-IL-1β e a pró-IL-18 amadureçam e sejam secretadas. A Gasdermina D (GSDMD) é um substrato para a caspase-1 ativada e é considerada uma proteína chave na execução da piroptose [86,87]. Em um experimento de Draganov, descobriu-se que a liberação de lactato desidrogenase (LDH) e caspase-1 ativada foi significativamente aumentada em células de câncer de mama após intervenção IVM [37]. Além disso, fenômenos característicos de piroptose, como inchaço e ruptura das células, foram observados. Os autores especularam que a MIV pode mediar a ocorrência de piroptose pela via P2 × 4/P2 × 7/NLRP3 (Fig. 4), mas não há evidências específicas que comprovem essa especulação. Curiosamente, em experimentos de isquemia-reperfusão, IVM agravou a isquemia renal através da via P2 × 7/NLRP3 e aumentou a liberação de citocinas pró-inflamatórias em células tubulares proximais humanas [88]. Embora existam atualmente poucas evidências mostrando que o IVM induz piroptose, é importante investigar o papel do IVM na indução de piroptose em outros cânceres em estudos futuros e perceber que o IVM pode induzir diferentes tipos de morte celular programada em diferentes tipos de câncer.
4. Efeito anticancerígeno do IVM através de outras vias 
4.1. Células-tronco do câncer
As células-tronco cancerígenas (CSCs) são uma população de células semelhantes às células-tronco com características de autorrenovação e potencial de diferenciação no tecido tumoral [89,90]. Embora as CSCs sejam semelhantes às células-tronco em termos de função, devido à falta de um mecanismo de regulação de feedback negativo para a autorrenovação das células-tronco, suas poderosas habilidades de proliferação e diferenciação multidirecional são irrestritas, o que permite que as CSCs mantenham certas atividades durante a quimioterapia e radioterapia [[90], [91], [92]]. Quando o ambiente externo é adequado, as CSCs proliferam rapidamente para reativar a formação e o crescimento de tumores. Portanto, as CSCs têm sido amplamente reconhecidas como a principal causa de recorrência após o tratamento [93,94]. Guadalupe avaliou o efeito da IVM em CSCs na linha celular de câncer de mama MDA-MB-231 [95]. Os resultados experimentais mostraram que IVM teria como alvo e inibir populações de células ricas em CSCs preferencialmente em comparação com outras populações de células em células MDA-MB-231. Além disso, a expressão da proteína homeobox NANOG, proteína de ligação ao octamer 4 (OCT-4) e SRY-box 2 (SOX-2), que estão intimamente relacionadas com a capacidade de autorrenovação e diferenciação das células-tronco em CSCs, foram também significativamente inibido pelo IVM. Isso sugere que o IVM pode ser usado como um potencial inibidor de CSCs para a terapia do câncer. Outros estudos mostraram que IVM pode inibir CSCs regulando o eixo PAK1-STAT3 [96]
4.2. Reversão da resistência a múltiplas drogas do tumor
A MDR de células tumorais é a principal causa de recaídas e mortes após quimioterapia [97]. O efluxo de drogas mediado pela família de transporte de ligação de ATP e a superexpressão da glicoproteína P (P-gp) são amplamente considerados as principais causas de MDR tumoral [[98], [99], [100]]. Vários estudos confirmaram que a IVM pode reverter a resistência aos medicamentos inibindo a P-gp e as proteínas associadas ao MDR [[101], [102], [103]]. Nos experimentos de Didier testando o efeito da IVM na leucemia linfocítica, a IVM poderia ser usada como um inibidor da P-gp para afetar a MDR [22]. No experimento de Jiang, o IVM reverteu a resistência à droga da linha celular de câncer colorretal resistente à vincristina HCT-8, da linha celular de câncer de mama resistente à doxorrubicina MCF-7 e da linha celular de leucemia mielóide crônica K562 [104]. O IVM inibiu a ativação de EGFR e a via de sinalização ERK/Akt/NF-kappa B a jusante para regular negativamente a expressão de P-gp. Anteriormente, mencionamos o papel da MIV no câncer de próstata resistente ao docetaxel [50] e no colangiocarcinoma resistente à gencitabina [44]. Esses resultados indicaram a importância da aplicação da MIV para o tratamento de pacientes quimioterápicos com MDR.
4.3. Terapia direcionada aprimorada e tratamento combinado
O tratamento direcionado de genes mutados chave no câncer, como EGFR no câncer de pulmão e HER2 no câncer de mama, pode alcançar efeitos clínicos poderosos [105,106]. A HSP27 é uma proteína chaperona molecular altamente expressa em muitos cânceres e associada à resistência a drogas e prognóstico ruim. É considerado como um novo alvo para a terapia do câncer [107]. Estudos recentes descobriram que o IVM pode ser usado como um inibidor da fosforilação de HSP27 para aumentar a atividade de drogas anti-EGFR em tumores dirigidos por EGFR/HER2. Um experimento descobriu que IVM poderia aumentar significativamente os efeitos inibitórios de erlotinib e cetuximab no câncer de pulmão e câncer colorretal [50]. Anteriormente, mencionamos que a MIV combinada com medicamentos quimioterápicos convencionais, como cisplatina [60], paclitaxel [59], daunorrubicina e citarabina [51], ou com medicamentos direcionados, como dasatinib [53] e dapafenib [73] mostra grande potencial para câncer tratamento. A combinação de medicamentos pode efetivamente aumentar a eficácia, reduzir a toxicidade ou retardar a resistência aos medicamentos. Portanto, a terapia combinada é o método mais comum de quimioterapia. A IVM tem uma variedade de diferentes mecanismos de ação em diferentes tipos de câncer, e seu potencial para efeitos sinérgicos e maior eficácia na terapia combinada foi de particular interesse para nós. Não só a IVM não se sobrepõe a outras terapias em termos do seu mecanismo de acção, como o facto de a IVM ter múltiplos alvos sugere que não é fácil produzir resistência à IVM. Portanto, estudos e testes contínuos de terapias medicamentosas combinadas seguras e eficazes são essenciais para maximizar os efeitos anticancerígenos da MIV.
