Aula 1 - Métodos de Colheita Material

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Desafio: melhorar a produtividade
Biotécnicas
Reprodução
NutriçãoNutrição
Sanidade Sanidade 
ManejoManejo
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ESTRUTURA DO ESTRUTURA DO ESTRUTURA DO ESTRUTURA DO 
ESPERMATOZOIDEESPERMATOZOIDEESPERMATOZOIDEESPERMATOZOIDE
 Cabeça
 Núcleo: DNA
 Acrossoma: contêm enzimas 
hidrolíticas, importantes para 
a penetração no oócito
 Colo (peça de conecção)
 Peça intermediária: mitocôndrias
 Cauda
 Peça principal
 Peça terminal
 Membrana plasmática: envolve 
tanto a cabeça como a cauda
MORFOLOGIA ESPERMÁTICA VS MORFOLOGIA ESPERMÁTICA VS MORFOLOGIA ESPERMÁTICA VS MORFOLOGIA ESPERMÁTICA VS 
ESPÉCIEESPÉCIEESPÉCIEESPÉCIE
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ESTÍMULO EJACULATÓRIO
� TEMPERATURA
� PRESSÃO
� RUGOSIDADE DE MUCOSA
A. PROCESSOS INERENTES AO MACHOMACHOMACHOMACHO
B. PROCESSO INERENTE A FÊMEAFÊMEAFÊMEAFÊMEA
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1. Massagem das ampolas dos condutos deferentes :
(bovinos e eqüinos)
PROCESSOS INERENTES AO MACHOMACHOMACHOMACHO
1. Massagem das ampolas dos condutos deferentes :
(bovinos e eqüinos)
 Vantagem: não requer aparelhos
 Desvantagem: dificuldade de aplicação, risco de lesões, 
demora e contaminação
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2. Camisa peniana -
(eqüinos e asininos)
Semelhante a um preservativo 
Desvantagem: dificuldade de aplicação, acidentes freqüentes 
(queda do preservativo) e contaminação
3. Uretrotomia
(bovinos, ovinos, caprinos, animais silvestres, cobaia, 
coelhos e aves)
 Desvantagem: inutiliza o reprodutor e risco de constantes 
infecções
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 4. Espermo-receptor aplicado ao galo
 5. Decapitação (abelhas)
6. Excitação mecânica do pênis 
(método de eleição para 
caninos e suínos)
Vantagem: não requer 
aparelhos
 Desvantagem: facilidade 
de contaminação
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7. Eletroejaculação:
bovinos, ovinos, caprinos, animais silvestres, cobaia,
coelhos e aves
7. Eletroejaculação:
Vantagens: aplicação em animais não
condicionados à vagina artificial, inutilizados para
cobertura, bravos ou selvagens
Desvantagens: custo do aparelho e acidentes
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8. Massagem abdominal ou dorsal do galo
Fonte: boletim técnico, Universidade federal de Lavras coleta de sêmen e inseminação artificial em galinhas
8. Massagem abdominal ou dorsal do galo
1 - Massagem dorsal para a 
liberação do sêmen
2 - Falo 
exposto após 
a massagem
3 - Aspiração do 
sêmen da cloaca
Fonte: boletim técnico, Universidade federal de Lavras coleta de sêmen e inseminação artificial em galinhas
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1. Coleta da cavidade vaginal ou uterina e da esponja 
colocada na cavidade vaginal
(Equinos e ruminantes)
PROCESSOS INERENTES A FÊMEAFÊMEAFÊMEAFÊMEA
Vantagem: não requer aparelhos
Desvantagem: pequena quantidade de sêmen, 
transmissão de doenças, sêmen misturado com 
secreções, traumatismos e lesões nos 
espermatozoides
2. Coletor vaginal
(Equinos e ruminantes)
Desvantagem: dificuldade de adaptação e risco de 
acidentes (queda e ruptura)
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3. Vagina Artificial
(método de eleição para ruminantes, equinos e coelhos)
3. Vagina Artificial
+ + +
=
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3. Vagina Artificial
(método de eleição para ruminantes, equinos e coelhos)
Vantagem: sêmen colhido nas melhores
condições, não é necessária a presença da
fêmea
Desvantagem: requer material adequado e
alguns animais não se adaptam
A. MÉTODOS IMEDIATOS
• MACROSCÓPICOSMACROSCÓPICOSMACROSCÓPICOSMACROSCÓPICOS
• MICROSCÓPICOSMICROSCÓPICOSMICROSCÓPICOSMICROSCÓPICOS
B. MÉTODOS MEDIATOS
• MICROSCÓPICOSMICROSCÓPICOSMICROSCÓPICOSMICROSCÓPICOS
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1. MACROSÓPICOS
MÉTODOS IMEDIATOSMÉTODOS IMEDIATOSMÉTODOS IMEDIATOSMÉTODOS IMEDIATOS
VOLUME;
COR;
ODOR;
ASPECTO;
TURBILHONAMENTO (algumas espécies).
