Bem-estar na produção de alevinos de Tilápia-do-Nilo - PDF

Prévia do material em texto

UNIVERSIDADE ESTADUAL DE GOIÁS 
CÂMPUS SÃO LUÍS DE MONTES BELOS 
CURSO DE ZOOTECNIA 
 
 
 
 
 
 
 
 
BEM-ESTAR NA PRODUÇÃO DE ALEVINOS DE 
TILÁPIA-DO-NILO 
 
 
 
 
 
Acadêmico: Fábio de Freitas Paiva 
Orientadora: Profª Drª Raquel Priscila de Castro Oliveira 
 
 
 
 
São Luís de Montes Belos 
Agosto de 2015 
ii 
 
 
FÁBIO DE FREITAS PAIVA 
 
 
 
 
 
 
 
 
BEM-ESTAR NA PRODUÇÃO DE ALEVINOS DE 
TILÁPIA-DO-NILO 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
São Luís de Montes Belos 
Agosto de 2015 
Monografia apresentada ao 
Curso de Zootecnia do 
Câmpus São Luís de Montes 
Belos, Universidade Estadual 
de Goiás, para obtenção do 
grau em Bacharel em 
Zootecnia. 
 
iii 
 
 
 
 
 
iv 
 
DEDICATÓRIA 
 
 
Dedico este trabalho a Deus que mesmo em momentos difíceis sempre me 
acompanhou e me amparou com seu amor e graça. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
v 
 
AGRADECIMENTOS 
 
 
Primeiramente a Deus, o Pai criador que me acompanha em todos os 
momentos de minha vida. 
A minha família, que sempre me apoiou e ajudou a conquistar meu sonho. 
A minha ‘’mãe, ‘chefa’, professora, amiga e colega de profissão ’’, Raquel 
Oliveira por toda compreensão, carinho e paciência infinita. 
A minha ‘’chefa’’, Milena Rizzia por sempre me incentivar e mostrar todo 
o potencial que tenho. 
Ao quadro de professores, por terem me instruído, ensinado e orientado 
durante estes incontáveis anos que passei na instituição. 
Aos funcionários da Universidade por fazerem um trabalho tão justo que nos 
propicia todos os dias condições para estudo. 
A Universidade Estadual de Goiás – Câmpus São Luís de Montes Belos pela 
oportunidade concebida a mim para realização do curso de Zootecnia. 
A todos os Docentes do curso de Zootecnia do câmpus São Luís de Montes 
Belos, deixo um muito obrigado por todo conhecimento adquirido durante esses anos, 
me preparando da melhor maneira possível para o mercado profissional. 
 Aos meus supervisores de estágio Adriano patrão, João Barbosa e Ramon 
Amaral em nome da Piscicultura A3 por me receberem com tanto apresso e portas 
abertas o que demonstou confiança em meu trabalho. 
vi 
 
A toda equipe de funcionários da empresa Piscicultura A3, pela paciência e 
troca de conhecimentos de uma forma tão simples e proveitosa e as novas amizades 
feitas no período de estágio. 
A todos amigos que dividiram casa comigo e suportaram meus enjoos de 
alguma forma: Rafael Dias, Girlei Gonçalves, Leandro Arruda, Felipe Diniz, Thalles 
Bueno, Danilo Pires, Murilo Carlos, Iago Almeida, Anderson Catalão e Diogo Caetano. 
Ao meu grande amigo, irmão, uma das melhores pessoas que tive o prazer de 
conhecer durante esses anos e que pretendo levar comigo para o resto de minha vida, 
Georgios Bruno obrigado pelo companheirismo, amizade, cumplicidade, apoio 
Obrigado irmão! 
A minha grande amiga, irmã, companheira que me levou a ver um novo lado da 
zootecnia e que graças ao seu esforço e companheirismo tenho o prazer de defender 
este trabalho. Obrigado Emília Camargo. 
A minha grande amiga e companheira Bruna de Azeredo Bastos por fazer parte 
de minha vida e ter me aconselhado tanto durante esses anos de amizade. 
A minha amiga que sempre esteve comigo em dias bons e principalmente nos 
ruins, alguém que tive o prazer de conviver e caminhar. Obrigado Paulla Barbosa. 
A Claudinha Luz por toda paciência e zelo em realizar seu trabalho com tanta 
competência e por ter me ajudado tanto nestes anos. 
 
 
 
 
 
 
 
 
vii 
 
SUMÁRIO 
 
 LISTA DE FIGURAS............................................................................ Ix 
 LISTA DE QUADROS........................................................................... Xi 
 RESUMO............................................................................................. Xii 
 ABSTRACT.......................................................................................... Xiii 
1 INTRODUÇÃO..................................................................................... 1 
2 REVISÃO DA LITERATURA................................................................ 3 
2.1 Tilápias................................................................................................. 3 
2.1.1 Características da Tilápia-do-Nilo........................................................ 4 
2.1.2 Monossexo........................................................................................... 5 
2.2 Sistema Intensivo, Viveiros................................................................... 6 
2.2.1 Características da qualidade da água em viveiros para criação de 
tilápias-do-Nilo...................................................................................... 
7 
2.2.1.1 Temperatura......................................................................................... 7 
2.2.1.2 Transparência e produção de plânctons ............................................. 8 
2.2.1.3 Potencial Hidrogênico (pH) e calagem................................................. 9 
2.2.1.4 Oxigênio dissolvido (OD)...................................................................... 9 
2.2.1.5 Amônia ................................................................................................ 10 
2.2.2 Capacidade de suporte........................................................................ 11 
2.3 Fator de Condição ................................................................................ 11 
2.4 Conceitos de Bem-Estar na Produção Animal...................................... 11 
2.4.1 Legislação brasileira para bem-estar animal........................................ 12 
2.4.2 Senciência............................................................................................ 13 
2.5 Conceitos de Bem Estar na Produção de Peixes................................. 13 
2.5.1 Cinco liberdades................................................................................... 13 
2.6 Cinco Liberdades Aplicadas a Peixe..................................................... 14 
2.6.1 Liberdade fisiológica............................................................................. 15 
2.6.2 Liberdade ambiental............................................................................. 17 
2.6.3 Liberdade sanitária............................................................................... 17 
2.6.4 Liberdade comportamental................................................................... 18 
2.6.5 Liberdade psicológica......................................................................... 18 
viii 
 
3 RELATÓRIO DE ESTÁGIO.................................................................. 19 
3.1 Período de Estágio............................................................................... 19 
3.2 Descrição da Empresa.......................................................................... 19 
3.3 Descrição das Atividades Realizadas................................................... 19 
3.3.1 Preparação dos viveiros ...................................................................... 19 
3.3.2 Transporte dos alevinos....................................................................... 21 
3.3.3 Recepção dos alevinos e aclimatação ................................................ 22 
3.4 Seleção................................................................................................. 23 
3.4.1 Seleção na recepção dos alevinos....................................................... 23 
3.4.2 Biometria no arraçoamento.................................................................. 23 
3.5 Ração Fornecida................................................................................... 24 
3.6 Manejo Alimentar.................................................................................. 25 
3.7 Qualidade de água............................................................................... 26 
3.8 Transferência Para os Tanques-Rede..................................................27 
3.9 Avaliação do Bem-Estar na Piscicultura............................................... 31 
3.9.1 Cinco liberdades................................................................................... 31 
3.9.1.1 Liberdade fisiológica ............................................................................ 32 
3.9.1.2 Liberdade ambiental............................................................................. 32 
3.9.1.3 Liberdade sanitária .............................................................................. 32 
3.9.1.4 Liberdade comportamental................................................................... 33 
3.9.1.5 Liberdade psicológica........................................................................... 32 
4 CONSIDERAÇÕES FINAIS ................................................................ 34 
5 REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS 35 
 
 
 
 
 
 
 
ix 
 
LISTA DE FIGURAS 
 
Figura 1 Tilápia-do-Nilo (Oreochromis niloticus) com coloração desejada na 
espécie................................................................................................. 
 
5 
Figura 2 Viveiro com cal virgem em preparação para receber alevinos (vazio 
sanitário por sete dias)......................................................................... 
 
20 
Figura 3 Imagem A: Caixa de transporte para alevinos. Imagem B: retirada 
dos alevinos das caixas de transporte................................................. 
 
21 
Figura 4 Imagem A: coleta de água do viveiro. Imagem B: Água utilizada para 
aclimatação.......................................................................................... 
 
22 
Figura 5 Ração utilizada na alevinagem com teor de 40% de proteína bruta e 
granulometria 2mm............................................................................... 
 
24 
Figura 6 Arraçoamento de alevinos com ração extrusada 1.2mm 40% de PB 
em sistema intensivo de produção....................................................... 
 
25 
Figura 7 Despesca dos alevinos para transferência do viveiro aos tanques-
rede realizada por colaboradores. Em cada despesca foram 
retirados aproximadamente 60 mil alevinos......................................... 
 
26 
Figura 8 Contagem de alevinos feita por colaboradores.................................... 27 
Figura 9 Caixa de transporte com oxigenação................................................... 28 
Figura 10 Retirada dos alevinos das caixas de transporte com auxilio de puçá 
levados ao duto de transporte............................................................ 
 
29 
Figura 11 Transferência de alevinos. Duto utilizado para recepção de alevinos 
nos tanques rede.................................................................................. 
 
29 
 
 
 
 
 
 
x 
 
Figura 12 Transferência de alevinos. Duto utilizado para recepção de alevinos 
nos tanque-rede................................................................................... 
30 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
xi 
 
Lista de Quadro 
Quadro 1 Características das Tilápias mais cultivadas no mundo................ 4 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
xii 
 
RESUMO 
 
A avaliação do bem-estar animal é de suma importância à produção de 
alevinos para garantir o sucesso da produção, pois estes se tornarão os futuros 
animais a serem engordados e comercializados. Este trabalho foi elaborado 
com o intuito de abordar cuidados que devem ser realizados com os alevinos 
desde a concepção à transferência fornecendo bem-estar. São estes cuidados: 
recepção dos alevinos, alimentação, manejos gerais e despesca, tendo em 
vista aspectos sanitários, alimentares, estressores e ambientais. O estágio foi 
realizado na Piscicultura 3A integrada do grupo Ambar Amaral, localizada no 
município de Santa Fé do Sul São Paulo com inicio no dia 17 de dezembro de 
2014 e fim no dia 06 de março de 2015 totalizou 312 horas. A produção de 
alevinos inicia-se com o planejamento da produção de pescado por ciclo em 
que há interesse pelo piscicultor, construção dos viveiros para estocagem 
destes animais, cuidados com a manutenção, arraçoamento, qualidade da 
água, prevenção à predadores ou agentes estressores, qualidade sanitária do 
ambiente em que os peixes são alocados, liberdade para expressar 
comportamentos típicos da espécie e qualidade de vida dos peixes. Desta 
forma, garantir por meio de práticas de bem-estar produtividade elevada e com 
baixa mortalidade sem diminuir a qualidade de vida destes animais. 
 