5.Alvos moleculares e vias de sinalização envolvidas no potencial anticancerígeno de IVM
Como mencionado acima, o mecanismo anticancerígeno da IVM envolve uma ampla gama de vias de sinalização como Wnt/β-catenina, Akt/mTOR, MAPK e outros possíveis alvos como PAK1 e HSP27, além de outros mecanismos de ação (Tabela 2). . Descobrimos que o IVM inibe o desenvolvimento de células tumorais de maneira dependente de PAK1 na maioria dos cânceres. Consequentemente, nos concentramos em discutir o papel da PAK1 quinase e a comunicação cruzada entre várias vias e PAK1 para fornecer novas perspectivas sobre o mecanismo da função IVM.
Como membro da família PAK de serina/treonina quinases, PAK1 tem uma infinidade de funções biológicas, como regulação da proliferação e apoptose celular, movimento celular, dinâmica e transformação do citoesqueleto [108]. Estudos anteriores indicaram que a PAK1 está localizada na interseção de múltiplas vias de sinalização relacionadas à tumorigênese e é um regulador chave das redes de sinalização do câncer (Fig. 5). A ativação excessiva de PAK1 está envolvida na formação, desenvolvimento e invasão de vários tipos de câncer [109,110]. O direcionamento de PAK1 é um método novo e promissor para o tratamento do câncer, e o desenvolvimento de inibidores de PAK1 atraiuatenção generalizada [111]. O IVM é um inibidor de PAK1 em uma variedade de tumores e tem boa segurança em comparação com outros inibidores de PAK1, como IPA-3. Em melanoma e carcinoma de nasofaringe, IVM inibiu a atividade de proliferação celular inibindo PAK1 para regular negativamente a expressão de MEK 1/2 e ERK1/2 [69,73]. Após a intervenção de IVM no câncer de mama, a expressão de PAK1 também foi inibida significativamente, e o uso de siRNA para regular negativamente a expressão de PAK1 em células tumorais reduziu significativamente a atividade anticancerígena de IVM. Curiosamente, IVM pode inibir a expressão da proteína PAK1, mas não afetou a expressão de PAK1 mRNA [32]. O inibidor de proteassoma MG132 reverteu o efeito supressor de IVM, o que indicou que IVM degradou principalmente PAK1 através da via de ubiquitinação do proteassoma. Já mencionamos que o IVM desempenha um papel anticancerígeno em vários tumores, regulando vias intimamente relacionadas ao desenvolvimento do câncer. PAK1 está na junção dessas vias. No geral, especulamos que IVM pode regular o Akt/mTOR, MAPK e outras vias que são essenciais para a proliferação de células tumorais inibindo a expressão de PAK1, que desempenha um papel anticancerígeno na maioria dos cânceres.
6. Resumo e perspectivas
Os tumores malignos são uma das doenças mais graves que ameaçam a saúde humana e o desenvolvimento social na atualidade, e a quimioterapia é um dos métodos mais importantes para o tratamento de tumores malignos. Nos últimos anos, muitos novos medicamentos quimioterápicos entraram na clínica, mas as células tumorais são propensas à resistência aos medicamentos e reações adversas óbvias a esses medicamentos. Portanto, o desenvolvimento de novas drogas que possam vencer a resistência, melhorar a atividade anticancerígena e reduzir os efeitos colaterais é um problema urgente a ser resolvido na quimioterapia. O reposicionamento de drogas é um atalho para acelerar o desenvolvimento de drogas anticancerígenas.
Como mencionado acima, a droga antiparasitária de amplo espectro IVM, que é amplamente utilizada no campo do controle parasitário, tem muitas vantagens que sugerem que vale a pena desenvolver como uma potencial nova droga anticâncer. A IVM inibe seletivamente a proliferação de tumores em uma dose que não é tóxica para as células normais e pode reverter a MDR dos tumores. É importante ressaltar que o IVM é um medicamento estabelecido usado para o tratamento de doenças parasitárias, como oncocercose e elefantíase. Tem sido amplamente utilizado em humanos há muitos anos, e suas várias propriedades farmacológicas, incluindo efeitos toxicológicos de longo e curto prazo e características do metabolismo de drogas são muito claras. Em voluntários saudáveis, a dose foi aumentada para 2 mg/Kg e não foram encontradas reações adversas graves, enquanto testes em animais como camundongos, ratos e coelhos descobriram que a dose letal mediana (LD50) de IVM foi de 10-50 mg /Kg [112] Além disso, a IVM também provou mostrar boa permeabilidade em tecidos tumorais [50]. Infelizmente, não houve relatos de ensaios clínicos de IVM como uma droga anticancerígena. Ainda existem alguns problemas que precisam ser estudados e resolvidos antes que o IVM seja usado na clínica.
(1) Embora um grande número de resultados de pesquisas indique que IVM afeta múltiplas vias de sinalização em células tumorais e inibe a proliferação, IVM pode causar atividade antitumoral em células tumorais através de alvos específicos. No entanto, até o momento, nenhum alvo exato para ação de IVM foi encontrado. (2) A MIV regula o microambiente tumoral, inibe a atividade das células-tronco tumorais e reduz a angiogênese tumoral e a metástase tumoral. No entanto, não há uma conclusão sistemática e clara sobre o mecanismo molecular relacionado. Portanto, em pesquisas futuras, é necessário continuar a explorar o mecanismo específico de IVM envolvido na regulação do microambiente tumoral, angiogênese e EMT. (3) Tornou-se cada vez mais claro que a MIV pode induzir um modo misto de morte celular envolvendo apoptose, autofagia e piroptose, dependendo das condições celulares e do tipo de câncer. Identificar o contribuinte predominante ou mais importante para a morte celular em cada tipo de câncer e ambiente será crucial para determinar a eficácia dos tratamentos baseados em IVM. (4) A MIV pode aumentar a sensibilidade dos quimioterápicos e reduzir a produção de resistência. Portanto, a MIV deve ser usada em combinação com outras drogas para obter o melhor efeito, enquanto o plano de medicação específico usado para combinar a MIV com outras drogas ainda precisa ser explorado.
A maioria das pesquisas anticancerígenas realizadas na família das avermectinas se concentrou na avermectina e na IVM até agora. Os medicamentos da família da avermectina, como a selamectina [36,41,113] e a doramectina [114], também têm efeitos anticancerígenos, conforme relatado anteriormente. Com o desenvolvimento de derivados da família das avermectinas que são mais eficientes e menos tóxicos, pesquisas relevantes sobre o mecanismo anticancerígeno dos derivados ainda têm grande valor. A pesquisa existente é suficiente para demonstrar o grande potencial da IVM e suas perspectivas como uma nova droga anticâncer promissora após pesquisas adicionais. Acreditamos que a IVM pode ser desenvolvida e introduzida clinicamente como parte de novos tratamentos contra o câncer em um futuro próximo.
