Relatório de Aulas Práticas de Parasitologia Clínica

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UNIVERSIDADE PAULISTA – UNIP 
 
 
 
 RELATÓRIO DE AULAS PRRÁTICAS 
 
 
 
CURSO: BIOMEDICINA 
 
DISCIPLINA: PARASITOLOGIA CLÍNICA 
 
NOME: WANESSA QUEIROZ RAMOS 
 
RA:0507729 - POLO: APARECIDA DE GOIÂNIA 
 
DATA: 06/10/2022 
 
 
 
 
 
 
TÍTULO DO ROTEIRO: PARASITOLOGIA CLÍNICA 
 
INTRODUÇÃO: 
 
A aula prática de parasitologia foi ministrada pelo professor Milton Camplesi Júnior, no 
laboratório de análises clínicas, do polo UNIP Flamboyant, nessa aula foi possível colocar 
em prática todos conhecimentos agregados em prática, como iremos discorrer no decorrer 
deste relatório. 
Os agentes etiológicos responsáveis pelas enteroparasitoses, segundo Neves (2011), são 
os protozoários e helmintos. 
Os protozoários são do reino Protista, sub-reino Protozoa; são organismos microscópios 
unicelulares, podendo viver de maneira isolada, ou em colônias, sua reprodução é de forma 
sexuada e assexuada. 
Os Helmintos constituem um grupo muito numeroso de animais, incluindo espécies de vida 
livre e também parasitária, sendo classificados em dois grandes 
filos, Platelmintos e Nematelmintos. O filo dos platelmintos são vermes que apresentam 
simetria bilateral, corpo achatado, dorso-ventralmente. O filo dos Nematelmintos são vermes 
com simetria bilateral, corpo arredondado, não segmentado, sistema digestivo completo com 
presença de ânus e boca. 
Em vista da importância epidemiológica das infecções enteroparasitárias, o presente 
trabalho propõe mais conhecimento de parasitas por intermédio de análises de lâminas 
microscópicas, baseado em exames parasitológicos de fezes, utilizando variadas técnicas. 
 
 
 
 
 
 Na aula 1, roteiro 1, iremos reconhecer os principais resíduos vindos do processo de 
alimentação, através do exame coprológico funcional, este exame visão estudo das funções 
digestivas, abrangendo provas de digestibilidade, tanto macro como microscopia, através do 
exame químico e outras provas. 
 Na aula 1, roteiro 2 abordaremos sobre o exame coproparasitológico, para a pesquisa 
de protozoários, usaremos a técnica de Sheater ou Faust, tal exame é qualitativo, com o 
princípio de centrífugo- flutuação em sulfato de zinco, pesquisando cistos, oocistos e 
protozoários intestinais. 
 Aula 2, roteiro 1: Observaremos lâminas já prontas, no intuito de identificarmos 
protozoários, helmintos e artrópodes. 
 Aula 2, roteiro 2: Nesta aula prática usaremos a técnica de Willis Moolay, para fazer um 
exame coproparasitológico qualitativo com princípio de flutuação, para pesquisar ovos de 
helmintos. 
 Aula 3, roteiro 1: Faremos o exame coproparasitológico direto a fresco, mostrando nesse 
processo a identificação de trofozoítos, cistos e oocistos de protozoários, também 
abordaremos sobre ovos de larvas de helmintos. 
 Aula 3, roteiro 2: Realizaremos o exame coproparasitológico, para pesquisa de 
helmintos, principalmente das classes Cestoda e Trematoda. A técnica usada será de 
Hoffman, com o Shistosoma Mansoni 
 Aula 4, roteiro 1: Nesta aula faremos o exame coproparasitológico apresentando a 
identificação de larvas de parasitas intestinais, onde utilizaremos a técnica de Rugai. 
 Aula 4, roteiro 2: Explanaremos sobre três casos clínicos. O primeiro caso é de uma 
criança de 10 anos de idade, com um quadro de ascite, dores abdominais, desnutrição e 
cólicas. O segundo caso, um homem 35 anos, com sintomas de diarreia mensal recorrente. 
Caso três, é uma criança do sexo masculino, 9 anos com costume de ingerir água não 
tratada, e contato direto com cães. 
 
