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2/4/20 1 Prof. Dr. Daniel Pascoalino Pinheiro PhD em Farmacologia molecular com ênfase em Oncologia experimental SOUTHERN, NORTHERN AND WESTERN BLOT III Curso de Noções básicas em Biologia Molecular e Citometria de Fluxo 1 Outline • Southern blot; • Passo a passo da técnica; • Aplicações; • Nothern blot; • Western blot e aplicações da técnica; • Explicando o passo a passo; • Análise dos resultados; • Casos clínicos e questões. 2 2 Blo*ng • Técnicas de hibridização em membrana desenvolvidas na década de 70; • Envolve a transferência de substâncias de um gel para uma membrana apropriada; • Anterior ao PCR. 3 Southern Blot 4 2/4/20 2 Southern Blot • Combina os métodos de transferência de fragmentos de DNA separados por eletroforese em gel para uma membrana e a identificação desses fragmentos através de sondas específicas. • A técnica de Southern blot baseia-se na hibridização entre moléculas de DNA, fixas em um suporte, com sondas (moléculas de DNA ou RNA) marcadas, visando à localização de sequências específicas de DNA. • Desenvolvida por Edwin Mellor Southern em 1975. 5 Southern Blot • Hibridização Relembrando.... TGCACC CGTCAT 6 Southern Blot üEtapas: • Digestão enzimática; • Eletroforese em gel; • Transferência para a membrana; • Hibridização; • Revelação. 7 Southern Blot vDigestão enzimática • A amostra de DNA precisa ser “digerida” por enzimas específicas para que os fragmentos sejam separados pela eletroforese. Fonte: www.biomedicinaonline.com.br/tecnicasembiologia 8 2/4/20 3 Southern Blot vDigestão enzimática • São utilizadas enzimas de restrição para digestão enzimática; • Enzimas de restrição são proteínas encontradas em bactérias que reconhecem uma curta sequência de DNA específica e clivam a dupla fita em um ponto específico; • Sistema de defesa. Fonte: www.biomedicinaonline.com.br/tecnicasembiologia 9 Southern Blot vDigestão enzimática Fonte: www.biomedicinabrasil.com/enzimasderestricao Enzimas de restrição: 10 Southern Blot vEletroforese em gel • Após a digestão enzimática, o DNA fragmentado é submetido à corrida em gel de agarose. Fonte: www.biomedicinabrasil.com/enzimasderestricao 11 Southern Blot vDesnaturação do DNA • O gel é incubado com solução de NaOH para desnaturar as fitas de DNA por 30 min. Fonte:https://sites.google.com/site/enfermagemufal20121/4-1 12 2/4/20 4 Southern Blot vTransferência (Blotting) • Importante: - Retirar as bolhas entre o gel e a membrana; - Não tocar na membrana; - Após a montagem do aparato, permitir a transferência overnight. 13 Southern Blot vHibridização • Importante: - Antes de adicionar sondas, expor a membrana à luz UV ou ao calor; - Pré-hibridar a membrana por 1 hora a 42°C. - Preparar a sonda - Adicionar a sonda à membrana - 12 a 16h 14 Southern Blot vLavagem e detecção • Importante: • Lavar a membrana a 42-52°C • Expor ao filme radiográfico Fonte: Herrera et al., 2001 15 Southern Blot vResumo Fonte: Lodish, H., et. al.1999. Molecular Cell Biology. 4th ed. New York. W.H. Freeman and Company. 16 2/4/20 5 Southern Blot vAplicações • Diagnóstico de doenças genéticas; • Testes de paternidade; • Perícia forense. Fonte: hpp://medicina.med.up.pt 17 Northern Blot 18 Northern Blot • Técnica semelhante ao Southern Blot, porém identifica a presença de RNA EXPRESSÃO GÊNICA 19 Northern Blot • Desenvolvida por Alwine e colaboradores em 1979, consiste numa técnica empregada para estudo da expressão gênica, pois avalia se um determinado transcrito se encontra presente na amostra. • Sonda é formada por DNA complementar à sequência de RNA de interesse. 20 2/4/20 6 Northern Blot Técnica Southern Blot Northern Blot Molécula alvo DNA RNA Gel Agarose Agarose Membrana Nitrocelulose/ Aminobenziloximetil Hibridização DNA-DNA DNA- RNA- RNA- Detecção R/Q /C R/Q /C 21 Northern Blot 22 Western Blot 23 24 Western Blot Técnica que permite detectar, caracterizar e semi-quantificar proteínas. 24 2/4/20 7 25 25 Questionamentos 26 • Por que estudar proteínas? • Por que estudar proteínas fosforiladas? • Por que estudar proteínas clivadas? • Observando o aumento, a diminuição ou a não alteração da expressão de uma proteína podemos afirmar que uma determinada via está ou não sendo alterada ou ativada? • Metilações pós-traducionais 26 Etapas da técnica • Preparação da amostra; • Extração e quantificação de proteínas; • Eletroforese – SDS Page; • Transferência para membrana; • Reação de bloqueio; • Reação antígeno-anticorpo; • Anticorpo primário; • Anticorpo secundário • Revelação. 