Declaração de Interesse Concorrente
Os autores não relatam declarações de interesse.
Agradecimentos
Este trabalho foi apoiado pelo Projeto da Equipe de Inovação em Pesquisa Científica de Faculdades e Universidades de Anhui (2016-40), Fundação de Ciências Naturais da Cidade de Bengbu (2019-12), Projetos-Chave de Pesquisa Científica da Faculdade de Medicina de Bengbu (BYKY2019009ZD) e Universidade Nacional Programa de Formação de Estudantes em Inovação e Empreendedorismo (201910367001)
Referencias
1. Campbell W.C., Fisher M.H., Stapley E.O., Albers-Schonberg G., Jacob T.A. Ivermectin: a potent new antiparasitic agent. Science. 1983;221(4613):823–828. doi: 10.1126/science.6308762. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
2. Prichard R.K., Geary T.G. Perspectives on the utility of moxidectin for the control of parasitic nematodes in the face of developing anthelmintic resistance. Int J Parasitol Drugs Drug Resist. 2019;10:69–83. doi: 10.1016/j.ijpddr.2019.06.002. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
3. Ashour D.S. Ivermectin: From theory to clinical application. Int J Antimicrob Agents. 2019;54(2):134–142. doi: 10.1016/j.ijantimicag.2019.05.003. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
4. Goudie A.C., Evans N.A., Gration K.A., Bishop B.F., Gibson S.P., Holdom K.S., Kaye B., Wicks S.R., Lewis D., Weatherley A.J. Doramectin--a potent novel endectocide. Vet Parasitol. 1993;49(1):5–15. doi: 10.1016/0304-4017(93)90218-c. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
5. Bishop B.F., Bruce C.I., Evans N.A., Goudie A.C., Gration K.A., Gibson S.P., Pacey M.S., Perry D.A., Walshe N.D., Witty M.J. Selamectin: a novel broad-spectrum endectocide for dogs and cats. Vet Parasitol. 2000;91(3-4):163–176. doi: 10.1016/s0304-4017(00)00289-2. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
6. Laing R., Gillan V., Devaney E. Ivermectin - Old Drug, New Tricks? Trends Parasitol. 2017;33(6):463–472. doi: 10.1016/j.pt.2017.02.004. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
7. Crump A. Ivermectin: enigmatic multifaceted’ wonder’ drug continues to surprise and exceed expectations. J Antibiot (Tokyo) 2017;70(5):495–505. doi: 10.1038/ja.2017.11. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
8. McKerrow J.H. Recognition of the role of Natural Products as drugs to treat neglected tropical diseases by the 2015 Nobel prize in physiology or medicine. Nat Prod Rep. 2015;32(12):1610–1611. doi: 10.1039/c5np90043c. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
9. Kane N.S., Hirschberg B., Qian S., Hunt D., Thomas B., Brochu R., Ludmerer S.W., Zheng Y., Smith M., Arena J.P., Cohen C.J., SchmatzD., Warmke J., Cully D.F. Drug-resistant Drosophila indicate glutamate-gated chloride channels are targets for the antiparasitics nodulisporic acid and ivermectin. Proc Natl Acad Sci U S A. 2000;97(25):13949–13954. doi: 10.1073/pnas.240464697. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
10. Fritz L.C., Wang C.C., Gorio A. Avermectin B1a irreversibly blocks postsynaptic potentials at the lobster neuromuscular junction by reducing muscle membrane resistance. Proc Natl Acad Sci U S A. 1979;76(4):2062–2066. doi: 10.1073/pnas.76.4.2062. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
11. Smit M.R., Ochomo E.O., Aljayyoussi G., Kwambai T.K., Abong’o B.O., Chen T., Bousema T., Slater H.C., Waterhouse D., Bayoh N.M., Gimnig J.E., Samuels A.M., Desai M.R., Phillips-Howard P.A., Kariuki S.K., Wang D., Ward S.A., Ter Kuile F.O. Safety and mosquitocidal efficacy of high-dose ivermectin when co-administered with dihydroartemisinin-piperaquine in Kenyan adults with uncomplicated malaria (IVERMAL): a randomised, double-blind, placebo-controlled trial. Lancet Infect Dis. 2018;18(6):615–626. doi: 10.1016/s1473-3099(18)30163-4. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
12. Foy B.D., Alout H., Seaman J.A., Rao S., Magalhaes T., Wade M., Parikh S., Soma D.D., Sagna A.B., Fournet F., Slater H.C., Bougma R., Drabo F., Diabate A., Coulidiaty A.G.V., Rouamba N., Dabire R.K. Efficacy and risk of harms of repeat ivermectin mass drug administrations for control of malaria (RIMDAMAL): a cluster-randomised trial. Lancet. 2019;393(10180):1517–1526. doi: 10.1016/s0140-6736(18)32321-3. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
13. Udensi U.K., Fagbenro-Beyioku A.F. Effect of ivermectin on Trypanosoma brucei brucei in experimentally infected mice. J Vector Borne Dis. 2012;49(3):143–150. [PubMed] [Google Scholar]
14. Katz N., Araujo N., Coelho P.M.Z., Morel C.M., Linde-Arias A.R., Yamada T., Horimatsu Y., Suzuki K., Sunazuka T., Omura S. Ivermectin efficacy against Biomphalaria, intermediate host snail vectors of Schistosomiasis. J Antibiot (Tokyo) 2017;70(5):680–684. doi: 10.1038/ja.2017.31. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
15. B. MM, E.-S. AA Therapeutic potential of myrrh and ivermectin against experimental Trichinella spiralis infection in mice. The Korean journal of parasitology. 2013;51(3):297–304. doi: 10.3347/kjp.2013.51.3.297. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
16. Hanafi H.A., Szumlas D.E., Fryauff D.J., El-Hossary S.S., Singer G.A., Osman S.G., Watany N., Furman B.D., Hoel D.F. Effects of ivermectin on blood-feeding Phlebotomus papatasi, and the promastigote stage of Leishmania major. Vector Borne Zoonotic Dis. 2011;11(1):43–52. doi: 10.1089/vbz.2009.0030. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