 
PALAVRAS-CHAVE: Cinco liberdades, qualidade de vida, produtividade, 
sistema intensivo e viveiros. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
xiii 
 
Abstract 
 
 
The assessment of animal welfare is of paramount importance to production 
fingerlings to ensure the success of production, since these will be the future 
animals to be fattened and marketed. This work was done with the intention of 
address care that should be performed with fingerlings from conception to 
transfer providing welfare. Are these precautions: The production of fingerlings 
is initiated with planning of fish production per cycle in which there is interest by 
the pisciculturist, construction of nurseries for in which these is interest by the 
maintenance, feeding, water quality, prevention of stocking of predators or 
stressors in the municipality Santa Fé do Sul – São Paulo commencing on 
December 17, 2014 and end on March 6, 2015, totaling 312 hours. Sanitary 
quality of the environment in which the fish are allocated, freedom to express 
typical behaviors of the specie and quality of life of fish. This way we ensure 
through welfare practices, high productivity and with low mortality without 
diminishing the quality of life of these animals. 
 
KEYWORDS: Five freedoms, quality of life, productivity, intensive system and 
nurseries. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
1 INTRODUÇÃO 
No Brasil, a criação de peixes foi uma novidade introduzida pelos 
holandeses quando ocuparam parte do território nordestino, no século XVIII. 
No entanto, foi a partir da década de 30 que começou a se desenvolver com o 
povoamento de açudes públicos no Nordeste, destinados para armazenagem 
de água, e que permitiam atender às necessidades de pesca das populações 
circunvizinhas (Faria et al., 2013). 
A tilápia é um peixe de origem africana que vive em água doce, as 
primeiras espécies de tilápia foram introduzidas no Brasil por volta dos anos 50 
(Barbosa et al., 2010). 
O Ministério da Pesca e Aquicultura (MPA) realizou um censo no Brasil 
entre outubro de 2009 a outubro de 2011, e os dados foram registros de 
localização exata das atividades aquícolas e interações socioeconômicas. Foi 
identificado 15.469 produtores de pescado no continente, dentre estes 
produtores, 8.855 criavam tilápia, sendo, 22% na região Sudeste e 3% no 
Centro-Oeste (MPA, 2014). 
De acordo com dados do IBGE (2013), a produção de tilápias durante o 
período de 01 de janeiro a 31 de dezembro de 2013 nos estados de São Paulo 
e Goiás foram respectivamente 24.329 e 7.371 toneladas. A cidade de Santa 
Fé do Sul, SP, produziu neste mesmo período, 6.486 toneladas de tilápia. 
Kubtiza (2015) estima que a produção atual de tilápia se aproxime de 
210.000 toneladas/ano. A tilápia é produzida em praticamente todas as regiões 
do país, São Paulo se destaca no sudeste, com grande expansão nos cultivos 
nos últimos 10 anos. Este crescimento se deve primeiramente a grande 
aceitação do mercado aos produtos da tilápia cultivada. O mercado de tilápia e 
de pescado em geral no Brasil continua com demanda maior do que a oferta, a 
ponto do Brasil importar grande quantidade de pescado. 
Através de processos zootécnicos aplicados na piscicultura, tem-se a 
ideia de produzir o máximo ao menor custo. Está em crescimento técnicas 
aplicadas para a produçãocom saúde e bem-estar desses animais (Pedrazzani 
et al., 2007). 
O conceito de bem-estar animal está aplicado a peixes com 
controvérsias ligadas à capacidade de sofrimento, e foi caracterizado nos 
2 
 
peixes em contextos de interação social, memória espacial e aprendizagem 
(Galhardo & Oliveira R., 2006). 
Com o decorrer do tempo é previsto que da mesma forma que 
acontece com os outros animais, o consumidor começará a fazer 
considerações sobre o bem-estar dos peixes (Pedrazzani et al., 2007). 
 Ao utilizar o conceito de Bem-Estar associado ao correto manejo na 
produção de alevinos, os animais estão aptos à expressar suas características 
genéticas, assim, é promovido o desenvolvimento satisfatório conforme as 
características da espécie. 
Objetivou-se com este trabalho discorrer sobre o bem-estar na 
produção de alevinos de tilápia-do-Nilo e garantir por meio de práticas de bem-
estar produtividade elevada com baixa mortalidade sem diminuir a qualidade de 
vida destes animais. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
3 
 
2 REVISÃO DA LITERATURA 
 
2.1 Tilápias 
 
De acordo com o Ministério da Pesca e Aquicultura (2014) o Brasil 
possui condições favoráveis para a produção aquícola, visto que disponibiliza 
3,5 milhões de hectares de lâmina d’água em reservatórios de usinas 
hidrelétricas e em propriedades particulares no interior do país. A estratégia do 
Ministério da Pesca e Aquicultura para fortalecer a produção nacional de 
pescado incorpora a criação de parques aquícolas continentais e marinhos em 
águas de domínio da União. 
A tilápia foi introduzida no Brasil em 1953, quando a “Light”, em São 
Paulo, importou Tilápia Rendalli do Congo. Posteriormente, em 1971, o 
Departamento Nacional de Obras Contra a Seca - (DNOCS) introduziu 
exemplares da espécie Tilápia Nilótica (Oreochromis niloticus) com o intuito de 
povoar os reservatórios públicos da Região Nordeste (Oliveira et al., 2007). 
Figueiredo Junior & Valente Junior (2008) corroboram e complementam 
o trabalho de Oliveira et al. (2007) informando que os Estados de São Paulo e 
Minas Gerais, através de suas companhias hidrelétricas, produziram na década 
de 70 alevinos para povoamento de seus reservatórios. Essa tentativa de 
dispersão da espécie fracassou devido à falta de conhecimento. No entanto, a 
tilapicultura firmou-se como atividade empresarial a partir de 1980, quando 
surgiram os empreendimentos pioneiros. 
Kubitza (2000) afirmou que existe mais de 70 espécies de tilápias, a 
maioria delas oriundas da África, quatro destacam-se na aquicultura graças as 
suas características, conforme observado no quadro 1. 
Cruzamentos entre espécies têm sido utilizados na obtenção de 
híbridos machos ou de híbridos em linhagens de tilápias vermelhas. As 
características destes híbridos e linhagens geralmente são intermediárias às 
das espécies que os originaram (Kubitza, 2011). 
 
 
4 
 
 Oreochromis 
Niloticus 
Oreochromis 
aureus 
Oreochromis 
mossambicus 
Oreochromis 
u. hornorum 
Crescimento XXXXX XXXXX XXX XXX 
Tolerância à 
baixas 
temperaturas 
XXX XXXXX XXX XXX 
Tolerância à 
alta salinidade 
XXX XXXX XXXXX XXXXX 
Idade de 
maturação 
sexual 
5-6 meses 4 meses 3meses 3-4 meses 
Produção de 
alevinos 
(prolificidade) 
XXXXX XXXX XXX XXX 
Legenda: Quanto maior o numero de X, melhor são os indicadores de características 
Fonte: Kubitza, 2000. 
Quadro 1. Características das Tilápias mais cultivadas no mundo. 
 
 
2.1.1 Características da Tilápia-do-Nilo 
Oliveira et al. (2007) relataram que a tilápia nilótica apresenta hábito 
alimentar fitoplanctófago (alimenta-se de algas), aceita rações comerciais 
elaboradas à base de subprodutos da agropecuária. Kubitza (2000) 
acrescentou que a Tilápia-do-Nilo apresenta habilidade em se alimentar do 
plâncton, assim, quando cultivada em viveiros de águas verdes, supera em 
crescimento e conversão alimentar as demais espécies de tilápias. 
A Tilápia-do-Nilo possui dentes rudimentares nos lábios, intestino 
longo, respiração do tipo branquial e o corpo coberto por escamas (Oliveira et 
al., 2007). A coloração deste gênero geralmente é cinza escuro, com 
nadadeiras caudais, apresenta listras pretas delgadas e verticais. Os machos, 
durante o período reprodutivo, apresentam a superfície ventral do corpo e as 
nadadeiras anais, dorsais e pélvicas pretas, a cabeça e o corpo com manchas 
vermelhas (Pereira & Silva, 2012). 
5 
 
 
Fonte: Aquabel, (2013). 
Figura 1: Tilápia-do-Nilo (Oreochromis niloticus) com coloração desejada na 
espécie. 
 
 
2.1.2 Monossexo 
Lima (2011) relatou que o cultivo monossexual é uma técnica que 
consiste em cultivar indivíduos de mesmo sexo e apresenta algumas vantagens 
como: impedir a reprodução nos viveiros, maior rendimento de carcaça e 
controle da população. 
Um grande entrave existente com o cultivo de tilápia-do-Nilo está 
relacionado com a precoce maturidade sexual e elevada fecundidade, o que 
acarreta a elevação da população em condições de cultivo. Este fato pode 
provocar grandes prejuízos aos cultivos devido à redução das taxas de 
crescimento dos animais envolvidos na reprodução, competição pelo alimento 
e queda na qualidade da água devido à elevada população presente no 
sistema intensivo (Bombardelli et al., 2004). 
A Tilápia-do-Nilo apresenta crescimento superior no macho 
(aproximadamente 25%), maior ganho em peso e melhor conversão alimentar 
quando comparados às fêmeas. A reversão sexual de tilápias é empregada 
como biotecnologia para produção de monossexo, as tilápias do sexo 
6 
 
masculino, por meio de indução hormonal ou temperaturas elevadas, maximiza 
a produtividade e o crescimento da tilapicultura no Brasil (Lima, 2011). 
 
2.2 Sistema intensivo em Viveiros 
Neste sistema utiliza-se maior nível técnico em comparação com o 
sistema semi-intensivo (onde a ração artificial é suplemento da alimentação). É 
necessário que a alimentação seja totalmente artificial, com rações 
balanceadas que podem propiciar a melhor performance aos peixes (Rural 
News, 2015). 
Na piscicultura intensiva em viveiros utiliza-se esses métodos para 
produção de peixes e para que o funcionamento desse sistema seja positivo 
são necessários alguns critérios, tais como: arraçoamento dos peixes com 
ração balanceada e adequada para cada espécie atenta para a fase de cultivo, 
manejo criterioso e espécies adaptadas à criação em alta estocagem (LOPES, 
2012). 
Neste sistema de criação, os viveiros apresentam maior taxa de 
renovação de água em relação aos sistemas extensivos e semi-intensivos. 
Pode-se utilizar aeração suplementar para regular a disponibilidade de oxigênio 
dissolvido na água. Normalmente, a opção é pelo monocultivo, com densidades 
elevadas (assim as tilápias produzem acima de 20 mil alevinos por hectare), 
utiliza-se ração de qualidade e frequência de alimentação (Faria et al. 2013). 
Sanches & Hayashi (2001) recomendam para fase de alevinagem de 
tilápias, cinco arraçoamentos diários durante o período diurno, em intervalos de 
tempo semelhantes. 
 Para Oliveira (2010) a densidade de estocagem está relacionada com 
a quantidade de peixes colocados por m2, dentre as técnicas de manejo 
empregadas na piscicultura para a produção de tilápia-do-Nilo, a densidade de 
estocagem é de extrema importância. Lopes (2012) definiu como taxa de 
estocagem ideal de um a três peixes/m². 
Viveiros para cultivo de peixes caracterizam-se pela ocorrência de 
densidade superior às encontradas na natureza. Esta superpopulação torna o 
ambiente instável, para a obtenção de produção é necessário o manejo 
adequado (Ostrensky & Boeger, 1998). 
7 
 
Oliveira (2010) complementa a ideia de Ostrensky & Boeger (1998) e 
afirmou que densidades elevadas podem acarretar alta taxa de mortalidade, 
redução no crescimento do animal, altos níveis de estresse, mudança no 
comportamento, redução na eficiênciada reversão sexual e aumento na 
transmissão de doenças, devido ao maior contato entre os peixes. 
 
