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MÉTODOS DE ESTUDOS DA CÉLULA UNIVERSIDADE FEDERAL DO RIO GRANDE DO NORTE CENTRO DE BIOCIÊNCIAS DEPARTAMENTO DE BIOLOGIA E GENÉTICA Prof. Delando Nasário de Medeiros 1. INTRODUÇÃO 1. Aperfeiçoamento dos métodos de investigação. 2. Microscópio óptico de luz célula. 3. Microscópio eletrônico organelas e moléculas celulares 3. Equipamentos como ferramentas de estudos. 4. Biologia Celular e Molecular depende de aperfeiçoamento de instrumentos e técnicas de pesquisa. TAMANHO DAS CÉLULAS • Hemácia humana - 7.6 µm Óvulo Humano - ~100 µm TAMANHO DAS CÉLULAS 2. OBJETIVOS: Compreender os métodos gerais empregados para decifrar as estruturas e as funções celulares. Identificar a importância das técnicas e suas metodologias experimentais no estudo das células. 3. MÉTODOS: 3.1.PREPARADOS PERMANENTES: Fixação do material (1ª etapa) Finalidades: Evitar autólise Impedir invasão de microrganismos decompositores. Endurecimento do tecido (célula) para os cortes. Aumentar afinidade por corantes (MO) e contrastantes em (ME). 3.2. FIXADORES: a) Formaldeído H-C-OH Não Forma ligação cruzada Preserva a integridade bioquímica e antigênica da célula b) Glutaraldeído HOC-CH2-CH2-CH2-COH Forma ligação cruzada com o grupo amina livre das proteínas Fixa bem proteínas Fixador aditivo Concentração 2,5% 3.2. FIXADORES: 3.2. FIXADORES: c) Tetróxido de ósmio: OsO4 Usado na segunda fixação Fixa bem lipídios (ácidos graxos insaturados) Confere contraste as membranas Poder de penetração 1mm/hora Não fixa bem proteínas devido ao deslocamento do ponto isoelétrico d) Misturas Fixadoras contêm proporções variadas. 3.3. Microtomia: corte do material 1. Microscopia óptica inclusão parafina 2. Microscopia eletrônica inclusão resinas 3.3. Microtomia: corte do material 3.4. Coloração/Contrastação: Corantes: ácidos, básicos e vitais. Contrastantes: conferir melhor visualização Acetato de Uranila, citrato de Chumbo, OsO4. 4. MICROSCOPIA 4.1. MICROSCOPIA ÓPTICA: a) Histórico Hans Jansen – 1590 Roberto Hooke – 1665 Antony Leeuwenhoeck – 1674 (MO 266X) 4. MICROSCOPIA ÓPTICA: Hans Jansen–1590 Antony Leeuwenhoeck-1674 Roberto Hooke-1665 4. MICROSCOPIA: b) Limite de resolução e poder de resolução. Olho Humano - 0,2mm MO - 0,2µm ME - 0,2nm PODER DE RESOLUÇÃO PR de um microscópio é a capacidade de: Separar detalhes Produzir imagens separadas de partículas muito próximas 4.2. MICROSCOPIA ELETRÔNICA Tipos: MET MEV 4.2. MICROSCOPIA ELETRÔNICA 4.2. MICROSCOPIA ELETRÔNICA Micrografias: imagens. 5. CITOQUÍMICA: Localização intracelular das diversas substâncias que compõem a célula. Reação de Feulgen: reação específica para DNA 1ª etapa HCl quente 2ª etapa reativo de Schiff Lei de Lambert-Beer 6. IMUNOCITOQUÍMICA: Localização intracelular de proteínas específicas. Tipos: Imunocitoquímica direta: antígeno/anticorpo Imunocitoquímica indireta: marcação de antianticorpo. 6. IMUNOCITOQUÍMICA: 6. IMUNOCITOQUÍMICA: 7. ELETROFORESE EM GEL: Separação de diversas substâncias (íons ou moléculas) de uma solução, de acordo com suas cargas elétricas. 7. ELETROFORESE EM GEL 8. PCR (Reação de Polimerização em Cadeia) Amplificação de regiões específicas do DNA. 9. ESTUDO DE CÉLULAS VIVAS: 1. Cultura de células vegetais: (Meio de cultura MS) 2. Germinação in vitro 3. Micropropagação in vitro 4. Formação de calos 5. Fusão de células: protoplastos (heterocários) 6. Micropropagação de plantas geneticamente modificada (plantas transgênicas) 9. ESTUDO DE CÉLULAS VIVAS: 1. Cultura de células animais: meio de cultura 2. Embriões clonados 3. Células tronco 4. Animais geneticamente modificados (animais transgênicos) 9. ESTUDO DE CÉLULAS VIVAS: 9. ESTUDO DE CÉLULAS VIVAS: 1. Fertilização in vitro Animais estéreis Ejaculação retrógrada Determinação do sexo extra-uterino Poliembrionia Fertilização pós-mortem 9. ESTUDO DE CÉLULAS VIVAS: Fertilização in vitro 9. ESTUDO DE CÉLULAS VIVAS: Micromanipulação in vitro: inoculação do núcleo do espermatozóide no óvulo
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