17. Mastrangelo E., Pezzullo M., De Burghgraeve T., Kaptein S., Pastorino B., Dallmeier K., de Lamballerie X., Neyts J., Hanson A.M., Frick D.N., Bolognesi M., Milani M. Ivermectin is a potent inhibitor of flavivirus replication specifically targeting NS3 helicase activity: new prospects for an old drug. J Antimicrob Chemother. 2012;67(8):1884–1894. doi: 10.1093/jac/dks147. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
18. Wagstaff K.M., Sivakumaran H., Heaton S.M., Harrich D., Jans D.A. Ivermectin is a specific inhibitor of importin alpha/beta-mediated nuclear import able to inhibit replication of HIV-1 and dengue virus. Biochem J. 2012;443(3):851–856. doi: 10.1042/bj20120150. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
19. Caly L., Druce J.D., Catton M.G., Jans D.A., Wagstaff K.M. The FDA-approved Drug Ivermectin inhibits the replication of SARS-CoV-2 in vitro. Antiviral Res. 2020:104787. doi: 10.1016/j.antiviral.2020.104787. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
20. Yan S., Ci X., Chen N., Chen C., Li X., Chu X., Li J., Deng X. Anti-inflammatory effects of ivermectin in mouse model of allergic asthma. Inflamm Res. 2011;60(6):589–596. doi: 10.1007/s00011-011-0307-8. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
21. Franklin K.M., Asatryan L., Jakowec M.W., Trudell J.R., Bell R.L., Davies D.L. P2X4 receptors (P2X4Rs) represent a novel target for the development of drugs to prevent and/or treat alcohol use disorders. Front Neurosci. 2014;8:176. doi: 10.3389/fnins.2014.00176. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
22. Didier A., Loor F. The abamectin derivative ivermectin is a potent p-glycoprotein inhibitor. Anticancer Drugs. 1996;7(7):745–751. doi: 10.1097/00001813-199609000-00005. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
23. Markowska A., Kaysiewicz J., Markowska J., Huczynski A. Doxycycline, salinomycin, monensin and ivermectin repositioned as cancer drugs. Bioorg Med Chem Lett. 2019;29(13):1549–1554. doi: 10.1016/j.bmcl.2019.04.045. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
24. Juarez M., Schcolnik-Cabrera A., Duenas-Gonzalez A. The multitargeted drug ivermectin: from an antiparasitic agent to a repositioned cancer drug. Am J Cancer Res. 2018;8(2):317–331. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
25. Liu J., Zhang K., Cheng L., Zhu H., Xu T. Progress in Understanding the Molecular Mechanisms Underlying the Antitumour Effects of Ivermectin. Drug Des Devel Ther. 2020;14:285–296. doi: 10.2147/dddt.S237393. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
26. Antoszczak M., Markowska A., Markowska J., Huczynski A. Old wine in new bottles: Drug repurposing in oncology. Eur J Pharmacol. 2020;866:172784. doi: 10.1016/j.ejphar.2019.172784. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
27. Kobayashi Y., Banno K., Kunitomi H., Tominaga E., Aoki D. Current state and outlook for drug repositioning anticipated in the field of ovarian cancer. J Gynecol Oncol. 2019;30(1):e10. doi: 10.3802/jgo.2019.30.e10. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
28. Yoshida G.J. Therapeutic strategies of drug repositioning targeting autophagy to induce cancer cell death: from pathophysiology to treatment. J Hematol Oncol. 2017;10(1):67. doi: 10.1186/s13045-017-0436-9. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
29. Wurth R., Thellung S., Bajetto A., Mazzanti M., Florio T., Barbieri F. Drug-repositioning opportunities for cancer therapy: novel molecular targets for known compounds. Drug Discov Today. 2016;21(1):190–199. doi: 10.1016/j.drudis.2015.09.017. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
30. Harbeck N., Penault-Llorca F., Cortes J., Gnant M., Houssami N., Poortmans P., Ruddy K., Tsang J., Cardoso F. Breast cancer. Nat Rev Dis Primers. 2019;5(1):66. doi: 10.1038/s41572-019-0111-2. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
31. Ginsburg O., Bray F., Coleman M.P., Vanderpuye V., Eniu A., Kotha S.R., Sarker M., Huong T.T., Allemani C., Dvaladze A., Gralow J., Yeates K., Taylor C., Oomman N., Krishnan S., Sullivan R., Kombe D., Blas M.M., Parham G., Kassami N., Conteh L. The global burden of women’s cancers: a grand challenge in global health. Lancet. 2017;389(10071):847–860. doi: 10.1016/s0140-6736(16)31392-7. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
32. Dou Q., Chen H.N., Wang K., Yuan K., Lei Y., Li K., Lan J., Chen Y., Huang Z., Xie N., Zhang L., Xiang R., Nice E.C., Wei Y., Huang C. Ivermectin Induces Cytostatic Autophagy by Blocking the PAK1/Akt Axis in Breast Cancer. Cancer Res. 2016;76(15):4457–4469. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-15-2887. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
33. Diao H., Cheng N., Zhao Y., Xu H., Dong H., Thamm D.H., Zhang D., Lin D. Ivermectin inhibits canine mammary tumor growth by regulating cell cycle progression and WNT signaling. BMC Vet Res. 2019;15(1):276. doi: 10.1186/s12917-019-2026-2. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
34. Diana A., Carlino F., Franzese E., Oikonomidou O., Criscitiello C., De Vita F., Ciardiello F., Orditura M. Early Triple Negative Breast Cancer: Conventional Treatment and Emerging Therapeutic Landscapes. Cancers (Basel) 2020;12(4) doi: 10.3390/cancers12040819. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
35. Deepak K.G.K., Vempati R., Nagaraju G.P.,Dasari V.R., N. S, Rao D.N., Malla R.R. Tumor microenvironment: Challenges and opportunities in targeting metastasis of triple negative breast cancer. Pharmacol Res. 2020;153:104683. doi: 10.1016/j.phrs.2020.104683. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