2.2.1 Características da qualidade da água em viveiros para criação de tilápias-
do-Nilo 
Pereira & Silva (2012) relataram que para a criação racional dos peixes 
um dos passos principais é a análise da qualidade da água. Os peixes vivem 
em equilíbrio com o ambiente aquático, desta maneira os organismos bióticos e 
o meio abiótico devem estar inter-relacionados e interligados. No momento em 
que ocorre alguma variação, os peixes ficam estressados, o que aumenta a 
possibilidade de adquirirem doenças. 
A qualidade da água deve ser avaliada antes, durante e depois do 
desenvolvimento da atividade de piscicultura. A criação intensiva exige análise 
diária de algumas variáveis, tais como: temperatura e oxigênio dissolvido. 
Outros parâmetros de qualidade da água que recomenda-se analisar 
frequentemente são: transparência, pH e amônia (Faria et al., 2013). 
2.2.1.1 Temperatura 
A temperatura corpórea dos peixes varia de acordo com a temperatura 
da água em que eles estão. O aumento da temperatura da água eleva a taxa 
de metabolismo dos animais (Embrapa, 2000). Os peixes são animais 
exotérmicos, a temperatura corpórea apresenta-se próxima à temperatura da 
água em que vivem. Os peixes tropicais apresentam faixa de conforto térmico 
situada entre 22 e 30°C (IABS, 2013). 
A temperatura da água é um dos fatores que deve ser objeto de 
constante monitoramento, pois é um dos parâmetros limitantes na alimentação, 
provoca a redução no consumo alimentar e estresse quando não estiver na 
faixa de conforto dos peixes (IABS, 2013). 
8 
 
A exigência em temperatura depende da espécie de peixe e fase de 
desenvolvimento em que este se encontra (ovo, larva, pós-larva ou juvenil). 
Temperaturas mínimas e máximas da água devem ser conhecidas de modo a 
determinar a viabilidade do cultivo de uma espécie em particular (Kubitza, 
1998). 
2.2.1.2 Transparência e produção de plânctons. 
 A transparência é aferida com o Disco de Secchi, quando a coluna 
d’água medida com o disco apresentar mais de 30 cm indica baixa 
produtividade de plâncton, menor que 20 cm a produtividade de plâncton é alta, 
recomenda-se transparência entre 20 e 30 cm (Pereira & Silva, 2012). 
Plâncton é a comunidade de micro-organismos que vive em suspensão 
na coluna d’água, divididos basicamente em fitoplâncton e zooplâncton. O 
fitoplâncton é formado por pequenas algas que, a partir da luz do sol e do gás 
carbônico dissolvido na água produzem oxigênio utilizado na respiração dos 
peixes. Além disso, o plâncton é a base da cadeia alimentar, o zooplâncton é 
formado por diminutos organismos que se alimentam do fitoplâncton e 
extremamente importante para a nutrição dos peixes nos diferentes estágios de 
desenvolvimento, desde larvas até adultos (Faria et al. 2013). 
A produção planctônica em estações de piscicultura visa, 
principalmente, suprir a demanda de alimentos vivos para larvas e alevinos. As 
oscilações nos diversos parâmetros físico-químico destes viveiros definem, em 
linhas gerais, as condições da qualidade de água para a produção do plâncton, 
o que interfere na capacidade de produção assim como na qualidade dos 
organismos produzidos (Sá & Sipaúba, 1997). 
O plâncton contribui para o balanceamento da dieta da tilápia-do-nilo 
pois, fornece aminoácidos essenciais, ácidos graxos, minerais e vitaminas que 
pode estar ausentes ou em quantidades limitantes nas rações. Em viveiros com 
alta densidade de estocagem e com água verde esta contribuição ainda pode 
chegar a cerca de 30% (Kubitiza, 2006). 
 
2.2.1.3 Potencial hidrogênico (pH) e calagem 
9 
 
O pH é representado por uma escala de 0 a 14 que indica a quantidade 
de íons de hidrogênio [H+] livres numa solução. A água quando está com pH 
igual a 7, diz-se que está neutra. Porém quanto maior a concentração de íons 
de hidrogênio, mais ácida fica a água e o pH diminui de 7 até 0. Se a 
concentração de [H+] diminuir, ela fica básica e o pH sobe de 7 até 14. É 
recomendável para a maioria das espécies de peixes que o pH se situe em 
faixa de 6,5 a 8,5 (Faria et al., 2013). 
Com a construção de viveiros em locais com solos ácidos a água pode 
apresentar valores baixos de pH e concentrações reduzidas de alcalinidade 
total, apresentar sedimentos ácidos no fundo dos viveiros, o que interfere 
indiretamente na produção de plânctons, o que resulta em baixa produção de 
peixes e de outras espécies cultivadas (Queiroz & Boeira, 2006). 
Em viveiros, a calagem pode ser usada para correção do pH, 
geralmente, água com pH menor que 6,5 deve receber calagem. Esta corrige 
os valores de pH e neutraliza a acidez de troca do solo do fundo dos viveiros. O 
calcário agrícola é o material mais utilizado em calagem, apresenta lenta 
reação na água suave elevação do pH seguro para aplicação em viveiros com 
peixes (Kubitza, 1998). 
2.2.1.4 Oxigênio dissolvido (OD) 
O oxigênio é essencial à vida e baixas concentrações de OD na água 
podem causar atraso no crescimento, redução na eficiência alimentar dos 
peixes, aumento na incidência de doenças e mortalidade dos peixes (Kubitza, 
1998). 
A taxa de difusão do oxigênio na água é muito lenta, isto faz com que a 
liberação de oxigênio pelas algas através da fotossíntese seja a principal fonte 
de OD nos ecossistemas aquícolas. Para a piscicultura é necessário ocorrer 
saldo positivo entre produção e consumo de oxigênio na água. A variação 
diária nos níveis de OD de um viveiro depende da quantidade de plânctons 
presente, assim uma correlação positiva: quanto menor a quantidade de 
plânctons, menor o teor de OD (Cyrino et al., 2011). 
10 
 
As concentrações de OD declinam durante o período noturno, este 
componente varia e pode causar danos à produção das 00:00 as 8:00 horas 
da manhã (Queiroz & Silveira 2006). 
O oxigênio dissolvido é um dos componentes da água que mais varia 
durante o dia. Para desenvolvimento da Tilápia-do-Nilo, são requeridos níveis 
mínimos de 2mg/L, o ideal é acima de 5mg/L. Níveis mais baixos 
comprometem o desenvolvimento, sobretudo, quando se mantêm por períodos 
prolongados (Barbosa et al. 2010). 
2.2.1.5 Amônia 
É comum o enriquecimento de viveiros com nutrientes, principalmente 
o nitrogênio e o fósforo, que em geral, são oriundos do arraçoamento, adubos e 
fertilizantes que contêm tais elementos. O uso inadequado desses nutrientes 
podem ocasionar prejuízos tanto ambientais quanto financeiros (Mercante et 
al., 2007). 
O principal resíduo nitrogenado excretado por peixes é a amônia (NH3 
forma não ionizada) mais tóxica aos peixes e pode causar mortalidade de 
peixes. Concentrações iguais ou superiores a 0,20 mg/L, servem como alerta 
no cultivo de tilápias, pois compromete diretamente à conversão alimentar, 
crescimento e tolerância a manejos (Kubitza, 2000). 
Macedo & Sipaúba-Tavares (2010) confirmaram o estudo de Mercante 
et al. (2007) e Kubitza (2000) afirmaram que amônia é o principal resíduo 
nitrogenado excretado pelos peixes, resultante do metabolismo protéico e 
contribui para o aumento da decomposição microbiana de resíduos orgânicos 
(restos de alimentos, fezes e adubos orgânicos). 
2.2.2 Capacidade de suporte 
Attayde & Panosso (2011) afirmam que no contexto da piscicultura 
intensiva, a capacidade de suporte pode ser definida como a quantidade 
máxima de peixes que poderá ser produzida em um ecossistema sem deflagrar 
um processo de degradação ambiental pela carga de resíduos gerados. 
Araripe et al. (2006) complementam que a piscicultura é uma atividade 
que requer boas condições ambientais, pois esse ambiente é modificado com o 
11 
 
manejo dos peixes e seu metabolismo. O impacto da piscicultura no ambiente é 
a própria produção aquícola, desta forma gera resíduos e os leva para o 
ambiente uma quantidade de nutrientes compatível com o tipo de cultivo 
realizado. 
Para Kubitza(1999) a capacidade de suporte é quando os peixes 
param de ganhar peso, ou seja, quando o incremento em biomassa for nulo. 
Kubitza & Kubitza (2000) complementam e afirmam que qualquer tentativa de 
superar esse limite de biomassa sem incrementar a estratégia de cultivo, pode 
resultar em perda parcial ou total da produção. 
O conhecimento da carga máxima de nutrientes gerados pelo sistema 
de cultivo que o ecossistema é capaz de sustentar é fundamental para o 
desenvolvimento da atividade, pois é uma importante ferramenta para o 
controle e preservação da qualidade da água do ambiente e para a garantia da 
sustentabilidade ambiental da atividade (Attayde & Panosso, 2011). 
Para Kubitza & Kubitza (2000) é fundamental para o planejamento e a 
otimização da produção, o conhecimento e quantificação da capacidade de 
suporte. 
 
2.3 Fator de Condição 
Segundo Araújo et al. (2011) o índice de fator de condição (K) é muito 
utilizado nos estudos de biologia pesqueira, o motivo é que o mesmo indica o 
grau de bem-estar do peixe em relação ao ambiente de produção. O fator de 
condição influencia os aspectos nutricionais recentes e/ou gastos de reservas 
em atividades cíclicas, que permite a relação das condições ambientais e os 
aspectos comportamentais das espécies. 
Gomiero et al. (2010) relataram que a relação peso-comprimento é 
uma maneira facilitada de descrever o crescimento, sem considerar a idade do 
peixe. É usada para estimar o peso através do comprimento, a partir do 
momento que se conhece o comprimento, ou vice e versa, uma das etapas 
para o estudo do fator de condição, usada como parâmetro no estudo da 
biomassa para estimativas de populações naturais ou em sistemas de 
produção. 
 
