Relatório prática_presencial_Farmacognosia Pura _CARLA SANTOS

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RELATÓRIO DE PRÁTICA 
Carla da Silva Oliveira Santos - 03166037 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS 
ENSINO DIGITAL 
 
RELATÓRIO 01 02 
DATA: 
26/10/2024 e 
23/11/2024 
 
 
RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS DE FARMACOGNOSIA PURA 
 
NOME: Carla da Silva Oliveira Santos MATRÍCULA:03166037 
CURSO: Farmácia POLO: Uninorte - Djalma Batista 
PROFESSOR(A) ORIENTADOR(A): Elicyane Jonillie Carvalho Guimarães 
 
TEMA DE AULA01:CARACTERIZAÇÃO E IDENTIFICAÇÃO DE ALCALOÍDES – 
PRINCÍPIO DA REAÇÃO DE DRAGENDORFF NA IDENTIFICAÇÃO DE ALCALOÍDES E 
COMO OS RESULTADOS SÃO INTERPRETADOS VISUALMENTE. 
 
O princípio de reação de Dragendorff é um teste que permite identificar a presença 
de alcaloides em uma amostra. O teste consiste em adicionar o reagente de Dragendorff a 
uma amostra e observar se ocorre a formação de um precipitado e/ou mudança de cor. A 
reação de Dragendorff é uma reação de precipitação entre alcaloides e metais pesados, 
como bismuto, mercúrio, tungstênio e iodo. O reagente de Dragendorff é uma solução de 
iodo bismutato de potássio em ácido diluído e quando o reagente de Dragendorff entra em 
contato com alcaloides e compostos nitrogenados, forma um precipitado laranja-
avermelhado. 
O procedimento para realizar o teste é adicionar a amostra a um tubo de ensaio, 
acrescentando de 3 a 4 gotas do reagente de Dragendorff, agitar o tubo e observar se ocorre 
a formação de um precipitado ou mudança de cor da solução. Para identificação quantitativa 
de alcaloides, é realizada a partir de testes de coloração e de precipitação dos extratos 
obtidos e o teste é confirmado com a formação de um precipitado flosculoso. 
Alcaloides são aminas cíclicas que possuem anéis heterocíclicos contendo nitrogênio e são 
responsáveis pelo sabor amargo de muitas plantas e causam dependência, são encontrados 
em representantes de todos os grupos vegetais, sendo sua maior ocorrência em 
Angiospermas. 
Com seu potencial fitoterápico, entre algumas características principais desse grupo 
de compostos está a utilização como analgésicos, tendo objetivo de identificar a presença 
de alcaloides no extrato das cascas do caule de Licania rígida benth, suja a identificação é 
feita a partir da reação do extrato diluído coma adição de NaOH a 1%, Clorofórmico, HCl 1% 
e o reagente de Grangeddoff. O extrato apresentou resultado positivo para a presença de 
alcaloides, sendo caracterizado pela formação de um precipitado flosculoso após a reação, 
podendo contribuir inicialmente com sua caracterização química como fitoterápico, para 
posteriormente isola-los e quantifica-los. 
Em virtude da presença de alcaloides nos extratos das cascas de Licania rígida 
benth, visto que essas classes de compostos são responsáveis por diversas ações 
fitoterápicas, como atividades antimicrobianas e são utilizados como analgésicos, pode-se 
contribuir de uma forma preliminar para a sua constituição química, como fitoterápico, a 
quantificação, isolamento e identificação. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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RELATÓRIO 01 02 
DATA: 
26/10/2024 e 
23/11/2024 
 
 
TEMA DE AULA02:CARACTERIZAÇÃO E IDENTIFICAÇÃO DE FLAVONOÍDES – 
PROCEDIMENTO DA REAÇÃO DE SHINODA PARA A IDENTIFICAÇÃO DE 
FLAVONOÍDES E A IMPORTÂNCIA DA REMOÇÃO DA CLOROFILA DURANTE O 
PROCESSO. 
 