36. Kwon Y.J., Petrie K., Leibovitch B.A., Zeng L., Mezei M., Howell L., Gil V., Christova R., Bansal N., Yang S., Sharma R., Ariztia E.V., Frankum J., Brough R., Sbirkov Y., Ashworth A., Lord C.J., Zelent A., Farias E., Zhou M.M., Waxman S. Selective Inhibition of SIN3 Corepressor with Avermectins as a Novel Therapeutic Strategy in Triple-Negative Breast Cancer. Mol Cancer Ther. 2015;14(8):1824–1836. doi: 10.1158/1535-7163.MCT-14-0980-T. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
37. Draganov D., Gopalakrishna-Pillai S., Chen Y.R., Zuckerman N., Moeller S., Wang C., Ann D., Lee P.P. Modulation of P2X4/P2X7/Pannexin-1 sensitivity to extracellular ATP via Ivermectin induces a non-apoptotic and inflammatory form of cancer cell death. Sci Rep. 2015;5:16222. doi: 10.1038/srep16222. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
38. Thanh Huong P., Gurshaney S., Thanh Binh N., Gia Pham A., Hoang Nguyen H., Thanh Nguyen X., Pham-The H., Tran P.T., Truong Vu K., Xuan Duong N., Pelucchi C., La Vecchia C., Boffetta P., Nguyen H.D., Luu H.N. Emerging Role of Circulating Tumor Cells in Gastric Cancer. Cancers (Basel) 2020;12(3) doi: 10.3390/cancers12030695. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
39. Nambara S., Masuda T., Nishio M., Kuramitsu S., Tobo T., Ogawa Y., Hu Q., Iguchi T., Kuroda Y., Ito S., Eguchi H., Sugimachi K., Saeki H., Oki E., Maehara Y., Suzuki A., Mimori K. Antitumor effects of the antiparasitic agent ivermectin via inhibition of Yes-associated protein 1 expression in gastric cancer. Oncotarget. 2017;8(64):107666–107677. doi: 10.18632/oncotarget.22587. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
40. Zanconato F., Cordenonsi M., Piccolo S. YAP and TAZ: a signalling hub of the tumour microenvironment. Nat Rev Cancer. 2019;19(8):454–464. doi: 10.1038/s41568-019-0168-y. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
41. Melotti A., Mas C., Kuciak M., Lorente-Trigos A., Borges I., Ruiz i Altaba A. The river blindness drug Ivermectin and related macrocyclic lactones inhibit WNT-TCF pathway responses in human cancer. EMBO Mol Med. 2014;6(10):1263–1278. doi: 10.15252/emmm.201404084. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
42. Yang J.D., Hainaut P., Gores G.J., Amadou A., Plymoth A., Roberts L.R. A global view of hepatocellular carcinoma: trends, risk, prevention and management. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 2019;16(10):589–604. doi: 10.1038/s41575-019-0186-y. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
43. Nishio M., Sugimachi K., Goto H., Wang J., Morikawa T., Miyachi Y., Takano Y., Hikasa H., Itoh T., Suzuki S.O., Kurihara H., Aishima S., Leask A., Sasaki T., Nakano T., Nishina H., Nishikawa Y., Sekido Y., Nakao K., Shin-Ya K., Mimori K., Suzuki A. Dysregulated YAP1/TAZ and TGF-beta signaling mediate hepatocarcinogenesis in Mob1a/1b-deficient mice. Proc Natl Acad Sci U S A. 2016;113(1):71–80. doi: 10.1073/pnas.1517188113. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
44. Intuyod K., Hahnvajanawong C., Pinlaor P., Pinlaor S. Anti-parasitic Drug Ivermectin Exhibits Potent Anticancer Activity Against Gemcitabine-resistant Cholangiocarcinoma In Vitro. Anticancer Res. 2019;39(9):4837–4843. doi: 10.21873/anticanres.13669. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
45. Wang Y., Su J., Wang Y., Fu D., Ideozu J.E., Geng H., Cui Q., Wang C., Chen R., Yu Y., Niu Y., Yue D. The interaction of YBX1 with G3BP1 promotes renal cell carcinoma cell metastasis via YBX1/G3BP1-SPP1- NF-kappaB signaling axis. J Exp Clin Cancer Res. 2019;38(1):386. doi: 10.1186/s13046-019-1347-0. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
46. Xu W.H., Shi S.N., Xu Y., Wang J., Wang H.K., Cao D.L., Shi G.H., Qu Y.Y., Zhang H.L., Ye D.W. Prognostic implications of Aquaporin 9 expression in clear cell renal cell carcinoma. J Transl Med. 2019;17(1):363. doi: 10.1186/s12967-019-2113-y. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
47. Siegel R.L., Miller K.D., Jemal A. Cancer statistics, 2019. CA Cancer J Clin. 2019;69(1):7–34. doi: 10.3322/caac.21551. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
48. Zhu M., Li Y., Zhou Z. Antibiotic ivermectin preferentially targets renal cancer through inducing mitochondrial dysfunction and oxidative damage. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2017;492(3):373–378. doi: 10.1016/j.bbrc.2017.08.097. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
49. Arcangeli S., Pinzi V., Arcangeli G. Epidemiology of prostate cancer and treatment remarks. World J Radiol. 2012;4(6):241–246. doi: 10.4329/wjr.v4.i6.241. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
50. Nappi L., Aguda A.H., Nakouzi N.A., Lelj-Garolla B., Beraldi E., Lallous N., Thi M., Moore S., Fazli L., Battsogt D., Stief S., Ban F., Nguyen N.T., Saxena N., Dueva E., Zhang F., Yamazaki T., Zoubeidi A., Cherkasov A., Brayer G.D., Gleave M. Ivermectin inhibits HSP27 and potentiates efficacy of oncogene targeting in tumor models. J Clin Invest. 2020;130(2):699–714. doi: 10.1172/jci130819. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
51. Sharmeen S., Skrtic M., Sukhai M.A., Hurren R., Gronda M., Wang X., Fonseca S.B., Sun H., Wood T.E., Ward R., Minden M.D., Batey R.A., Datti A., Wrana J., Kelley S.O., Schimmer A.D. The antiparasitic agent ivermectin induces chloride-dependent membrane hyperpolarization and cell death in leukemia cells. Blood. 2010;116(18):3593–3603. doi: 10.1182/blood-2010-01-262675. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
52. Apperley J.F. Chronic myeloid leukaemia. Lancet. 2015;385(9976):1447–1459. doi: 10.1016/s0140-6736(13)62120-0. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