12 
 
2.4 Conceitos de Bem-Estar na Produção Animal 
O bem-estar animal é um conceito de difícil definição no meio 
científico, devido à complexidade do assunto e a grande divergência observada 
entre os cientistas atuantes na área (Mantenca et al., 2013). 
Broom & molento(2004) definem bem-estar animal como uma 
satisfeita qualidade de vida que englobam determinados aspectos referentes 
ao animal, tais como saúde física e mental, longevidade e felicidade. 
 Galhardo & Oliveira (2007) descreveram que a área científica do 
bem-estar animal tem como objetivo a caracterização da qualidade de vida dos 
animais e o desenvolvimento de estratégias que permitam o seu incremento 
quando os animais se encontram sob a responsabilidade de humanos. 
 Broom (2011) complementou que o bem-estar animal é um conceito 
científico que descreve qualidade de vida potencialmente mensurável de um 
ser vivo em determinado momento, no entanto, ressalta que a abordagem 
científica do tema deve estar amplamente separada da ética. 
Molento & Pont (2010) avaliou o bem-estar de um animal em sistema 
produtivo por três possibilidades, são elas: 
 o animal está adaptado, porém apresenta uma função não 
significativa em seu ambiente atual; 
 o ambiente oferece ao animal um desafio para o qual ele não 
tem condições de adaptar-se; 
 o animal tem uma adaptação apropriada ao seu ambiente 
natural, mas tal adaptação se torna inadequada; 
 
2.4.1 Legislação brasileira para o bem-estar animal 
Desde 1934 existe no Brasil a preocupação com o bem-estar animal, 
quando foram estabelecidas medidas de proteção animal, no qual, princípios 
de respeito aos animais já eram observados (MAPA, 2015). 
A legislação de bem-estar animal no Brasil teve início com o decreto n° 
24.645 de julho de 1934, no seu artigo n°225 dota o poder público de 
competência para proteger a fauna, a flora e veda práticas que submetam 
animais a crueldade. Através da portaria n°185 de março de 2008 (Atualizada 
pela portaria n°524 de 2011) a Comissão Técnica Permanente de Bem-estar 
13 
 
Animal, com o objetivo principal de coordenar as mais diversas ações 
referentes a este tema na produção animal e fomentar a adoção das boas 
práticas para o bem-estar animal pela cadeia produtiva, sempre embasada na 
legislação vigente e no conhecimento técnico-científico disponível (MAPA, 
2015). 
 
2.4.2 Senciência 
Agência de Notícias de Direitos Animais (ANDA) (2009) define 
senciência como um conceito que combina os termos “sensibilidade” e 
“consciência”. O conceito chave para a compreensão do debate sobre os 
direitos animais. A senciência é definida como a presença de estados mentais 
que acompanhem as sensações físicas. Ela é um atributo fundamental para 
todos os animais, por estes estarem separados de sua fonte de alimentos. Por 
isso é considerada uma característica típica e definidora dos indivíduos do 
reino animal. 
De forma resumida é a capacidade de sentir, estar consciente de si ou 
apenas do ambiente que o cerca. Senciência é a capacidade de sentir e 
engloba os animais vertebrados (Luna, 2008). 
 
2.5 Conceitos de Bem-Estar na Produção de Peixes 
Pedrazzani et al., (2007) definem a consciência como o que é 
percebido pelo animal em dado momento a respeito de sua situação imediata, 
observa com atenção às imagens ou representações de objetos e eventos, 
situações que os peixes enfrentam no presente, lembranças ou antecipações 
de ações futuras. Galhardo & Oliveira (2006) reforçam o trabalho de 
Pedrazzani et al., (2007) com seu estudo e afirmam que a formação de 
aspectos mentais declarativas é um pré-requisito para a existência de 
senciência e retratada em peixes em contextos de interação social, memória 
espacial e aprendizagem. 
Takahashi et al., (2006) afirmaram que o estresse pode ser 
compreendido como a reação biológica do peixe a estímulos ameaçadores, 
pode variar com a intensidade a exposição e diferentes estímulos, bem como 
14 
 
com a genética e a domesticação dos animais. O ambiente aquático é 
extremamente dinâmico, com mudanças rápidas ou extremas na concentração 
de OD e pH. 
O conceito de bem-estar animal tem-se aplicado a peixes com 
discussão relacionada à sua capacidade de sofrimento. A complexidade 
cognitiva dos peixes gera implicações relevantes para o seu estatuto moral e 
recomendações relacionadas com a manutenção em cativeiro (Galhardo & 
Oliveira 2006). Os animais que vivem nesse ambiente enfrentam essas e 
outras alterações, que podem ocasionar estresse e reduzir a habilidade na 
manutenção da homeostase (OBA et al., 2009). 
Certos procedimentos que implicam manipulação física, tais como: a 
captura para controle de doenças, a classificação dos animais por tamanho e a 
despesca são atividades causadoras de estresses físicos e psicológicos 
agudos (Pedrazzani et al., 2007). 
 
2.5.1 Cinco liberdades 
De acordo com a Farm Animal Welfare Council - FAWC (2009) para 
que um animal possa demonstrar seu potencial de desempenho se faz 
necessário uma situação de conforto somado a de bem-estar. Assim, os 
animais precisam de vários fatores a sua disposição para que possam gozar 
das cinco liberdades citado pela primeira vez em 1965 pelo comitê Brambell 
(grupo denominado pelo Ministério da Agricultura da Inglaterra para avaliar as 
condições em que os animais eram mantidos no sistema de criação intensiva 
naquele país) e depois revisada em 1970 a qual se equipara a versão de 2009. 
Ainda de acordo com FAWC (2009) o comitê Brambell define o bem-
estar animal como um termo que abrange tanto o bem-estar físico quanto o 
mental. Assim a avaliação ideal do animal deve se considerar desde aspectos 
físicos (fisiológicos) como mentais (comportamentais). A relação entre 
homem/animal no contexto do bem-estar animal é analisada e considera 
diferentes situações, desta forma, toma como referência o conceito das cinco 
liberdades, afirma-se que todos os animais devem ser livres de medo e 
angustia, livres de fome e sede, livres de desconforto, livres de dor, ferimentos 
e doenças e ter liberdade para expressar seu comportamento normal. 
15 
 
2.6 Cinco liberdades aplicadas a peixes 
A definição posta pelo Farm Animal WelfareCouncil (FAWC), do 
Parlamento Britânico em seu Código de Bem-estar para Animais de Produção, 
citada por Wesbter (1987) em sua publicação definiu as cinco liberdades que 
determinam o bem-estar animal. Chevillon (2000) as classificou e é 
amplamente aceita e utilizada, são elas: 
 Liberdade fisiológica. 
 Liberdade ambiental. 
 Liberdade sanitária. 
 Liberdade comportamental. 
 Liberdade psicológica. 
 
2.6.1 Liberdade fisiológica 
Na liberdade fisiológica os peixes devem estar livres de fome, a 
alimentação deve estar à disposição do animal, deve ser suficiente e 
apresentar quantidade e qualidade, permite crescimento, vigor e saúde normais 
de cada espécie, citado por (Webster 1987; Santana et al., 2014). 
Neto & Prado (s/d) complementam com a afirmativa de que peixes com 
peso médio de 1 a 20 gramas devem receber rações com teores de 40% de PB 
e cerca de 10% de seu peso total, já alevinos entre 22 a 50 gramas, devem ser 
arraçoados com ração 40% PB e 8% do seu peso vivo. Para peixes de 10 a 
50g as rações devem ser oferecidas em pequenas partículas de modo que o 
peixe possa abocanhá-los. 
Kubitza (1999) descreveu que em condições naturais e em viveiros o 
primeiro alimento das pós-larvas de tilápias são o fitoplâncton, os copépodos e 
os cladóceros. Estes organismos possuem alto valor energético e podem 
conter níveis de proteína na matéria seca que varia de 20 a 60%. Kubitza 
(2003) complementa com a afirmação de que zooplâncton é o principal 
alimento durante as primeiras fases de desenvolvimento dos peixes, desta 
forma, a adubação feita de forma adequada, é fundamental para estimular e 
possibilitar o rápido crescimento de alevinos. 
16 
 
O apetite dos peixes é influenciado por variações na temperatura por 
ser é um animal exotérmico, deve-se observar diariamente a busca de alimento 
pelos peixes e ajustar as taxas de arraçoamento (Sussel, 2008). 
Kubitza (1999) relatou que devido à necessidade de moagem fina para 
obter partículas de tamanho inferior a 0,5mm as rações para pós-larvas estão 
sujeitas a maiores perdas de nutrientes por dissolução na água, principalmente 
os minerais, as vitaminas hidrossolúveis, proteínas e aminoácidos livres. 
Kubitiza (2009) complementa que as rações para pós-larvas 
geralmente contém entre 40 e 50% de proteína e teor de gordura entre 10 e 
15%. Alevinos a partir de 0,5g já podem ser alimentados com rações na forma 
granulada. 
Alguns fatores como temperatura ambiente, tempo de estocagem, 
armazenamento com excesso de umidade, produtos amontoados, composição 
química, dentre outros, o aparecimento de fungos na ração pode afetar o 
consumo pelos animais e até mesmo provocar morte. É de suma importância 
que os produtos sejam conservados em perfeitas condições, com locais secos 
arejados e limpos, e que ofereçam condições adequadas durante o transporte 
para que não prejudiquem a qualidade (Custódio et al. 2005). 
Machado (2000) apresentou algumas práticas para estoque de rações 
e produtos, dentre as principais estão: 
 Primeiro que vence primeiro que sai; 
 o local de armazenagem deve ser fresco, ventilado e iluminado; 
 as áreas de armazenagem devem ser mantidas limpas; 
 o empilhamento deve ser bem alinhado, em blocos regulares, 
 manter os paletes, com afastamento mínimo de 50cm das 
paredes para evitar umidade e facilitar a limpeza, 
 os paletes devem respeitar afastamento de 30 cm entre si e 20 
cm do piso. 
 
2.6.2 Liberdade ambiental 
 
Para garantir a liberdade ambiental os peixes devem ester livres de 
desconforto térmico ou físico. As instalações devem ser adaptadas e fazer com 
17 
 
que o ambiente apresente conforto térmico, desta forma permite o descanso e 
atividades normais (Webster 1987; Santana et al., 2014). 
Segundo Hein & Brianese (2004) a temperatura ideal da água para 
produção de tilápia-do-Nilo que visa o bem-estar e conforto térmico é entre 22 
e 30°C. Temperaturas superiores ou inferiores influenciam diretamente na 
produção de tilápias. 
 Produção de tilápias em sistema intensivo pode-se trabalhar com 
densidades elevadas, acima de 20 mil alevinos por hectare, apresenta 
quantidade superior a 3 peixes por m² (Moraes et al., 2013). Produção eficiente 
é o peso que pode ser produzido com conversão alimentar adequada, em 
período razoavelmente curto e com peso final aceito, desta forma se adequa a 
normas de bem-estar animal (Paiva et al; 2008). 
 