A identificação de flavonoides é feita através de algumas técnicas, como a 
comparação de fluorescência, espectrometria de massas. Na comparação de 
fluorescência, é preciso umedecer uma tira de papel de filtro com um extrato alcoólico, 
colocar uma gota de solução de AlCl3 a 5% em uma das regiões e comparar a 
fluorescência sob luz ultravioleta. Na espectrometria de massas, utilizamos uma 
ferramenta essencial para identificação inequívoca dos flavonoides. 
Flavonoides são pigmentos amarelos que estão presentes em muitas plantas, tanto 
medicinais como alimentícias, que possuem ação antioxidante, protegendo as células dos 
efeitos danosos dos radicais livres e sua estrutura básica é formada por um núcleo 
fundamental com 15 átomos de carbono (C15) arranjados em três anéis (C6-C3-C6). 
Quanto a coloração dos flavonoides varia de acordo com a classe como a 
antocianina que pode variar entre o vermelho e o violeta; as flavanas que são incolores; os 
flavonóis, flavanonas e flavonas que apresentam coloração amarelada; os isoflavonoides 
que não apresentam coloração e alguns exemplos de alimentos que contêm flavonoides 
como o chá-verde, chá-preto e chá-branco; flores de camomila; flores da macela do campo; 
cascas dos frutos cítricos, como a laranja e o limão. 
A reação de Shinoda é um procedimento para identificar flavonóides que se baseia 
na oxidação do núcleo fundamental dos flavonóides, na presença de magnésio em pó e 
ácido clorídrico. Para realizar a reação de Shinoda, é necessário colocar cerca de 2 ml de 
extrato alcoólico em um tubo de ensaio, adicionar cerca de seis fragmentos de magnásio 
metálico, adicionar 1 ml de ácido clorídrico concentrado e observar se há desenvolvimento 
de coloração. 
A espectrometria e os métodos espectrométricos referem-se às medidas das 
intensidades das radiações usando transdutores fotoelétricos ou outros tipos de 
dispositivos e a espectrometria de massas é uma ferramenta fundamental para identificar 
inequivocamente os flavonóides e as aplicações típicas incluem a análise de sequências 
de aminoácidos de proteínas e peptídeos. Avaliação de impurezas durante o 
desenvolvimento de medicamentos e avaliação de pureza de insumos farmacêuticos ativos. 
A remoção da clorofila é importante no processo de extração de flavonóides, pois a 
primeira extração é geralmente feita com um solvente apolar que retira óleos, gorduras, 
esteróis e pigmentos. Isso facilita a extração posterior dos flavonóides. Também é 
importante para evitar a oxidação de outras moléculas, como proteínas e lipídios, que pode 
produzir sabores indesejáveis em alimentos. 
 A clorofila é um pigmento que capta a luz solar e é essencial para a produção de 
oxigênio e glicose através da fotossíntese. É fundamental para a manutenção do oxigênio 
na terra, reagem facilmente com luz, oxigênio, base e ácido e quando expostas à luz e 
oxigênio, as moléculas de clorofila formam espécies de oxigênio ativas, que oxidam outras 
moléculas. A extração de clorofila das folhas pode ser feita com álcool até a metade e 
tampadas e o recipiente deve ser armazenado por dois dias em um armário protegido da 
luz. 
 
 
 
 
 
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RELATÓRIO 01 02 
DATA: 
26/10/2024 e 
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TEMA DE AULA03:CARACTERIZAÇÃO E IDENTIFICAÇÃO DE TANINOS – MÉTODO 
UTILIZADO PARA A DETECÇÃO DE TARINOS EM UMA AMOSTRA VEGETAL E COMO 
A PRESENÇA DE TANINOS PODE SER CONFIRMADA VISUALMENTE. 
 