53. Wang J., Xu Y., Wan H., Hu J. Antibiotic ivermectin selectively induces apoptosis in chronic myeloid leukemia through inducing mitochondrial dysfunction and oxidative stress. Biochem Biophys Res Commun. 2018;497(1):241–247. doi: 10.1016/j.bbrc.2018.02.063. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
54. Dong Z., Yu C., Rezhiya K., Gulijiahan A., Wang X. Downregulation of miR-146a promotes tumorigenesis of cervical cancer stem cells via VEGF/CDC42/PAK1 signaling pathway. Artif Cells Nanomed Biotechnol. 2019;47(1):3711–3719. doi: 10.1080/21691401.2019.1664560. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
55. Carneiro S.R., da Silva Lima A.A., de Fatima Silva Santos G., de Oliveira C.S.B., Almeida M.C.V., da Conceicao Nascimento Pinheiro M. Relationship between Oxidative Stress and Physical Activity in Women with Squamous Intraepithelial Lesions in a Cervical Cancer Control Program in the Brazilian Amazon. Oxid Med Cell Longev. 2019;2019 doi: 10.1155/2019/8909852. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
56. Zhang P., Zhang Y., Liu K., Liu B., Xu W., Gao J., Ding L., Tao L. Ivermectin induces cell cycle arrest and apoptosis of HeLa cells via mitochondrial pathway. Cell Prolif. 2019;52(2):e12543. doi: 10.1111/cpr.12543. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
57. Moufarrij S., Dandapani M., Arthofer E., Gomez S., Srivastava A., Lopez-Acevedo M., Villagra A., Chiappinelli K.B. Epigenetic therapy for ovarian cancer: promise and progress. Clin Epigenetics. 2019;11(1):7. doi: 10.1186/s13148-018-0602-0. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
58. Hashimoto H., Messerli S.M., Sudo T., Maruta H. Ivermectin inactivates the kinase PAK1 and blocks the PAK1-dependent growth of human ovarian cancer and NF2 tumor cell lines. Drug Discov Ther. 2009;3(6):243–246. [PubMed] [Google Scholar]
59. Kodama M., Kodama T., Newberg J.Y., Katayama H., Kobayashi M., Hanash S.M., Yoshihara K., Wei Z., Tien J.C., Rangel R., Hashimoto K., Mabuchi S., Sawada K., Kimura T., Copeland N.G., Jenkins N.A. In vivo loss-of-function screens identify KPNB1 as a new druggable oncogene in epithelial ovarian cancer. Proc NatlAcad Sci U S A. 2017;114(35):E7301–E7310. doi: 10.1073/pnas.1705441114. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
60. Zhang X., Qin T., Zhu Z., Hong F., Xu Y., Zhang X., Xu X., Ma A. Ivermectin Augments the In Vitro and In Vivo Efficacy of Cisplatin in Epithelial Ovarian Cancer by Suppressing Akt/mTOR Signaling. Am J Med Sci. 2020;359(2):123–129. doi: 10.1016/j.amjms.2019.11.001. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
61. Molinaro A.M., Taylor J.W., Wiencke J.K., Wrensch M.R. Genetic and molecular epidemiology of adult diffuse glioma. Nat Rev Neurol. 2019;15(7):405–417. doi: 10.1038/s41582-019-0220-2. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
62. Wen P.Y., Kesari S. Malignant gliomas in adults. N Engl J Med. 2008;359(5):492–507. doi: 10.1056/NEJMra0708126. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
63. Liu Y., Fang S., Sun Q., Liu B. Anthelmintic drug ivermectin inhibits angiogenesis, growth and survival of glioblastoma through inducing mitochondrial dysfunction and oxidative stress. Biochem Biophys Res Commun. 2016;480(3):415–421. doi: 10.1016/j.bbrc.2016.10.064. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
64. Liu J., Liang H., Chen C., Wang X., Qu F., Wang H., Yang K., Wang Q., Zhao N., Meng J., Gao A. Ivermectin induces autophagy-mediated cell death through the AKT/mTOR signaling pathway in glioma cells. Biosci Rep. 2019;39(12) doi: 10.1042/bsr20192489. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
65. Kwak H.J., Kim Y.J., Chun K.R., Woo Y.M., Park S.J., Jeong J.A., Jo S.H., Kim T.H., Min H.S., Chae J.S., Choi E.J., Kim G., Shin S.H., Gwak H.S., Kim S.K., Hong E.K., Lee G.K., Choi K.H., Kim J.H., Yoo H., Park J.B., Lee S.H. Downregulation of Spry2 by miR-21 triggers malignancy in human gliomas. Oncogene. 2011;30(21):2433–2442. doi: 10.1038/onc.2010.620. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
66. Yin J., Park G., Lee J.E., Choi E.Y., Park J.Y., Kim T.H., Park N., Jin X., Jung J.E., Shin D., Hong J.H., Kim H., Yoo H., Lee S.H., Kim Y.J., Park J.B., Kim J.H. DEAD-box RNA helicase DDX23 modulates glioma malignancy via elevating miR-21 biogenesis. Brain. 2015;138(Pt 9):2553–2570. doi: 10.1093/brain/awv167. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
67. Kircik L.H., Del Rosso J.Q., Layton A.M., Schauber J. Over 25 Years of Clinical Experience With Ivermectin: An Overview of Safety for an Increasing Number of Indications. J Drugs Dermatol. 2016;15(3):325–332. [PubMed] [Google Scholar]
68. Chen Y.P., Chan A.T.C., Le Q.T., Blanchard P., Sun Y., Ma J. Nasopharyngeal carcinoma. Lancet. 2019;394(10192):64–80. doi: 10.1016/s0140-6736(19)30956-0. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
69. Gallardo F., Mariamé B., Gence R., Tilkin-Mariamé A.-F. Macrocyclic lactones inhibit nasopharyngeal carcinoma cells proliferation through PAK1 inhibition and reduce in vivo tumor growth. Drug Design, Development and Therapy. 2018;12:2805–2814. doi: 10.2147/dddt.S172538. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
70. Thawani R., McLane M., Beig N., Ghose S., Prasanna P., Velcheti V., Madabhushi A. Radiomics and radiogenomics in lung cancer: A review for the clinician. Lung Cancer. 2018;115:34–41. doi: 10.1016/j.lungcan.2017.10.015. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
71. Patel H., Yacoub N., Mishra R., White A., Long Y., Alanazi S., Garrett J.T. Current Advances in the Treatment of BRAF-Mutant Melanoma. Cancers (Basel) 2020;12(2) doi: 10.3390/cancers12020482. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