2.6.3 Liberdade sanitária 
 
Na liberdade sanitária os peixes devem estar livres de dor, ferimentos e 
doenças. As instalações devem apresentar-se de forma a minimizar o risco de 
doenças, fraturas e machucados, e quaisquer casos que ocorram devem ser 
reconhecidos e tratados imediatamente (Webster 1987; Santana et al., 2014). 
A densidade de estocagem nos sistemas de produção de peixes é 
fundamental, pois está associada ao bem-estar dos animais. Alta densidade 
influencia diretamente na qualidade da água, aumenta a agressividade dos 
peixes o que favorece o aparecimento de feridas, doenças e deformidades; 
pode aumentar o aparecimento de infestações parasitárias e gera altas taxas 
de mortalidade (Pedrazzani et al., 2007). 
Huntingford et al. (2006) destacam algumas atividades humanas que 
podem comprometer o bem-estar dos peixes, dentre elas estão: 
 Privação de alimentos durante tratamentos de doenças ou 
despescas; 
 manuseio e remoção de água durante procedimentos 
zootécnicos; 
 falta de cuidados para se evitar a transmição de doenças 
através de animais selvagens. 
 
18 
 
2.6.4 Liberdade comportamental 
 
Essa liberdade visa a Possibilidade para expressar padrões de 
comportamento normais. O ambiente deve permitir e oferecer condições para 
que o animal expresse seus instintos e comportamentos normais, próprios à 
sua espécie (Webster 1987; Santana et al., 2014). 
A densidade ideal dos grupos depende das características 
comportamentais dos animais, em particular, a tendência para formar 
cardumes ou a territorialidade (Pedrazzani, 2007). 
 
2.6.5 Liberdade psicológica: 
 
Os animais devem estar livres de medo e angustia não deve ser 
exposto a situações que lhe provoquem angústia, ansiedade, medo ou dor 
(Webster, 1987; Santana et al., 2014). 
Devido a grande produção de peixes, há muitos animais de pequeno 
porte e isto oferece uma atração maior para os predadores, peixes menores 
são mais predados por se tratar de animais com pouca sagacidade no 
momento de se livrarem do perigo (Huntingford et al., 2006). 
Lontras e ariranhas são os principais predadores de peixes em viveiros. 
O uso de telas para a cobertura de tanques e viveiros de piscicultura oferece 
alternativa na proteção contra o ataque por lontras, no entanto é necessário 
que a cobertura seja bem feita, utiliza-se tela de boa qualidade e malha 
adequada (Marchini et al., 2011). 
Dados recentes de cultivo mostram que a cobertura dos tanques com 
telas anti-pássaros contribuem sobremaneira para aumentar a sobrevivência 
dos alevinos (Kubitza, 2007). 
Recomenda-se fornecer de quatro a seis refeições ao dia, nas quais os 
peixes são alimentados à vontade (próximo da saciedade). Isso contribui para 
minimizar o tempo em que estes peixes jovens permanecem susceptíveis aos 
predadores (Kubitza, 2009), 
 
3 RELATÓRIO DE ESTÁGIO 
19 
 
 
3.1 Período de Estágio 
 
No dia 17 de dezembro de 2014 iniciou-se as atividades do estágio 
curricular supervisionado na Piscicultura A3. O mesmo encerrou no dia 06 de 
março de 2015, o que totalizou 312 horas, sob a supervisão do Sócio 
Proprietário Médico Veterinário Antônio Ramon do Amaral Neto. 
 
3.2 Descrição da Empresa 
 
A Piscicultura A3 está localizada no município de Santa Fé do Sul – SP 
e situada no reservatório da Usina de Ilha Solteira, com extensão de 1.195km². 
Pertence ao Grupo Ambar Amaral, que conta com cinco empresas: Piscicultura 
A3, Rações Raguife, Brazilian Fish, Agropecuária 3A,loteamento Por do Sol. 
A piscicultura A3 dispõe de duas unidades. A unidade 1, no período do 
estágio supervisionado estava em reforma para ser ativada como unidade de 
pesquisas e experimentos. A unidade 2 era destinada a engorda de Tilápia-do-
Nilo (Oreochromis niloticus) e dispõe de: 
 Dez viveiros com 2.100m² cada, exclusivos para alevinagem; 
 a água destinada para os viveiros eram proveniente de 
bombeamento mecânico diretamente do reservatório de Ilha 
Solteira; 
 aproximadamente 60 tanques-rede de 126m³ 
 265 tanques-rede de 27 m³, usados para fase de engorda e 
terminação; 
 
3.3 Descrição das Atividades Realizadas. 
 
3.3.1 Preparação dos viveiros. 
 
Os viveiros após serem despescados, foram desinfetados e expostos 
ao sol para secarem, quando secos, realizava-se a aplicação de cal virgem na 
proporção de 50 g/m² e o vazio sanitário respeitado por sete dias ao sol. 
Posteriormente, receberam calcário dolomítico na proporção de 95 g/m². A 
20 
 
adubação não foi realizada. A figura 2 mostra viveiro em preparação para o 
início de um novo ciclo produtivo. Após sete dias, os viveiros receberam água 
bombeada diretamente do reservatório de Ilha Solteira. 
 
 
Fonte: arquivo pessoal, 2014. 
Figura 2. Viveiro com cal virgem em preparação para receber alevinos (vazio 
sanitário por sete dias). 
 
3.3.2 Transporte dos alevinos. 
 
Os alevinos chegaram a propriedade em caixas de fibra de vidro 
utilizadas especificamente para o transporte de peixes vivos, proveniente de 
Santa Fé do Sul - SP, com densidade aproximada de 70 mil alevinos/3 m³, para 
o transporte os animais foram banhados em sal. Essas caixas de transporte 
possuiam oxigenação por cilindros de oxigênio monitorados e regulados por 
manômetros e fluxômetros a pressão de 8 mg/L. O oxigênio era injetado na 
água através de mangueiras microperfuradas de borracha e a água foi 
controlada com temperatura aproximadamente de 28 °C. A figura 3 A e 3 B 
mostram como era feito o transporte dos alevinos. 
 
21 
 
 
Fonte: Arquivo pessoal, 2014. 
Figura 3. Imagem A: Caixa de transporte para alevinos Imagem B: retirada dos 
alevinos das caixas de transporte. 
 
 3.3.3 Recepção dos alevinos e aclimatação 
 
Os alevinos chegaram à fazenda com peso médio de 1,0g, constatado 
por meio de pesagem realizada com balança digital de gancho. 
A aclimatação nas caixas de transporte foi realizada com a água dos 
viveiros. Com auxílio de baldes, os colaboradores da piscicultura 
acrescentaram água nas caixas de transporte. O parâmetro adotado para a 
quantidade de água utilizada nessa aclimatação era a temperatura aferida nos 
viveiros preparados para recepção dos alevinos, esta aferição foi realizada com 
auxílio de um termômetro de bulbo de mercúrio. O acréscimo de água foi 
interrompido quando a temperatura da água nas caixas aproximou a 
temperatura aferida nos viveiros. No dia da recepção, a temperatura registrada 
da água dos viveiros foi 28°C. A figura 4 A e 4 B mostram o manejo de 
aclimatação na água das caixas de transporte realizada por colaboradores da 
Piscicultura A3. 
A aclimatação foi realizada de forma à assegurar o menor índice de 
mortalidade dos alevinos, foi realizado em horários que a temperatura ambiente 
estava mais amena no período matutino e no fim da tarde, dois períodos do dia 
em que se tem horários com temperaturas relativamente inferiores se 
comparadas a outros horários do dia. 
A B 
22 
 
 
Fonte: Arquivo Pessoal, 2014. 
Figura 4: Imagem A: coleta de água do viveiro. Imagem B: Água utilizada para 
aclimatação. 
 
 
3.4 Seleção 
 
3.4.1 Seleção na recepção dos alevinos 
 
A seleção era realizada da seguinte forma: com auxílio de uma peneira, 
os peixes foram coletados nas caixas de transporte e colocados em um 
recipiente feito de cano PVC com 20cm e 50mm de comprimento e diâmetro 
respectivamente, o cano foi perfurado para escoar a água. O recipiente foi 
utilizado para padronizar uma quantidade aproximada na contagem dos peixes. 
Realizou-se três coletas para contar a quantidade de alevinos e obtinha-se a 
um valor médio de peixes no recipiente. 
Os alevinos foram transferidos para os viveiros num total de 100.000 
alevinos por viveiro e 47,62 peixes por m², essa era a densidade de estocagem 
adotada até a despesca destes viveiros. 
 
3.4.2 Biometria no arraçoamento 
 
Para estimar a quantidade, tipo e granulometria de ração fornecida 
para os alevinos era realizada a biometria quinzenalmente, em que se 
verificava o peso dos peixes por amostragem aleatória nos viveiros. 
A B 
23 
 
Para a pesagem dos alevinos, os colaboradores capturavam 
quantidade aproximada de 200 peixes com auxilio de puçá. Os animais eram 
colocados em sacola de manejo para a pesagem em balança digital de gancho. 
A função tara da balança era selecionada a cada pesagem, desta forma, se 
considerava unicamente o peso dos alevinos. O peso médio dos peixes era 
estabelecido pela média aritmética, dessa forma foi possível verificar a 
quantidade de alevinos. 
 
3.5 Ração Fornecida 
 
Na piscicultura A3 fornecia-se ração Top Fish, produzida pela empresa 
Raguife pertencente ao grupo Ambar Amaral, conforme a figura 5. A ração 
fornecida para alevinos variava em pó, 1.2 mm, 2.0 mm e apresenta 40% de 
proteína bruta total. Esta mesma composição para as diferentes 
granulometrias. 
 Níveis de garantia por kg de produto: 
 Umidade: máx. 120g; 
 proteína bruta: min. 400g; 
 extrato etéreo: min. 60g; 
 matéria fibrosa: máx. 60g; 
 matéria mineral: máx. 110g; 
 fósforo: min. 12g; fósforo: máx. 16g; 
 cálcio: min. 18g; cálcio: máx. 30g; 
 vitamina A: 12.000UI; vitamina D3: 3.000UI; vitamina E: 150UI; 
vitamina K3: 15,00mg; vitamina B1-tiamina: 20,00mg; vitamina 
B2- riboflavina: 20,00mg; vitamina B6-piridoxina: 17,50mg; 
vitamina B12- cianocobalamina: 40,00mcg; vitamina C: 
300,00mg; niacina: 100,00mg; 
 pantotenato de cálcio: 50,00mg; biotina: 1,00mg; ácido fólico: 
6,00mg; cobre: 17,50mg; ferro: 100,00mg; manganês: 50,00mg; 
zinco: 120,00mg. 
 