 Os taninos foram inicialmente identificados pelo seu sabor adstringente e pela sua 
capacidade de precipitar proteínas solúveis e são encontrados em muitas plantas usadas 
pelo ser humano na forma de ervas medicinais, na alimentação e na fabricação de bebidas 
e por exemplo ao primeiro gole, espalhe a bebida em toda a boca e observe a sensação 
além do paladar, se o vinho provocar salivação nas laterais, significa que tem alto grau de 
acidez, mas se gerar secura, é sinal de que há grande quantidade de taninos. 
 Os métodos mais comuns para detectar taninos em uma amostra vegetal são os 
colorimétricos e a precipitação de proteínas e para detectar taninos em uma amostra 
vegetal, pode-se realizar as seguintes etapas como obter o extrato da droga vegetal, 
transferir 5 ml do extrato para um tubo de ensaio, adicionar 5 gotas de ácido clorídrico 
diluído 1N, incorporar gota a gota uma solução de gelatina a 2,5%, centrifugar o tubo de 
ensaio por 10 minutos e analisar a reação e se ocorrer a formação de um precipitado, a 
reação é positiva para taninos. Alguns ensaios colorimétricos são usados para quantificar 
grupos de taninos específicos, muito emboraestes métodos sejam amplamente usados 
para analisar taninos de uma forma geral, como no caso de taninos hidrolisáveis, eles 
detectam somente grupos galoil e hexaidroxidifenóis (HHDP) , mas os mais usados não 
métodos colorimétricos. 
 Não há como confirmar a presença de taninos visualmente, mas é possível 
perceber a sua presença por meio de uma sensação de secura na boca como em 
degustação de vinhos e degustação de alimentos. Na degustação de vinhos, ao beber um 
vinho, se a boca ficar seca ou amarrada, é sinal de que há uma grande quantidade de 
taninos. Os vinhos tintos têm mais taninos porque ficam mais tempo em contato com a 
casca da uva, de onde também extraem a cor. Na degustação de alimentos, a presença de 
taninos em alimentos ajuda a preservar o sabor e a estrutura, e também contribui para a 
sensação de secura na boca. 
 Os taninos são substâncias que se combinam com proteínas, formando um 
principado que causa uma sensação de estípitico e são comuns em frutos verdes, além de 
encontrados em muitas plantas, são utilizados na indústria de curtume, de tintas, e em 
laboratórios para detectar proteínas e alcalóides. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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TEMA DE AULA04:CARACTERIZAÇÃO E IDENTIFICAÇÃO DE CUMARINAS – PAPEL 
DA RADIAÇÃO ULTRAVIOLETA NA IDENTIFICAÇÃO DE CUMARINAS E QUAIS AS 
MUDANÇAS VISUAIS OBSERVADAS EM UMA AMOSTRA POSITIVA. 
 
 As cumarinas são compostos que possuem diversas aplicações farmacológicas, 
como atividade anti-inflamatória, antimicrobiana e anticoagulante, também conhecida por 
α-benzopirona, foi descoberta em 1820 na espécie botânica Coumarouna odorata. Os 
compostos cumarínicos podem ser classificados, em quatro grupos de acordo com a sua 
estrutura química: as cumarinas simples, as furanocumarinas, as piranocumarinas e as 
cumarinas substituídas no anel de lactona; encontram -se amplamente distribuídos no reino 
vegetal, sendo encontradas em várias famílias botânicas. 
 De acordo com suas propriedades organoléticas e farmacológicas, a cumarina tem 
sido amplamente utilizada por parte da indústria alimentar, farmacêutica e cosmética, o que 
tem contribuído para uma exposição humana crescente à mesma. Os compostos 
cumarínicos possuem várias aplicações farmacoterapêuticas, como atividade anti-
inflamatória, antimicrobiana, anticoagulante e como adjuvantes na terapêutica do cancro, 
entre outras. Os efeitos tóxicos mais característico a respetiva hepatotoxicidade, observado 
e descrito em diferentes espécies animais. 
 A radiação ultravioleta (UV) é utilizada para identificar cumarinas, pois provoca 
fluorescência verde na mancha exposta. Para identificar uma cumarina, deve-se aquecer 
em chapa-quente, durante cerca de 10 min, o pó da droga vegetal em uma câmara de 
microssublimação (o sublimado apresenta-se sob a forma de gotas incolores ou cristais 
aciculares). Dissolver o sublimado obtido com 0,5 ml de metanol.Lançar cinco gotas, 
concentrando-se num único ponto, de modo a obter duas manchas de 1 cm de diâmetro 
em uma folha de papel filtro e seque-a; junte depois de seco, uma gota de solução alcoólica 
de hidróxido de potássio ou sódio 10% e seca-la.Cobrir uma das manchas com papel preto 
e exponha-las às radiações ultravioletas (lâmpada UV com λ de 254 a 366 nm); a mancha 
exposta adquire, pouco a pouco, fluorescência verde, já aparente ao final do primeiro 
minuto. 
 O papel da radiação ultravioleta na identificação de cumarinas serve como elemento 
fototerápico, germicida, produtora de vitamina D, bronzeadora artificial, aceleradora das 
polimerizações, eliminadora de dados em chips de memória e visualizadora de substâncias 
invisíveis a olho nu, tornando-as fluorescentes. A mudança visual observada em uma 
amostra positiva de cumarinas é a fluorescência azul-esverdeada. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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TEMA DE AULA05:CARACTERIZAÇÃO E IDENTIFICAÇÃO DE HETEROSÍDEOS 
CARDIOATIVOS – PROCEDIMENTO DE EXTRAÇÃO E IDENTIFICAÇÃO DE 
HETEROSÍDEOS CARDIOATIVOS E COMO A REAÇÃO DE KEDDE É UTILIZADA 
PARA CONFIRMAR SUA PRESENÇA. 
 