72. Franken M.G., Leeneman B., Gheorghe M., Uyl-de Groot C.A., Haanen J., van Baal P.H.M. A systematic literature review and network meta-analysis of effectiveness and safety outcomes in advanced melanoma. Eur J Cancer. 2019;123:58–71. doi: 10.1016/j.ejca.2019.08.032. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
73. Gallardo F., Teiti I., Rochaix P., Demilly E., Jullien D., Mariamé B., Tilkin-Mariamé A.-F. Macrocyclic Lactones Block Melanoma Growth, Metastases Development and Potentiate Activity of Anti– BRAF V600 Inhibitors. Clinical Skin Cancer. 2016;1(1):4–14. doi: 10.1016/j.clsc.2016.05.001. e3. [CrossRef] [Google Scholar]
74. Deng F., Xu Q., Long J., Xie H. Suppressing ROS‐TFE3‐dependent autophagy enhances ivermectin‐induced apoptosis in human melanoma cells. Journal of Cellular Biochemistry. 2018;120(2):1702–1715. doi: 10.1002/jcb.27490. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
75. Nagata S. Apoptosis and Clearance of Apoptotic Cells. Annu Rev Immunol. 2018;36:489–517. doi: 10.1146/annurev-immunol-042617-053010. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
76. Degterev A., Yuan J. Expansion and evolution of cell death programmes. Nat Rev Mol Cell Biol. 2008;9(5):378–390. doi: 10.1038/nrm2393. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
77. Galluzzi L., Green D.R. Autophagy-Independent Functions of the Autophagy Machinery. Cell. 2019;177(7):1682–1699. doi: 10.1016/j.cell.2019.05.026. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
78. Levy J.M.M., Towers C.G., Thorburn A. Targeting autophagy in cancer. Nat Rev Cancer. 2017;17(9):528–542. doi: 10.1038/nrc.2017.53. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
79. Gewirtz D.A. The four faces of autophagy: implications for cancer therapy. Cancer Res. 2014;74(3):647–651. doi: 10.1158/0008-5472.Can-13-2966. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
80. Galluzzi L., Pietrocola F., Bravo-San Pedro J.M., Amaravadi R.K., Baehrecke E.H., Cecconi F., Codogno P., Debnath J., Gewirtz D.A., Karantza V., Kimmelman A., Kumar S., Levine B., Maiuri M.C., Martin S.J., Penninger J., Piacentini M., Rubinsztein D.C., Simon H.U., Simonsen A., Thorburn A.M., Velasco G., Ryan K.M., Kroemer G. Autophagy in malignant transformation and cancer progression. Embo j. 2015;34(7):856–880. doi: 10.15252/embj.201490784. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
81. Galluzzi L., Bravo-San Pedro J.M., Demaria S., Formenti S.C., Kroemer G. Activating autophagy to potentiate immunogenic chemotherapy and radiation therapy. Nat Rev Clin Oncol. 2017;14(4):247–258. doi: 10.1038/nrclinonc.2016.183. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
82. Ravegnini G., Sammarini G., Nannini M., Pantaleo M.A., Biasco G., Hrelia P., Angelini S. Gastrointestinal stromal tumors (GIST): Facing cell death between autophagy and apoptosis. Autophagy. 2017;13(3):452–463. doi: 10.1080/15548627.2016.1256522. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
83. Marino G., Niso-Santano M., Baehrecke E.H., Kroemer G. Self-consumption: the interplay of autophagy and apoptosis. Nat Rev Mol Cell Biol. 2014;15(2):81–94. doi: 10.1038/nrm3735. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
84. Fang Y., Tian S., Pan Y., Li W., Wang Q., Tang Y., Yu T., Wu X., Shi Y., Ma P., Shu Y. Pyroptosis: A new frontier in cancer. Biomed Pharmacother. 2020;121:109595. doi: 10.1016/j.biopha.2019.109595. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
85. Gong T., Liu L., Jiang W., Zhou R. DAMP-sensing receptors in sterile inflammation and inflammatory diseases. Nat Rev Immunol. 2020;20(2):95–112. doi: 10.1038/s41577-019-0215-7. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
86. Liu X., Zhang Z., Ruan J., Pan Y., Magupalli V.G., Wu H., Lieberman J. Inflammasome-activated gasdermin D causes pyroptosis by forming membrane pores. Nature. 2016;535(7610):153–158. doi: 10.1038/nature18629. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
87. Zheng Z., Li G. Mechanisms and Therapeutic Regulation of Pyroptosis in Inflammatory Diseases and Cancer. Int J Mol Sci. 2020;21(4) doi: 10.3390/ijms21041456. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
88. Han S.J., Lovaszi M., Kim M., D’Agati V., Hasko G., Lee H.T. P2X4 receptor exacerbates ischemic AKI and induces renal proximal tubular NLRP3 inflammasome signaling. Faseb j. 2020;34(4):5465–5482. doi: 10.1096/fj.201903287R. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
89. O’Brien C.A., Kreso A., Jamieson C.H. Cancer stem cells and self-renewal. Clin Cancer Res. 2010;16(12):3113–3120. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-09-2824. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
90. Huang Z.,Wu T., Liu A.Y., Ouyang G. Differentiation and transdifferentiation potentials of cancer stem cells. Oncotarget. 2015;6(37):39550–39563. doi: 10.18632/oncotarget.6098. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
91. Bao S., Wu Q., McLendon R.E., Hao Y., Shi Q., Hjelmeland A.B., Dewhirst M.W., Bigner D.D., Rich J.N. Glioma stem cells promote radioresistance by preferential activation of the DNA damage response. Nature. 2006;444(7120):756–760. doi: 10.1038/nature05236. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
92. Dean M., Fojo T., Bates S. Tumour stem cells and drug resistance. Nat Rev Cancer. 2005;5(4):275–284. doi: 10.1038/nrc1590. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
93. Li X., Lewis M.T., Huang J., Gutierrez C., Osborne C.K., Wu M.F., Hilsenbeck S.G., Pavlick A., Zhang X., Chamness G.C., Wong H., Rosen J., Chang J.C. Intrinsic resistance of tumorigenic breast cancer cells to chemotherapy. J Natl Cancer Inst. 2008;100(9):672–679. doi: 10.1093/jnci/djn123. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