 
24 
 
 
Fonte: Arquivo pessoal, 2014. 
Figura 5. Ração utilizada na alevinagem com teor de 40% de proteína bruta e 
granulometria de 2mm. 
 
 
3.6 Manejo Alimentar 
 
 Na fase inicial dos alevinos foi fornecido 22% de ração em relação ao 
peso vivo e no fim do ciclo, 7%. Essa relação peso vivo e fornecimento de 
ração sofreu variação conforme o desenvolvimento dos peixes. A ração pó e 
extrusada, assim como a granulometria da ração variou com o peso e idade 
desses alevinos. Era realizado quatro arraçoamentos diários, dois no período 
matutino e dois no vespertino durante os sete dias da semana. 
25 
 
O primeiro arraçoamento era iniciado as 09:00h e finalizado as 10:30h. 
Esperava-se um período de 1h após o término do arraçoamento para o início 
do próximo. O arraçoamento acontecia quando a oxigenação estava igual ou 
superior a très ppm. Em relação à quantidade de ração fornecida, era utilizado 
um software, em que o mesmo era alimentado com o peso médio dos alevinos 
e arraçoamento diário. Caso houvesse sobra de ração, era pesado à 
quantidade de sobra por trato e as informações repassadas ao responsável 
técnico que lançava esses valores no Software. A figura 6 mostra o momento 
do arraçoamento. 
 
Fonte: Arquivo pessoal 2014. 
Figura 6. Arraçoamento de alevinos com ração extruasada 1.2 mm 40% de PB 
em sistema intensivo de produção. 
 
 
3.7 Qualidade da Água 
 
A empresa não dispunha de kit para análise de qualidade de água. Era 
necessário a visita técnica de um colaborador da empresa Raguife que fazia as 
análises quinzenais dos viveiros, avalia-se oxigênio dissolvido, temperatura, 
pH, turbidez e transparência. Nesses 15 dias, era feita análise de temperatura 
com termômetro digital e oxigênio dissolvido com oxímetro. Os valores 
encontrados de oxigênio dissolvido e temperaturas médias no período matutino26 
 
eram três ppm e 27°C, respectivamente, já no período vespertino 10ppm e 
30°C, respectivamente, pH 7 e a transparência não foi mensurada. 
Os níveis recomendados de oxigenação, amônia, temperatura, pH, 
turbidez e transparência para produção de Tilápias-do-Nilo são 
respectivamente: >4.0 mg/L, <10 mg/L, 22 a 30 °C, 6.5 a 8,0 20 a 30 cm 
(EMBRAPA,2013). 
 
3.8 Transferência para os Tanques-Rede 
 
Os alevinos levaram aproximadamente 75 dias para atingirem o peso 
de transferência, os peixes foram transferidos para os tanques-rede quando 
atingiram peso médio de 30 gramas. Para o manejo foi utilizado uma rede de 
arrasto para a despesca do viveiro. O manejo iniciava por volta de 09:00h e 
com término às 13:00h. Esse manejo era realizado por colaboradores conforme 
mostrado nas figuras 7 e 8. 
 
 
Fonte: Arquivo pessoal, 2014. 
Figura 7. Despesca dos alevinos para transferência do viveiro aos tanques rede 
realizada por colaboradores. Em cada despesca foram retirados 
aproximadamente 60 mil alevinos. 
 
27 
 
 
Fonte. Arquivo pessoal 2014. 
Figura 8 Contagem de alevinos feita por colaboradores. 
 
 Para a transferência dos alevinos era feito a despesca dos viveiros, da 
seguinte forma: passava a rede de arrasto para retirada total ou parcial dos 
alevinos, os colaboradores coletavam os alevinos com auxilio de sacolas de 
transporte feitas de material plástico perfurado. Essas sacolas serviram tanto 
para transporte quanto para pesagem. Durante o processo de pesagem, as 
sacolas foram molhadas e com uma balança digital de gancho (em que utilizou 
a função tara) pesou os alevinos excluiu-se o peso das sacolas. Desta forma 
pode-se mensurar o peso médio dos peixes em cada coleta. Realizou três 
pesagens para se estimar o peso médio por quantidade de peixes. A cada 
pesagem, os colaboradores contaram a quantidade de alevinos por sacola. 
Este método permitiu chegar ao peso médio dos alevinos. Após a 
coleta utilizou caixas de transporte com oxigenação 8mg/L para a transferência 
dos peixes, conforme mostra a figura 9. Foi utilizado nesse deslocamento dos 
peixes, sal comum, na proporção de 2 kg/ m³. Essas caixas apresentavam 
densidades médias de 10 mil alevinos por 3m3. 
 
 
28 
 
 
Fonte: arquivo pessoal, 2014. 
Figura 9. caixa de transporte com oxigenação; 
 
Ao chegar no local de transferência, com auxilio de um motor-bomba, 
era realizado um processo de nivelamento na temperatura da água e 
aclimatação dos peixes alocados nas caixas de transporte com a água do 
reservatório de Ilha Solteira. Após constatado o aplanamento da temperatura 
das caixas de transporte e do reservatório (com auxilio de um termômetro de 
bulbo de mercúrio) o mesmo motor-bomba era instalado no duto de transporte 
para a água auxiliar na descida dos alevinos até os tanques-rede e, dessa 
forma, evitar lesões nesses animais. 
Os peixes foram retirados das caixas de transporte com auxilio de puçá 
e transferidos para os tanques-rede através de um duto. Esse duto levou os 
peixes das caixas até os tanques-rede instalados no outro lado do duto, 
conforme figuras 10, 11 e 12. Após esse manejo era administrado sal na 
proporção de 40g/m², nos alevinos. 
29 
 
 
Fonte: Arquivo pessoal, 2014. 
Figura 10: Retirada dos alevinos da caixa de transporte com auxilio de puçá 
levados ao duto de transporte. 
 
 
 
Fonte, Arquivo pessoal, 2014. 
Figura 11. Os alevinos foram colocados em um duto que levou direto ao tanque 
rede. 
 
30 
 
 
Fonte: Arquivo pessoal, 2014. 
Figura 12. Transferência de alevinos. Duto utilizado para recepção de alevinos 
nos tanques rede. 
 
 
3.9 Avaliação do Bem-Estar na Piscicultura 
 
3.9.1- Cinco liberdades 
 
 De acordo com Pinheiro & Brito (2009) a definição sobre o 
comportamento animal do Conselho do Bem-Estar de Animais de Produção do 
Reino Unido Farm Animal Welfare Council-FAWC, desenvolveu as ‘’cinco 
liberdades’’: 
 
 Liberdade fisiológica. 
 Liberdade ambiental. 
 Liberdade sanitária. 
 Liberdade comportamental. 
 Liberdade psicológica. 
 
 Baseado nos estudos sobre essas liberdades pode ser observado 
na produção dos alevinos: 
31 
 
 
3.9.1.1- Liberdade fisiológica 
 
Durante o arraçoamento, foi observado que não houve falta de 
alimento destinado aos peixes, o alimento com tamanho adequado a cada 
categoria e tamanho do peixe e apresentava dentro dos parâmetros 
recomendados por Gonçalves (2007) com valores entre 24 a 56% PB em 
função da fase de desenvolvimento, a ração fornecida na piscicultura 
apresentava 40% de PB. 
. 
 
3.9.1.2- Liberdade ambiental 
 
As instalações apresentadas estavam dentro dos padrões adequados 
de acordo com a liberdade ambiental. A temperatura da água se mantinha 
dentro dos padrões de conforto térmico para produção dos peixes que foram 
produzidos nos viveiros. As temperaturas médias aferidas ao longo dos dias 
eram no período matutino em média de 27 °C e vespertino 30 °C, segundo 
SEBRAE (2008), as tilápias são predominantemente de águas quentes; a 
temperatura da água do cultivo pode variar de 20 a 30°C, embora possam 
tolerar temperaturas de aproximadamente 12°C. 
 
3.9.1.3- Liberdade sanitária 
 
As instalações eram livres de quaisquer riscos de provocar traumas 
nos alevinos. No momento da biometria era feita avaliação de sanidade dos 
peixes, se necessário, adotava-se o protocolo de tratamento do lote no próprio 
viveiro. No período de estágio não foi constatado nenhuma enfermidade, dessa 
forma não houve nenhum acompanhamento de tratamento de doenças, 
utilizava-se sal comum para profilaxia de doenças. Após cada manejo era 
administrado sal na proporção de 40g/m². 
 Os equipamentos utilizados para o manejo eram próprios para evitar 
fraturas e machucados. 
 
32 
 
3.9.1.4. Liberdade comportamental 
 
As instalações atendiam a critérios desejados para os animais 
expressarem seus comportamentos normais como nadar em cardume, 
apreensão do alimento e instintos de fuga na presença de ameaças. Os 
viveiros tinha profundidade média de 1,4 m. Desta forma pode-se observar que 
os peixes conseguiam se locomover livremente pelo viveiro sempre em forma 
de cardumes. 
 
3.9.1.5. Liberdade psicológica 
 
Observou-se nas instalações, a presença de telas para proteção de 
pássaros dentre outros predadores, água com baixa transparência, propicia 
maior segurança contra possíveis predadores e consequentemente diminui o 
estresse e medo dos alevinos. 
 