 Os heterosídeos cardiotônicos tem sua utilização conhecida farmacologicamente 
pela presença da ação sobre o músculo cardíaco sendo, por isso, utilizados como 
medicamentos no tratamento de insuficiência cardíaca congestiva, e encontrado segundo 
a literatura na Digitalis purpúrea L., também conhecida como digitalis purpúrea L. Os 
glicosídeos cardioativos (GCs) são substâncias que atuam na bomba de sódio e potássio 
(NKA) do coração. O GC mais conhecido é a digoxina, que é empregado no tratamento da 
insuficiência cardíaca (IC) e a digoxina, a ouabaína e a oleandrina são alguns exemplos 
de glicosídeos cardioativos. 
 A extração e identificação de heterosídeos cardioativos envolvem técnicas de 
extração e purificação seguidas por testes químicos específicos, como a reação de Kedde, 
para confirmação se sua presença e potencial de atividade biológica. Para extração, coleta 
e preparação de amostra como as plantas coletadas e secas para reduzir o teor de água,o 
material seco é triturado em pó fino para aumentar a área de superfície para extração. Então 
a extração pode ser feita usando solventes orgânicos, como etanol ou metanol, que são 
eficazes na solubilização dos heterosídeos, o pó vegetal é macerado ou extraído por soxhlet 
com o solvente escolhido. Referente a concentração, o extrato é obtido concentrado por 
evaporação do solvente sob pressão reduzida, geralmente utilizando um evaporador 
rotativo. Na purificação, as técnicas como cromatografia em coluna, cromatografia líquida 
de alta eficiência (HPLC),ou cromatografia em camada delgada(CCD) são usadas para 
isolar os heterosídeos específicos. 
 Na identificação a análise cromatográfica(CCD) é frequentemente usada para 
identificar heterosídeos através de compração com padrões conhecidos, HPLC, pode 
fornecer uma análise mais detalhada e quantitativa. 
A reação de Kedde,é um teste colorimétrico para a detecção de heterosídeos cardioativos, 
que envolve a reação do composto com uma solução de dinitrobenzoato de sódio em meio 
alcalino, a presença de heterosídeos cardioativos resulta em uma coloração aul-violeta, 
indicando a presença de um anel lactônico insaturado, característico desses compostos. 
Atuam no músculo cardiíaco e são utilizadas como medicamentos no tratamento de 
insuficiência cardíaca congestiva. 
 A reação de Kedde é de grande importância, porque fornece uma forma rápida e 
relativamente básica de confirmar a presença de glicosídeos cardíacos em extratos 
vegetais. A mudança de cor observada é indicativa da estrutura química específica dos 
heterosídeos, ajudando assim na sua identificação preliminar antes de análises mais 
detalhadas. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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TEMA DE AULA06: CARACTERIZAÇÃO E IDENTIFICAÇÃO DE SAPONINAS – TESTE 
DE ESPUMA PARA A IDENTIFICAÇÃO DE SAPONINAS E COMO A FORMAÇÃO DE 
ESPUMA PODE SER INTERPRETADA EM TERMOS DE PRESENÇA E QUANTIDADE 
DE SAPONINAS NA AMOSTRA. 
 As saponinas ou saponosídeos são glicosídeos do metabolismo secundário 
vegetal, caracterizados pela formação de espuma, tendo propriedades de detergentes e 
surfactantes. De gosto amargo e acre e os medicamentos que os contêm geralmente são 
esternutatórios que provocam espirros e são irritantes para as mucosas, são tensoativos 
não iônicos derivados de plantas e amplamente aplicados em diversos produtos, como 
cosméticos, desinfetantes, medicamentos, vacinas, como aditivos por propriedades 
terapêuticas e características químicas próprias. 
 São substâncias tensoativas, derivadas de plantas, que formam espuma emsolução aquosa, são compostos não nitrogenados que se dissolvem em água, possuem 
gosto amargo e acre, são antioxidantes que protegem as células contra os radicais livres, 
são utilizadas em diversos produtos, como cosméticos, desinfetantes, medicamentos e 
vacinas. São classificadas em glicosídeos do tipo esteroidal, esqueleto com 27 carbonos, 
e do tipo triterpênicas, esqueleto com 30 carbonos, pentacíclico. 
 No teste de espuma é um método qualitativo para identificar a presença de 
saponinas em uma amostra, e a formação de espuma persistente indica a presença de 
saponinas, ferver 2g de droga em pó em 10 mL de água destilada por 3 minutos, agitar a 
solução energicamente por 15 segundos, deixar a solução em repouso por 15 minutos, 
marcar com caneta a altura da espuma, observar a presença de espuma persistente por 15 
minutos, reação positiva = espuma persistente, reação negativa = espuma desaparece. 
 A formação de espuma persistente é devido à estrutura das saponinas, que 
apresentam uma parte lipofílica e uma parte hidrofílica, e então a espuma formada é estável 
à ação de ácidos minerais diluídos, que a diferencia da espuma dos sabões comuns. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
https://pt.wikipedia.org/wiki/Carbono
 