94. Diehn M., Clarke M.F. Cancer stem cells and radiotherapy: new insights into tumor radioresistance. J Natl Cancer Inst. 2006;98(24):1755–1757. doi: 10.1093/jnci/djj505. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
95. Dominguez-Gomez G., Chavez-Blanco A., Medina-Franco J.L., Saldivar-Gonzalez F., Flores-Torrontegui Y., Juarez M., Diaz-Chavez J., Gonzalez-Fierro A., Duenas-Gonzalez A. Ivermectin as an inhibitor of cancer stemlike cells. Mol Med Rep. 2018;17(2):3397–3403. doi: 10.3892/mmr.2017.8231. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
96. Kim J.H., Choi H.S., Kim S.L., Lee D.S. The PAK1-Stat3 Signaling Pathway Activates IL-6 Gene Transcription and Human Breast Cancer Stem Cell Formation. Cancers (Basel) 2019;11(10) doi: 10.3390/cancers11101527. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
97. Wang J., Seebacher N., Shi H., Kan Q., Duan Z. Novel strategies to prevent the development of multidrug resistance (MDR) in cancer. Oncotarget. 2017;8(48):84559–84571. doi: 10.18632/oncotarget.19187. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
98. Niazi M., Zakeri-Milani P., Najafi Hajivar S., Soleymani Goloujeh M., Ghobakhlou N., Shahbazi Mojarrad J., Valizadeh H. Nano-based strategies to overcome p-glycoprotein-mediated drug resistance. Expert Opin Drug Metab Toxicol. 2016;12(9):1021–1033. doi: 10.1080/17425255.2016.1196186. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
99. Dong J., Qin Z., Zhang W.D., Cheng G., Yehuda A.G., Ashby C.R., Jr., Chen Z.S., Cheng X.D., Qin J.J. Medicinal chemistry strategies to discover P-glycoprotein inhibitors: An update. Drug Resist Updat. 2020;49:100681. doi: 10.1016/j.drup.2020.100681. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
100. Kibria G., Hatakeyama H., Harashima H. Cancer multidrug resistance: mechanisms involved and strategies for circumvention using a drug delivery system. Arch Pharm Res. 2014;37(1):4–15. doi: 10.1007/s12272-013-0276-2. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
101. Lespine A., Dupuy J., Orlowski S., Nagy T., Glavinas H., Krajcsi P., Alvinerie M. Interaction of ivermectin with multidrug resistance proteins (MRP1, 2 and 3) Chem Biol Interact. 2006;159(3):169–179. doi: 10.1016/j.cbi.2005.11.002. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
102. Pouliot J.F., L’Heureux F., Liu Z., Prichard R.K., Georges E. Reversal of P-glycoprotein-associated multidrug resistance by ivermectin. Biochem Pharmacol. 1997;53(1):17–25. doi: 10.1016/s0006-2952(96)00656-9. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
103. Lespine A., Martin S., Dupuy J., Roulet A., Pineau T., Orlowski S., Alvinerie M. Interaction of macrocyclic lactones with P-glycoprotein: structure-affinity relationship. Eur J Pharm Sci. 2007;30(1):84–94. doi: 10.1016/j.ejps.2006.10.004. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
104. Jiang L., Wang P., Sun Y.J., Wu Y.J. Ivermectin reverses the drug resistance in cancer cells through EGFR/ERK/Akt/NF-kappaB pathway. J Exp Clin Cancer Res. 2019;38(1):265. doi: 10.1186/s13046-019-1251-7. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
105. Loibl S., Gianni L. HER2-positive breast cancer. Lancet. 2017;389(10087):2415–2429. doi: 10.1016/s0140-6736(16)32417-5. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
106. Lim S.M., Syn N.L., Cho B.C., Soo R.A. Acquired resistance to EGFR targeted therapy in non-small cell lung cancer: Mechanisms and therapeutic strategies. Cancer Treat Rev. 2018;65:1–10. doi: 10.1016/j.ctrv.2018.02.006. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
107. Choi S.K., Kam H., Kim K.Y., Park S.I., Lee Y.S. Targeting Heat Shock Protein 27 in Cancer: A Druggable Target for Cancer Treatment? Cancers (Basel) 2019;11(8) doi: 10.3390/cancers11081195. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
108. Kumar R., Gururaj A.E., Barnes C.J. p21-activated kinases in cancer. Nat Rev Cancer. 2006;6(6):459–471. doi: 10.1038/nrc1892. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
109. Rane C.K., Minden A. P21 activated kinase signaling in cancer. Semin Cancer Biol. 2019;54:40–49. doi: 10.1016/j.semcancer.2018.01.006. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
110. Dammann K., Khare V., Gasche C. Tracing PAKs from GI inflammation to cancer. Gut. 2014;63(7):1173–1184. doi: 10.1136/gutjnl-2014-306768. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
111. Kumar R., Li D.Q. PAKs in Human Cancer Progression: From Inception to Cancer Therapeutic to Future Oncobiology. Adv Cancer Res. 2016;130:137–209. doi: 10.1016/bs.acr.2016.01.002. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
112. Guzzo C.A., Furtek C.I., Porras A.G., Chen C., Tipping R., Clineschmidt C.M., Sciberras D.G., Hsieh J.Y., Lasseter K.C. Safety, tolerability, and pharmacokinetics of escalating high doses of ivermectin in healthy adult subjects. J Clin Pharmacol. 2002;42(10):1122–1133. doi: 10.1177/009127002401382731. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
113. Geyer J., Gavrilova O., Petzinger E. Brain penetration of ivermectin and selamectin in mdr1a,b P-glycoprotein- and bcrp- deficient knockout mice. J Vet Pharmacol Ther. 2009;32(1):87–96. doi: 10.1111/j.1365-2885.2008.01007.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
114. Gao A., Wang X., Xiang W., Liang H., Gao J., Yan Y. Reversal of P-glycoprotein-mediated multidrug resistance in vitro by doramectin and nemadectin. J Pharm Pharmacol. 2010;62(3):393–399. doi: 10.1211/jpp.62.03.0016. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]