 
4 CONSIDERAÇÕES FINAIS 
 
A fase de alevinagem é a mais importante dentro de um sistema de 
produção intensiva de peixes, o futuro da produção depende diretamente do 
bom funcionamento e desenvolvimento destes alevinos. A seleção de animais 
superiores geneticamente, aliado a todos os cuidados necessários na etapa de 
alevinagem, resulta em índices zootécnicos e produtivos satisfatórios dentro do 
sistema de produção. 
Com as boas praticas de manejo e a avaliação das cinco liberdades, 
verificou-se que houve bem estar na produção de alevinos de tilápia-do-Nilo, e 
propiciou, desenvolvimento satisfatório, baixos índices de mortalidade e 
consequentemente maior rentabilidade. 
O estágio supervisionado obrigatório realizado na Piscicultura A3, 
colaborou de forma direta para o aprendizado teórico e prático onde foi 
abordado todos os aspectos do sistema de produção de alevinos de tilápia-do-
33 
 
Nilo, onde foram acompanhadas realidades diferentes de outras já observadas, 
colaborou assim, para o desenvolvimento técnico e profissional. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
34 
 
5 REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS 
AGÊNCIA DE NOTÍCIAS DE DIREITOS ANIMAIS. 2009. Senciência. 
Disponível em: http://www.anda.jor.br/10/06/2009/senciencia Acesso em: 12 
jun.2015. 
AQUABEL. 2013. Alevinos de Tilápias. Tilápia-do-Nilo. Rolândia PR. 
Disponível em:<http://www.aquabel.com.br/wp-
content/uploads/2013/09/199.jpg>Acesso em: 14 jun. 2015. 
ARARIPE, M. N. B. A. et al. Efeito do Cultivo de Peixes em Tanques Rede 
Sobre o Aporte de Fósforo para o Ambiente. Ver. Cient. Prod. Anim.. v.8, n.2, 
2006. 
ARAÚJO, C. C.; FLYNN, M. N.; PEREIRA, W. R. L. Indicadores de qualidade 
da água e biodiversidade do Rio Jaguari-Mirim no trecho entre as pequenas 
centrais hidrelétricas de São José e São Joaquim, São João da Boa Vista, São 
Paulo. RevInter Revista Intertox de Toxicologia: Risco Ambiental e 
Sociedade, v. 4, n. 3, out. 2011. 
ATTAYDE, J. L.; PANOSSO, R. 2011. Capacidade de suporte de oito açudes 
do Rio Grande do Norte para piscicultura intensiva em tanques-rede. Anais do 
XIX Simpósio Brasileiro de Recursos Hídricos. 18p. Porto Alegre RS. 
Disponível em: 
https://scholar.google.com/citations?view_op=view_citation&hl=en&user=Jx23cf
gAAAAJ&cstart=20&citation_for_view=Jx23cfgAAAAJ:ULOm3_A8WrAC. 
Acesso em: 10 jul. 2015. 
BARBOSA, A. C. A.; MOURA, E. V.; SANTOS, R. V. Cultivo de tilápias em 
gaiolas.EMPARN- Empresa de Pesquisa Agropecuária do Rio Grande do 
Norte, Lagoa Nova – RN, 2010. 33p. 
BOMBARDELLI, R. A.; HAYASHF, C.; MEURER, F. Aplicaçao de métodos 
diretos e indiretos para a produção de populações monossexuais na 
tilapicultura. Arq. Ciên. Vet. Zool. UNIPAR. V.7, n 1, p. 57-68, Umuarama PR. 
jan.-jun. 2004. 
http://www.anda.jor.br/10/06/2009/senciencia
http://www.aquabel.com.br/wp-content/uploads/2013/09/199.jpg
http://www.aquabel.com.br/wp-content/uploads/2013/09/199.jpg
https://scholar.google.com/scholar?oi=bibs&cluster=875452400932068764&btnI=1&hl=en
https://scholar.google.com/scholar?oi=bibs&cluster=875452400932068764&btnI=1&hl=en
https://scholar.google.com/citations?view_op=view_citation&hl=en&user=Jx23cfgAAAAJ&cstart=20&citation_for_view=Jx23cfgAAAAJ:ULOm3_A8WrAC
https://scholar.google.com/citations?view_op=view_citation&hl=en&user=Jx23cfgAAAAJ&cstart=20&citation_for_view=Jx23cfgAAAAJ:ULOm3_A8WrAC
35 
 
BROOM, D. M. Animal welfare: concepts, study methods and indicators. 
Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias, Medellin, v. 24, n. 3, p. 306-321, 
2011. 
BROOM, D. M.; MOLENTO, C. F. M. Bem-Estar animal:Conceito e questões 
relacionadas. Archives of Veterinary Science, v.9, n.2, p.1-11,2004. 
CHEVILLON, P. K. O Bem-Estar durante o Pré-Abate e atordoamento, 
EMBRAPA-1° Conferência Internacional virtual sobre qualidade de carne 
suína, bem-estar, transporte, Abate e consumidor, Ministério Da Agricultura 
e Abastecimento. Concórdia SC. 16 de nov a 16 de dez. 2000. 
CUSTÓDIO, D. P. et. Ração: Alimento Animal Perecível. Trabalho de revisão 
sobre conservação de alimento animal. Revista Eletrônica Faculdade Montes 
Belos, v.1, n.2, p. 131-147, São Luís de Montes Belos GO. Nov. 2005 
CYRINO, J.E.P .; OLIVEIRA, A.M.B.M. SAMPAIO, C. A. B. Curso de 
atualização em piscicultura. Apostila ESALQ. v.215, p.9. Piracicaba SP, 2011. 
EMBRAPA, Recomendações técnicas. Parâmetros ambientais e qualidade da 
água na piscicultura. Recomendações Técnicas. Belém, PA. 2000 n.8, 4p. 
FARIA, R. H. S. et al. CODAVASF. Manual de Criação de Peixes em 
Viveiros. 2013 136p. Brasília, DF. Disponível em: 
<http//:www.codevasf.gov.br/publicacoes> Acesso em: 24 jun. 2015. 
FARM ANIMAL WELFARE COUNCIL. Farm Animal Welfare in Great Britain: 
Past, Present and Future. 59p. Londres, Inglaterra. Out. 2009 
FIGUEREDO JÚNIOR, C. A.; VALENTE JÚNIOR, A. S.. Cultivo de Tilápias no 
Brasil: Origens e cenário atual. XLVI Congresso da Sociedade Brasileira de 
Economia, Administração e Sociologia Rural. Rio Branco–AC, 20-23 jul de 
2008 
GALHARDO, L.; OLIVEIRA, R. Bem-estar Animal: um Conceito Legítimo para 
Peixes?. Revista de Etologia.Vol.8, N°1, 51-61, 2006. 
36 
 
GOMIERO, L. M.; VILLARES J.; G. A. BRAGA, F. M. S. Relação peso-
comprimento e fator de condição de Oligosarcus hepsetus (Cuvier, 1829) no 
Parque Estadual da Serra do Mar - Núcleo Santa Virgínia, Mata Atlântica, Biota 
Neotrop. São Paulo, Brasil. 10 disponível em: 
http://www.biotaneotropica.org.br/v10n1/pt/abstract?article+bn01610012010 
acesso em: 12 jul 2015 
GOMIERO, L.M., VILLARES JUNIOR, G.A. BRAGA, F.M.S. Relação peso-
comprimento e fator de condição de Oligosarcus hepsetus (Cuvier, 1829) no 
Parque Estadual da Serra do Mar - Núcleo Santa Virgínia, SP. Brasil. Biota 
Neotrop. Disponível em: http://www.biotaneotropica.org.br/v10n1/pt/ Acesso 
em: 10 jul. 2015. 
GONÇALVES, G. S. Digestibilidade e Exigência de Lisina, Proteína e Energia 
em Dietas para tilápia-do-Nilo. Jabotical; 2007. 98p. Dissertação (Doutorado) 
– Centro de Aqüicultura da Unesp-CAUNESP, Universidade Estadual 
Paulista, 2007. 
HEIN, G.; BRIANESE, R. H. Modelo emater de produção de tilápia. Toledo, PR. 
Nov, 2004. Disponível em: 
http://www.almanaquedocampo.com.br/imagens/files/Til%C3%A1pia%20emate
r.pdf. Acesso em: 10 jul 2015. 
HUNTINGFORD F. A., et al. Farm Animal Welfare Council. Current Issues in 
Fish Welfare. Journal of Fish Biology. V 68 p 332-372. 2006. 
IBGE. Produção de tilápias no período de 01.01 a 31.12 e participações relativa 
e acumulada no total da produção, segundo as Unidades da Federação e os 20 
municípios com as maiores produções, em ordem decrescente – 2013. 
Produção da Pecuária Municipal. Brasília DF. 2013. Disponível em: 
ftp://ftp.ibge.gov.br/Producao_Pecuaria/Producao_da_Pecuaria_Municipal/2013
/tabelas_pdf/tab42.pdf. Acesso em: 30 jul. 2015. 
INSTITUTO AMBIENTAL BRASIL SUSTENTÁVEL (IABS). CODEVASF. 
Manual De Criação De Peixes Em Tanques-Rede. Brasília: ed. Dois. 2013. 
68p. 
 
http://www.biotaneotropica.org.br/v10n1/pt/abstract?article+bn01610012010
http://www.biotaneotropica.org.br/v10n1/pt/
http://www.almanaquedocampo.com.br/imagens/files/Til%C3%A1pia%20emater.pdf
http://www.almanaquedocampo.com.br/imagens/files/Til%C3%A1pia%20emater.pdf
ftp://ftp.ibge.gov.br/Producao_Pecuaria/Producao_da_Pecuaria_Municipal/2013/tabelas_pdf/tab42.pdf
ftp://ftp.ibge.gov.br/Producao_Pecuaria/Producao_da_Pecuaria_Municipal/2013/tabelas_pdf/tab42.pdf
37 
 
KUBITZA, F. 1998 qualidade da Água na Produção de Peixes. Revista 
panorama da Aquicultura. Parte II. ed.46. v.8 Jundiaí SP, mar. Disponível 
em:http://www.projetopacu.com.br/public/paginas/207-panorama-da-
aquicultura-qualidade-de-gua-parte-2.pdf . Acesso em: 30 jun. 2015. 
KUBITZA, F. 2007. Os caminhos da produção de peixes nativos no Brasil. 
Revista Panorama da Aquicultura. ed. 102. Jundiaí, SP, jul. Disponível em:< 
http://www.matsuda.com.br/Matsuda/upload/artigostecnicos/os_caminhos_da_p
roducao_de_peixes_nativos_no_brasil.pdf >. Acesso em: 18 jul. 2015. 
KUBITZA, F. 2015 Entrevista: Dr. Fernando Kubitza. A produção de Tilápia 
no Brasil. Acesso em: 30 jul. 2015. Disponível em: 
http://www.matsuda.com.br/Matsuda/Web/Entrevistas/detalhe.aspx?idnot=H12
101114130328&lang=pt-BR. 
KUBITZA, F. Questões Frequentes dos Produtores em Relação a Alevinos de 
Tilápias. Revista Panorama da Aquicultura. ed.97. v.16 Jundiaí SP, set. 
2006.. 
KUBITZA, F. Tanques-rede, Rações e Impacto Ambiental. Revista Panorama 
da Aquicultura. ed. 51. Jundiaí SP, fev. 1999. Disponível 
em:<http://www.panoramadaaquicultura.com.br/paginas/Revistas/51/tanque-
rede.asp>. Acesso em: 24 jun. 2015. 
KUBITZA, F. Tilápia: tecnologia e planejamento na produção comercial. 
Jundiaí SP, 2000. 285 p. 
KUBITZA, F. Tilápia: tecnologia e planejamento na produção comercial. 
Jundiaí-SP. 2-ed 316p. 2011. 
KUBITZA, F.; KUBITZA, L. M. M. Tilápia: Qualidade da água, sistemas de 
cultivo, planejamento da produção, manejo nutricional e alimentar e sanidade. 
ed.59, Parte I. Revista Panorama da Aquicultura. Jundiaí SP, mai. 2000. 
Disponível em: 
http://www.panoramadaaquicultura.com.br/paginas/revistas/59/Tilapias59.asp 
Acesso em: 24 jun. 2015. 
http://www.projetopacu.com.br/public/paginas/207-panorama-da-aquicultura-qualidade-de-gua-parte-2.pdf
http://www.projetopacu.com.br/public/paginas/207-panorama-da-aquicultura-qualidade-de-gua-parte-2.pdf
http://www.matsuda.com.br/Matsuda/upload/artigostecnicos/os_caminhos_da_producao_de_peixes_nativos_no_brasil.pdfhttp://www.matsuda.com.br/Matsuda/upload/artigostecnicos/os_caminhos_da_producao_de_peixes_nativos_no_brasil.pdf
http://www.matsuda.com.br/Matsuda/Web/Entrevistas/detalhe.aspx?idnot=H12101114130328&lang=pt-BR
http://www.matsuda.com.br/Matsuda/Web/Entrevistas/detalhe.aspx?idnot=H12101114130328&lang=pt-BR
http://www.panoramadaaquicultura.com.br/paginas/Revistas/51/tanque-rede.asp
http://www.panoramadaaquicultura.com.br/paginas/Revistas/51/tanque-rede.asp
http://www.panoramadaaquicultura.com.br/paginas/revistas/59/Tilapias59.asp
38 
 