1. MACROSÓPICOS 
 VOLUME (MÉDIA)
Bovinos - 5 a 10 ml
Eqüinos - 30 a 100 ml
Suínos - 150 a 300 ml
Caninos - 2 a 10 ml
Ovinos e Caprinos - 0,5 a 1,5 ml
Humanos - 1,5 a 5 ml
MÉTODOS IMEDIATOSMÉTODOS IMEDIATOSMÉTODOS IMEDIATOSMÉTODOS IMEDIATOS
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1. MACROSÓPICOS
 COR
 Condições normais: varia do branco ao amarelo citrino, de acordo com a 
concentração
 Condições anormais: vermelho (sangue vivo), marron tijolo (sangue 
antigo), verde (pus) ou amarelo (urina)
MÉTODOS IMEDIATOSMÉTODOS IMEDIATOSMÉTODOS IMEDIATOSMÉTODOS IMEDIATOS
1. MACROSÓPICOS 
 ODOR
característico (sui generis)
MÉTODOS IMEDIATOSMÉTODOS IMEDIATOSMÉTODOS IMEDIATOSMÉTODOS IMEDIATOS
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1. MACROSÓPICOS
 ASPECTO (Relacionado a concentração)
MÉTODOS IMEDIATOSMÉTODOS IMEDIATOSMÉTODOS IMEDIATOSMÉTODOS IMEDIATOS
Aspecto Densidade (sptz/mm3)
Cremoso (denso) >1.000.000
Leitoso (semi denso) 500.000 a 1.000.000
Soroso (ralo) 200.000 a 500.000
Aquoso (oligospérmico) <200.000
1. MACROSÓPICOS
 ASPECTO (relacionado a concentração)
MÉTODOS IMEDIATOSMÉTODOS IMEDIATOSMÉTODOS IMEDIATOSMÉTODOS IMEDIATOS
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1. MACROSÓPICOS
 TURBILHONAMENTO (relacionado a concentração, a 
motilidade e a espécie)
MÉTODOS IMEDIATOSMÉTODOS IMEDIATOSMÉTODOS IMEDIATOSMÉTODOS IMEDIATOS
2. MICROSCÓPICOS
MÉTODOS IMEDIATOSMÉTODOS IMEDIATOSMÉTODOS IMEDIATOSMÉTODOS IMEDIATOS
TURBILHONAMENTO;
MOTILIDADE;
VIGOR.
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2. MICROSCÓPICO
 TURBILHONAMENTO (1 – 5)
 Formação de ondas
 Relação com Motilidade e Concentração
MÉTODOS IMEDIATOSMÉTODOS IMEDIATOSMÉTODOS IMEDIATOSMÉTODOS IMEDIATOS
Muito ativo 5
Ativo 4
Lento 3
Muito lento 2
Inexistente 1
2.MICROSCÓPICO
 MOTILIDADE (0 – 100%)
Porcentagem de espermatozóides com movimento progressivo
e retilíneo
Outros tipos de movimento
 Oscilatório 
 Retrógrado
 Lateralidade
MÉTODOS IMEDIATOSMÉTODOS IMEDIATOSMÉTODOS IMEDIATOSMÉTODOS IMEDIATOS
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2. MICROSCÓPICO
 VIGOR (1 - 5)
Velocidade com que atravessam o campo (força de 
propulsão)
MÉTODOS MEDIATOSMÉTODOS MEDIATOSMÉTODOS MEDIATOSMÉTODOS MEDIATOS
1. MICROSCÓPICOS
MÉTODOS MEDIATOSMÉTODOS MEDIATOSMÉTODOS MEDIATOSMÉTODOS MEDIATOS
CONCENTRAÇÃO ESPERMÁTICA;
MORFOLOGIA ESPERMÁTICA.
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2. MICROSCÓPICO
 CONCENTRAÇÃO 
 Número de espermatozóides por cm3 (ml) ou mm3 
1. Câmaras da contagem (Makler, Horwell, Neubauer etc.)
2. Espectrofotometria
3. Micro-cell-conter
4. Balança
MÉTODOS MEDIATOSMÉTODOS MEDIATOSMÉTODOS MEDIATOSMÉTODOS MEDIATOS
2. MICROSCÓPICO
 CONCENTRAÇÃO 
MÉTODOS MEDIATOSMÉTODOS MEDIATOSMÉTODOS MEDIATOSMÉTODOS MEDIATOS
FIG. 15. Esquema para contagem de espermatozóides e m câmara de Neubeuer.
Fonte: EMBRAPA – Gado de corte (http://www.cnpgc.embrapa.br/publicacoes/doc/doc51/08anexo89.html#fig015)
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2. MICROSCÓPICO
 MORFOLOGIA ESPERMÁTICA
 Determinação da porcentagem de
espermatozóides com alteração
patológica (defeitos)
MÉTODOS MEDIATOSMÉTODOS MEDIATOSMÉTODOS MEDIATOSMÉTODOS MEDIATOS