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CENTRO UNIVERSITÁRIO LEONARDO DA VINCI
NÚCLEO DE EDUCAÇÃO A DISTÂNCIA - NEAD
RELATÓRIO DE PRÁTICA VIRTUAL
	IDENTIFICAÇÃO
	1. Acadêmico: Marcia Eloisa Figueiredo
Acadêmico: Kerolen dos Santos Araújo
Acadêmico: Rodrigo Rodrigues Ribeiro 
	2. Matrícula: 3403324 
Matrícula: 3152286
Matrícula: 3495517
	3. Curso: Farmácia
	4. Turma: FLC14844BFR
	5. Disciplina: Farmacognosia e Fitoterapia
	6. Tutor(a) Externo(a): Priscila Barreto Pessanha
	DADOS DA PRÁTICA
	1. Título: Extração e Identificação de Pigmentos Foliares
	2. Semestre: 6º
	3. Data: 31/08/2023
	INTRODUÇÃO
	A diversidade de cores das folhagens é responsável por grande parte da atração
exercida nos consumidores (Araújo et al., 2016).
Os pigmentos fotossintéticos que se encontram nas plantas são as clorofilas a e b, de cor verde intensa e verde amarelada respectivamente, e os carotenoides (Félix, 2010). 
A cor verde é resultado da síntese de pigmentos naturais, como a clorofila, que são abundantes nas plantas e podem ocorrer nos cloroplastos ou em outros tecidos vegetais (Streit, 2005).
A presença e abundância de pigmentos variam conforme a espécie, sendo que cada espécie requer ajuste no tempo e na temperatura de incubação a fim de ocorrer a extração e conservação máxima de pigmentos foliares (Cruz et al.,2007). 
A identificação dos pigmentos cloroplastídicos é realizada após a extração com auxílio de solventes orgânicos como acetona, o éter, o dimetilsulfóxido (DMSO), clorofórmio e o metanol (Baners et al.,1992).
O DMSO é um composto anfipático, com um domínio altamente polar com dois grupos apolares, tornando-se solúvel tanto em meio aquoso quanto orgânico. Esse solvente é um extrator de clorofila e carotenoides que não requerer maceração e centrifugação o que simplifica a metodologia clássica, uma vez que requer apenas imersão do material foliar em um recipiente com o volume conhecido do solvente, mostrando uma melhor praticidade em situação de campo (Florão, 2007).
No entanto, se o material for armazenado ou extraído em altas temperaturas pode ocorrer a alteração da cor dos tecidos vegetais, atribuída principalmente ao processo de feofitinização, isso ocorre devido ao magnésio localizado no centro da molécula de clorofila ser substituído pelo hidrogênio. Sendo considerado o mecanismo mais importante de destruição de clorofila (Martins & Silva, 2002).
	OBJETIVOS
	
· Avaliar a presença de diferentes pigmentos que estão presentes nas folhas de diversas espécies de plantas.
· Descrever o processo de extração de pigmentos foliares;
· Identificar os diferentes pigmentos foliares que compõem as folhas; 
· Reconhecer a presença de clorofila em folhas que não são verdes; 
· Definir o método de cromatografia em papel. 
	MATERIAIS
	
EQUIPAMENTOS DE SEGURANÇA:
· Jaleco;
· Luvas;
· Calça comprida (que não seja legging), 
· Tênis ou sapato fechado, que cubra o dorso do pé.
EQUIPAMENTOS/MATERIAIS DO LABORATORIO: 
· Béquer;
· Placa de petri;
· Álcool etílico 95%;
· Papel filtro;
· Banho maria;
· Tesoura;
· Folhas não verdes. Béquer (1000 mL);
	METODOLOGIA
	
· Pique as folhas em pequenos pedaços e coloque dentro de um béquer. 
· Adicione álcool 95% até cobrir toda folha e leve para o banho-maria até que o álcool tenha retirado o máximo de pigmento da folha;
· Derrame o álcool contendo o pigmento dentro de uma placa de petri. Coloque o papel fil tro em pé dentro da placa e aguardar até que o extrato core a superfície do papel.
· Observe a coloração obtida no papel filme e anote os resultados.
	RESULTADOS E DISCUSSÕES
	
1. Esquematize o resultado e sinalize quais colorações foram observadas e a quais pigmentos correspondem? 
Resposta:
Conforme a solução teve o contato com o papel filtro, foi obtendo uma coloração amarela fraca e sua intensidade foi aumentando e a coloração foi se tornando esverdeada se intensificando ao amarelo forte.
Foi observado nesse experimento as cores que aparecem em destaque são: 
- Amarelo e verde; e temos 
- Amarelo fraco (conforme sua intensidade); 
- Verde fraco; (Predominando o esverdeado); 
- Amarelado intenso.
	REGISTRO FOTOGRÁFICO
	 
 
 
 
 
	REFERÊNCIAS
	
RAVEN, Peter H.; EVERT, Ray F.; EICHHORN, Susan E. Biologia vegetal. 8. ed. Rio deJaneiro: Guanabara Koogan, 2014 
BARNES, JD; BALAGUER, L; MANRIQUE, E; ELVIRA, S; DAVISON, AW. 1992. A reappraisal of the use of DMSO for the extraction and determination of chorophylls a and b in lichens and higher plants. Environmental and Experimental Botany,32: 85-100.
CRUZ, ACF; SANTOS RP; IAREMA L; FERNANDES, KRG; KUKI, KN; ARAUJO RF; OTONI, WC. 2007. Métodos comparativos na extração de pigmentos foliares de três híbridos de Bixaorellana L. Revista Brasileira de Biociências, 5:777-779.
FÉLIX, A A F. 2010. Extração e separação de pigmentos fotossintéticos - Protocolo
experimental. Biologia e Geologia (ano 1).
STREIT, NM; CANTERLE, LP; CANTO, MW; HECKTHEUER, LHH.2005.As clorofilas. Ciência rural, Santa Maria, v.35, n3p.748-755, maio-jun,2005.
PÚBLICA
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