 
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RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS: Farmacognosia Pura 
 
NOME: Carla da Silva Oliveira Santos MATRÍCULA: 03166037 
CURSO: Farmácia POLO: Uninorte – Djalma Batista 
PROFESSOR(A) ORIENTADOR(A): Elicyane Jonille Carvalho Guimarães 
TEMA DE AULA 01: MÉTODOS EXTRATIVOS – PRINCIPAIS DIFERENÇAS ENTRE OS 
MÉTODOS DE MACERAÇÃO, INFUSÃO E DECOCÇÃO E QUAIS SITUAÇÕES CADA 
MÉTODO É MAIS INDICADO E TÉCNICA INDICADA PARA EXTRAÇÃO DE ÓLEOS 
ESSENCIAIS. 
 
O método de extração é um processo que compreende se em retirar substâncias de 
uma droga vegetal através de um líquido extrator com objetivo de obter a fração ativa da 
planta de forma seletiva e completa. Para realizar esse processo é necessário: manter a 
planta fresca ou droga vegetal triturada, pulverizada ou rasurada; utilizar um líquido do 
extrator apropriado e seguro; manter a planta em contato com o líquido por um tempo 
determinado e utilizar um recipiente âmbar ou outro que evite o contato com a luz. As 
infusões são feitas usando as partes mais frágeis da planta, como as folhas ou as flores, já 
as decocções são preparadas com as partes mais duras, como as cascas ou as raízes. 
Dependendo se é uma infusão ou decocção, o tempo e o modo de preparo podem variar. 
As principais diferenças entre os métodos de maceração, infusão e decocção são o 
tipo de planta utilizado, o tempo de preparo e o modo de preparo, na maceração a planta é 
colocada em um solvente, como água ou álcool, e deixada em repouso por um período de 
tempo. Não é utilizado calor, e é uma forma prática de extrair os princípios ativos. Já na 
infusão, a água fervente é despejada sobre a planta e a mistura é deixada em repouso por 
alguns minutos. É ideal para extrair os princípios ativos de plantas com partes mais 
delicadas, como folhas, flores e botões. E na decocção, a planta é fervida em água por um 
tempo determinado. É indicada para preparar chás com partes mais resistentes da planta, 
como raízes, cascas, rizomas, caules e folhas coriáceas. 
 A infusão é realizada com vegetais mais moles como folhas e flores e adicionada em 
água quente fora de fogo. A decocção é realizada com amostra mais duras como cascas e 
colocadas em fervura para extração das substancias. A maceração já não utiliza é 
mergulhada a frio em solventes que tenham melhor poder extrativo durante um período maior 
para que ocorra a extração das substancias desejadas, em aula usamos água, etanol e pro 
etileno. Para extração de óleos essenciais a técnica mais utilizada é extração a vapor, onde 
o processo a vapor atravessa o material vegetal, e libera os compostos aromáticos em 
seguida se condensam novamente em forma liquida. Também são extraídos os compostos 
voláteis da planta sem degrada-la. 
 