 
 
RESULTADOS E DISCUSSÃO 
 Aula 1, roteiro 1: Exame de coprológico funcional, este teste detecta a presença de 
micro-organismos patogênicos, tais como fungos, parasitas, bactérias e nessa aula iremos 
identificar a classificação dos resíduos de origem animal, vegetal iodófora e debrü celular do 
sistema digestório. Para fazer esse exame pegamos 1g de fezes, e homogeneizamos em 
10ml de água, coamos para outro copo, centrifugamos por três vezes em velocidade de a 
2.500, durante um minuto, a cada intervalo descartamos o sobrenadante, ao término da 
centrifugação homogeneizamos. Coletamos uma gota desse sedimento com a pipeta e 
colocamos em uma lâmina, o corante usado foi lugol; observamos na lente de 100X, como 
podemos observar na figura 1: Amido amorfo, origem vegetal, faixas irregulares. 
 
 Aula 1, roteiro 2: Técnica Sheater - Nesta aula vimos sobre o exame de 
coproparasitológico qualitativo, com princípio de centrífugo- flutuação para pesquisa de 
protozoários, o método usado foi a Técnica Sheater. A amostra de fezes foi colocada na 
vidraria e macerada, com ajuda da água destilada essa amostra foi dissolvida e homogeneizada. 
 
 
 
 
 
 Após a homogeneização essa amostra deverá ser coada para que os resíduos sejam 
filtrados. Após a filtração a parte líquida da solução foi colocada em um tubo, e posteriormente 
centrifugada por 05 minutos á 1500 RPM. 
 
 Aula 2, roteiro 1: Identificamos protozoários, helmintos e artrópodes através de lâminas 
prontas, conseguimos focar nitidamente cada elemento. 
Ascaris Ascaris Lumbricoides- ovo infértil 
 
Ascaris adulta Ascaris em lâmina 
 
 
 
 Aula 2, roteiro 2: Aprendemos sobre o exame para pesquisa de Helmintos e 
ovos de helmintos, usamos para esse fim a técnica de Willis Moolay, um exame 
qualitativo com princípio de flutuação. 
 Técnica de Willis, assim como a técnica de Sheater, foram utilizados os mesmos 
materiais, o que diferenciam os dois procedimentos é que após a realização de 
homogeneização, filtração, e centrifugação na técnica de Willis, o tubo da amostra deverá 
ser completado até a borda para obter o menisco negativo e colocar a lamínula por cima do 
tubo e depois fixar a lamínula na lâmina, para análise do material através do microscópio. 
 
 Pegamos 3,0 gramas de fezes em 40 ml de solução saturada de NaCl (35%) em um 
recipiente, coamos para outro recipiente, posteriormente preenchemos um borel com a 
suspensão de fezes coado, até formar um menisco convexo, na borda do borel, colocamos 
a lamínula em repouso de quinze minutos e levamos ao microscópio para analisá-la, 
visualizamos ovos de helmintos Colocamos três gotas de salina 0,85 em uma lâmina de 
vidro, e transferimos as fezes para a mesma, focalizando na lente de menor aumento, 
conseguimos focalizar todos propostos nessa aula. 
Resultados: 
 
 
 
 
 Aula 3 roteiro 2: Técnica Hoffman - Analisamos o exame coproparasitológico qualitativo 
com a finalidade pesquisar de ovos pesados helmintos, pela técnica de Hoffman, consistiu 
na mistura das fezes com água, onde foi filtrada por gaze, deixamos em repouso por vinte 
cinco minutos, que posteriormente formou uma consistente sedimentação dos restos fecais 
ao fundo do recipiente. Essa sedimentação foi inserida na lâmina, onde fizemos a análise, 
detectando a presença de ovos nas fezes, após a coloração com lugol verificamos a 
presença de cistos de protozoários e larvas de helmintos. 
 Aula 4, roteiro 1: O exame realizado foi para pesquisa de larvas se parasita, a técnica 
usada foi a de Rugai. Imagem tirada em sala de aula “ Enterobius macho” 
 
 
 Os métodos propostos neste estudo demonstram ótimas alternativas para pesquisa de 
parasitos; o método de Willis- Mollay (flutuação espontânea simples), mostrou-se rápido e 
de execução fácil, apresentando boa visibilidade para os ovos de helmintos. O método de 
Hoffman (concentração por centrifugo-sedimentação), técnica qualitativa. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 REFERÊNCIAS: 
 
 Amato Neto V, Correa LL. Exame Parasitológico das Fezes. São Paulo, SP: Sarvier, 
1990 
 NEVES, David Pereira. Parasitologia Humana.12ª edição – Rio de Janeiro: 
Atheneu,Rio, 2011