KUBITZA, F.; Larvicultura de peixes nativos. ed.77. v.13 Jundiaí SP, mai. 2003. 
Revista Panorama da Aquicultura. Disponível em: 
<http://www.matsuda.com.br/Matsuda/upload/artigostecnicos/larvinicultura_de_
peixes_nativos.pdf> Acesso em: 28 jul. 2015. 
KUBITZA, F.; Manejo alimentar e nutricional. ed. 111. Jundiaí, SP, jul. 2009. 
Revista Panorama da Aquicultura. Disponível em:< 
http://www.acquaimagem.com.br/docs/Pan111_Kubitza.pdf>. Acesso em: 18 
jul. 2015. 
KUBITZA, F.; Nutrição e Alimentação de Tilápias - Parte II - Final. Revista 
Panorama da Aquicultura. ed. 53. Jundiaí SP, jun. 1999. Disponível em: 
http://www.matsuda.com.br/Matsuda/upload/artigostecnicos/nutricao_e_aliment
acao_de_tilapias__parte_2.pdf . Acesso em: 13 jul. 2015. 
LIMA, A. et al. Qualidade da Água: Embrapa Pesca e Aquicultura. 1.ed. 
Tocantins: Embrapa, 2013, 8p. Piscicultura Familiar. 
LIMA, F. P. C. Reversão sexual em Tilápias (Oreochromis niloticus). Conexão 
Ciência: Revista Científica da FUOM, v. 6, p. 126-132, 2011. 
LOPES, J. C. O. Técnico em Agropecuária. Piscicultura. Biblioteca 
Comunitária Jornalista Carlos Castello Branco. Floriano, PI. 2012. 
LUNA, S. P. L. Dor, senciência e bem-estar em animais. Senciência e dor. 
Ciênc. vet. tróp., Recife-PE, v. 11, p. 17-21 - abril, 2008 
MACEDO, C. F.; SIPAÚBA-TAVARES, L. H. Eutrofização e qualidade da água 
na piscicultura. Consequências e recomendações. 149-163p. SP. nov. 2010. 
MACHADO, R. L. P.. Boas práticas de armazenagem na indústria de 
alimentos. Embrapa Agroindústria de Alimentos, 28p. Doc- 42 Rio de Janeiro, 
RJ. Dez. 2000. 
MANTENCA X. et al. conceitos e formas práticas de avaliação dos sistemas de 
produção de suínos. Revisões, v. 34, n. 6 p 4214, 2013. 
http://www.acquaimagem.com.br/docs/Pan111_Kubitza.pdf
http://www.matsuda.com.br/Matsuda/upload/artigostecnicos/nutricao_e_alimentacao_de_tilapias__parte_2.pdf
http://www.matsuda.com.br/Matsuda/upload/artigostecnicos/nutricao_e_alimentacao_de_tilapias__parte_2.pdf
39 
 
MARCHINI, S.; CAVALCANTI, S.; PAULA, R. C.. Predadores Silvestres e 
Animais Domésticos. Guia Prático de Convivência. p44. Atibaia, SP, Brasil 
2011. 
 MERCANTE, C.T.J. et al. Qualidade da água em viveiro de Tilápia do Nilo 
(Oreochromis niloticus): caracterização diurna de variáveis físicas, químicas 
e biológicas, p. 79-88. São Paulo, SP, dez. 2007. 
MINISTÉRIO DA AGRICULTURA PECUÁRIA e ABASTECIMENTO. Missão 
MAPA. Brasília, s/d. Disponível em: 
<http://www.agricultura.gov.br/arq_editor/file/Aniamal/Bemestar-
animal/BEM_ESTAR_ANIMAL_O_BRASIL_SE_IMPORTA.pdf>. Acesso em: 12 
jun. 2015. 
MINISTÉRIO DA PESCA E AQUICULTURA. Produção. Brasília 04 jul. 2014. 
Disponível em: http://www.mpa.gov.br/aquicultura/producao. Acesso em: 13 
jun.2015 
MOLENTO, C. F.M.; PONT, G. D. Diagnósticos de bem-estar de peixes. II 
Congresso Brasileiro de Bioética e Bem-Estar Animal. Belo Horizonte, Ago. 
2010. In: Ciênc. Vet. Tróp,, Recife, PE, v.13, sup.1, p. 6-11, ago. 2010. 
MORAIS, R. H. S. de F.; SOUZA, M. M. R. G. ; SALLUM, S. W. B.. Manual de 
criação de peixes em viveiros. CODEVASF. Basília, 2013. 
NETO, J. P. B.; PRADO, G. F. Nutrição e Alimentação de Peixes, Cartilha do 
Produtor. s/d. Disponível em: < http://www.bigsal.com.br/cartilha-de-peixes.php#> Acesso 
em: 23 jul. 2015. 
OBA, E. T.; MARIANO, W. S.; SANTOS, L. R. B.; EMBRAPA. Estresse em 
peixes cultivados: agravantes e atenuantes para o manejo rentável. Manejo e 
sanidade em peixes cultivados. Macapá, Amapá. 2009. Cap 8. 
OLIVEIRA, E. G.; et al. Produção de Tilápia: Mercado, espécie, Biologia e 
Recria. Circular técnica. Teresina PI, v.45, p. 12. Dez. 2007. 
http://www.agricultura.gov.br/arq_editor/file/Aniamal/Bemestar-animal/BEM_ESTAR_ANIMAL_O_BRASIL_SE_IMPORTA.pdf
http://www.agricultura.gov.br/arq_editor/file/Aniamal/Bemestar-animal/BEM_ESTAR_ANIMAL_O_BRASIL_SE_IMPORTA.pdf
http://www.mpa.gov.br/aquicultura/producao
http://www.bigsal.com.br/cartilha-de-peixes.php
40 
 
OLIVEIRA, R. P. C. Desempenho zootécnico de duas linhagens de tilápia-do-
nilo, sob diferentes densidades de estocagem em raceway. In: ______. 
Considerações Gerais. Goiânia, GO. 2010. Cap. 1 p 6. 
OSTRENSKY, A.; BOEGER, W. Piscicultura: fundamentos e técnicas de 
manejo. Guaíba: Agropecuária, 211 p, 1998. 
PAIVA, P.; MAINARDES-PINTO, C.S.R; VERANI, J.R.; SILVA, A.L. Produção 
da tilápia tailandesa Oreochromis niloticus, estocada em diferentes densidades 
em tanques-rede de pequeno volume instalados em viveiros de piscicultura 
povoados ou não com a mesma espécie. Boletim do Instituto de Pesca, v.34, 
n.1, p.79-88, 2008. 
PEDRAZZANI, A. S. et al. Senciência e bem-estar de peixes: uma visão de 
futuro do mercado consumidor. Revista Panorama da Aquicultura. n.102, 
julho/agosto, 2007. 
PEREIRA, A. C.; SILVA, R. F. Programa Rio Rural Produção de Tilápias. 
Manual Técnico. Niterói RJ, 52p, 2012. 
PINHEIRO, A. A.; BRITO, I. F.. Embrapa Caprinos e Ovinos. Documentos 93. 
On line. Bem-estar na produção animal. Sobral, CE. 1 ed. 2009. Disponível em: 
http://ainfo.cnptia.embrapa.br/digital/bitstream/CNPC-2010/23061/1/doc93.pdf 
QUEIROZ, J. F.; BOEIRA, R. C.. Embrapa Meio Ambiente. Circular Técnica, 
14. Calagem e Controle da Acidez dos Viveiros de Aqüicultura. Jaguariúna: 
Embrapa, 2006. 8 p. 
QUEIROZ, J. F.; SILVEIRA, M.P.. Embrapa Meio Ambiente. Circular Técnica, 
12. Recomendações Praticas para melhorar a qualidade da agua e dos 
efluentes dos Viveiros de Aquicultura. Jaguariúna: Embrapa, dez. 2006. 14 p. 
RURALNEWS. Tipos de piscicultura. 08,abr.2015 Disponível em: 
http://www.ruralnews.com.br/visualiza.php?id=540 Acesso em: 23 jul. 2015 
http://ainfo.cnptia.embrapa.br/digital/bitstream/CNPC-2010/23061/1/doc93.pdf
http://www.ruralnews.com.br/visualiza.php?id=540
41 
 
SÁ, J.; W. P.; SIPAÚBA-TAVARES, L. H..Produtividade primária fitoplanctônica 
e variação de parâmetros limnológicos ao longo do dia, em tanques de cultivo 
planctônico da estação de hidrobiologia e piscicultura de furnas. Acta Limnol. 
v9, p 83-91, 1997. 
SANCHES, L. E. F.; HAYASHI, C. Effect of feeding frequency on Nile tilapia, 
Oreochromis niloticus. fries performance during sex reversal in hapas. Acta 
Scientiarum, Maringá, v.23, n.4, p. 871-876, 2001. 
SANTANA, M. C. A., CAVALI, J., MODESTO, V. C. Influência do clima em 
animais de interesse zootécnico. Revista Cientific@. Jaboticabal-SP. n 1, 
2014. 
SEBRAE. Aquicultura e pesca: tilápias. Estudos de mercado 
SEBRAE/ESPAM. Brasília: Supernova Design, 2008. 22 p. 
SUSSEL, F. R.. ALIMENTAÇÃO NA CRIAÇÃO DE PEIXES. EM TANQUES-
REDE. Nutrição de Peixes. APTA (Agência Paulista de Tecnologia dos 
Agronegócios), Assis, SP. Jun. 2008. 
TAKAHASHI, L. S. et al. Efeito do ambiente pós-transporte na recuperação dos 
indicadores de estresse de paucus juvenis, Piaractus mesopotamicus. Acta 
Scientiarum Animal Sciences, Maringá, PR. vol. 28, n.4, p. 469-475, out-dez, 
2006. 
WEBSTER, A.J.F. Meat and right: Farming as if the animal mattered. Can. Vet. 
J.N, v. 28, n. 8, 1987.