 
 
 
 Figura de óleos essenciais são a essência pura das plantas. 
 
 
 
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TEMA DE AULA 02: DETECÇÃO DE UMIDADE – PRINCÍPIO DA DETERMINAÇÃO DE 
UMIDADE EM DROGAS VEGETAIS PELO MÉTODO GRAVIMÉTRICO E 
EXEMPLIFICAÇÃO DE UTILIZAÇÃO DESTE MÉTODO. 
 
O método gravimétrico, conhecido como método de dessecação, é um dos métodos 
mais simples e rápidos para determinar o teor de umidade em drogas vegetais. O princípio 
deste método é pesar a amostra antes e depois da dessecação. Onde a secagem pode ser 
feita em estufa, em balança com lâmpada infravermelha ou halogenada, ou por dessecação 
sob pressão reduzida sobre agente dessecante. Esse é o método analítico oficial mais 
comum para determinar a umidade em matérias-primas vegetais, seu percentual de 
umidade é uma das principais determinações analíticas realizadas para verificar a 
qualidade e identidade de alimentos. Também ajuda na tomada de decisões em várias 
etapas do processamento, como a escolha da embalagem e o modo de estocagem. 
Na técnica de secagem no desenvolvimento de vegetais são usados em diferentes 
áreas para produção de alimentos (principalmente os industrializáveis), na produção de 
matérias primas para elaboração de medicamentos fitoterápicos, fitocosméticos, 
complemento alimentar e defensivos agrícolas através de métodos aplicados nas áreas do 
engenheiro químico, engenheiro de alimento, farmacêuticos e químico que direta ou 
indiretamente contribuem com a agroindústria no país. A utilização de práticas e 
interpretação das terminologias envolvendo técnicas e processos de secagem usadas no 
âmbito farmacêutico e das engenharias, variam nestas áreas. 
A secagem envolve fenômenos de transferência de calor e de massa durante o 
procedimento de secagem até uma determinada porcentagem estipulada, incluindo a 
conservação do material, ou seja, durante a vida onde o período de tempo em que um 
alimento é seguro para consumo, mantendo as suas características nutricionais e 
sensoriais, como cor, aroma e textura, o produto deve manter a umidade definida no 
processo. A capacidade de um material em absorver umidade do ambiente, está ligada com 
sua característica de absorver ou liberar água do ambiente, como ocorre nos vegetais. No 
contexto farmacêutico a determinação de secagem de vegetais está ligada à quantificação 
de água no vegetal, e segue de uma forma geral, as metodologias normativas descritas na 
Farmacopeia Brasileira. 
O método de secagem de vegetais é utilizado tanto na área farmacêutica como das 
engenharias, porém com enfoques diferentes. O engenheiro, além de quantificar e propor 
o método de secagem, ele explica o fenômeno através de modelos matemáticos, permitindo 
avaliar a eficiência do processo. O farmacêutico industrial com sua formação tecnológica, 
utiliza a aplicação das metodologias de secagem e de análise do teor de umidade a partir 
de dados experimentais. Este profissional apesar de disponibilizar diferentes metodologias 
para quantificação da umidade nos vegetais, usa praticamente o método gravimétrico e isto 
pode estar ligado ao baixo custo desta metodologia e à presença e diversas substancias 
no vegetal que podem interferir na análise dos resultados nos métodos de propostos. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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TEMA DE AULA03: PROSPECÇÃO FITOQUÍMICA – PROCEDIMENTO DE EXTRAÇÃO E 
IDENTIFICAÇÃO DE HETEROSÍDEOSCIANOGÊNICOS EM UMA AMOSTRA VEGETAL 
E COMO A PRESENÇA DE CIANETO É CONFIRMADA. A IMPORTÂNCIA DA HIDRÓLISE 
ENZIMATICA NA DETECÇÃO DE HETEROSÍDEOS CIANOGÊNICOS E QUAIS SINAIS 
VISUAIS OU QUÍMICOS QUE INDICAM UMA REAÇÃO POSITIVA. 
A prospecção fitoquímica é uma técnica que usa testes químicos para identificar e 
quantificar metabólitos secundários em plantas. A hidrólise enzimática é importante para a 
detecção de heterosídeos cianogênicos, e os sinais visuais ou químicos de uma reação 
positiva podem indicar a presença de cianeto. Para identificar heterosídeos cianogênicos 
em uma amostra vegetal, pode-se fazer um teste que envolva a utilização de papel de 
picrato de sódio: preparar uma fita de papel de picrato de sódio; prender a fita na tampa de 
um erlenmeyer, evitando que entre em contato com o líquido; colocar o erlenmeyer em 
banho-maria a 60°C por duas horas e observar se a cor do papel muda. 
A presença de cianeto pode ser confirmada com um teste que envolva a utilização 
de clorofórmio e papel de filtro picro-sódico: triturar cerca de 3 g de material vegetal fresco; 
umidificar o material com água destilada; adicionar cerca de 2 mL de clorofórmio a um tubo 
de ensaio com a extremidade estrangulada; transferir o material vegetal úmido para a parte 
estrangulada do tubo, sem que entre em contato com o clorofórmio; fechar o tubo com uma 
rolha, fixando uma tira de papel de filtro picro-sódico seco; deixar o frasco fechado e em 
repouso; se houver cianeto, o papel de filtro passará do amarelo para o alaranjado e, 
depois, para o vermelho. As plantas cianogênicas são aquelas que contêm glicosídeos 
cianogênicos, que liberam cianeto (ácido cianídrico) quando hidrolisados. O cianeto é 
considerado uma das substâncias mais tóxicas conhecidas. 
A hidrólise enzimática é importante a detecção de heterosídeos cianogênicos 
porque permite a liberação do ácido cianídrico (HCN) a partir da estrutura do heterosídeo. 
Esse processo facilita a identificação da presença de compostos cianogênicos em 
amostras. Os sinais de uma reação positiva são: Liberação de um odor característico de 
amêndoas amargas, associado ao HCN e Mudanças de cor em testes específicos.A 
liberação de um odor característico de amêndoas amargas, associado ao HCN, e 
mudanças de cor em testes específicos são sinais visuais ou químicos de uma reação 
positiva na detecção de compostos cianogênicos. A hidrólise enzimática é um processo que 
permite a liberação do ácido cianídrico (HCN) a partir da estrutura do heterosídeo, 
facilitando a identificação da presença de compostos cianogênicos em amostras. A reação 
é muitas vezes acoplada a um indicador que muda de cor na presença de cianeto. Por 
exemplo, papéis impregnados com reagentes específicos podem mudar de cor quando 
expostos ao HCN liberado. Uma reação negativa pode ser indicada pela ausência desse 
odor e pela manutenção da cor original da amostra, sem alterações significativas. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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Referências 
 
Diferença entre infusão, maceração e decocção. Disponível em: Diferença entre infusão x 
maceração x decocção - Chá e Sabedoria | Plantas e ervas medicinais. Acesso em 04 de 
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ENSINO DIGITAL 
 
RELATÓRIO 01 02 
DATA: 
26/10/2024 e 
23/11/2024 
 
 
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