27 27 Preparação da amostra e extração de proteínas • Etapas: • Lise celular; • Inibidores de proteases e fosfatases, para deter a digestão das células pelas próprias enzimas • Sonicação e Centrifugação; • Quantificação. Conheça a proteína de interesse Estabeleça a melhor técnica de extração 28 28 2/4/20 8 Preparação da amostra e extração de proteínas • Lise mecânica; • Sonicador; • Triturador; • Lise por agentes químicos; • Detergentes presentes nos tampões de extração; • NP-40; • RIPA. 29 29 Extração de proteínas • RIPA (1x); • Rompimento de membrana; • Desnaturação de quinases; • Coquetel inibidor de protease; • Inibidor de Serinas, treoninas, tirosinas fosfatases; • PMSF: • Inibidor de Serinas; • Ortovanadato de sódio: • Inibidor de ATPases, fosfatases, tirosinas fosfatases. MANTER SEMPRE EM GELO 30 30 Quantificação de proteínas • Curva-padrão de BSA; • Métodos de quantficação: • Lowry; • Bradford; Redução do reagente fosfomolibdato- fosfotungstenato no reagente folin 620 nm 31 y = 0.1397x + 0.0594 R² = 0.9966 0. 0000 0. 1000 0. 2000 0. 3000 0. 4000 0. 5000 0. 6000 0 0. 5 1 1. 5 2 2. 5 3 3. 5 [ ] BSA Ab s Reação do cobre com a proteína, em meio alcalino, com posterior redução do reagente fosfomolibdato-fosfotungstenato em folin trosina e triptofano 31 DC™ Protein Assay 32 Bio-Rad Protein Assay 32 2/4/20 9 33 Equação da reta [ ] proteína da amostra (ug/ul) Quanto de proteína irá aplicar? 5-50 ug y = 0.1397x + 0.0594 R² = 0.9966 0. 0000 0. 1000 0. 2000 0. 3000 0. 4000 0. 5000 0. 6000 0 0. 5 1 1. 5 2 2. 5 3 3. 5 X= [ ] prot Y= media da abs de cada amostra Que volume aplicar? Amostra 80% Tampão (5x) 20% 33 Desnaturação das amostras 34 Os anticorpos reconhecem uma pequena porção da proteína de interesse, conhecida como epítopo, presente dentro da conformação tridimensional de uma proteína Desdobramento ou desnaturação Tampão de amostra + Aquecimento (100 °C) 34 35 } Tampão de amostras ou de “carregamento” (5x): } Glicerol – 5 mL; } Tris HCl pH 6,8 – 0,3786 g; } B-mercaptoetanol – 1 mL; } Azul de bromofenol – 0,05g; } SDS – 1g; } H2O qsp – 10 mL. Aumento da densidade e acelerar a migração da solução Marcador detergente aniônico redução de pontes de dissulfeto manter constante o pH das soluções 35 36 36 2/4/20 10 Eletroforese SDS-Page 37 • Corrente elétrica em uma matriz de separação sólida onde a amostra está inserida; • Gel de poliacrilamida; • Marcador de peso molecular. 37 Gel de poliacrilamida 38 • Escolha do tamanho dos poros; • Concentrações dos géis à 5-20%; • Gel de empilhamento (5%); • Gel de separação (6-20%): Quanto menor a proteína maior o percentual do gel 38 39 39 O que compõe um gel de eletroforese? Gel de poliacrilamida 40 • H2O • Acrilamida 30%: • Acrilamida (linear) + bis acrilamida (formato de T) • Tris HCl • SDS 10% • Poliacrilamida persulfato de amônio (APS) 10% • Tetrametlltlenodiamino (TEMED) Confere carga negativa às proteínas, facilitando a separação por peso molecular Formação de uma rede Agente oxidante que inicia o processo de polimerização da acrilamida, auxiliando na formação da rede Estabilizador de radicais livres formados a partir do APS Manutenção do pH e auxílio na força de migração e na estabilidade da acrilamida 40 2/4/20 11 41 - Tampão de eletroforese – TGS 1x Tris-Base;Glicina; SDS. - Corrida: 100 a 150 V / Amperagem livre - Tempo: 1h 40 min 41 42 Nitrocelulose PVDF Menor custo Alta capacidade de ligação a proteínas Pouca marcação inespecífica Fisicamente forte Fácil de bloquear Altamente hidrofóbicas (precisam ser ativadas com metanol, isopropanol ou etanol 95% ) Fisicamente frágil Permitem repetidos Strippings Membranas: • Interações hidrofóbicas. Transferência para membrana 42 Transferência para membrana 43 • Transferência úmida: • Menos propensa a falhas; • Evita ressecamento da membrana. Wet Semi-dry Dry Best for proteins >100kDa Quick Even quicker 43 Transferência para membrana 44 Montagem do sanduíche: esponjas papéis de filtro gel membrana papéis de filtro esponjas Garantir a ausência da formação de bolhas de ar entre gel e membrana 44 2/4/20 12 Transferência para membrana 45 • Tampão de transferência: • Tampão de glicina (TG) – 100 mL; • Metanol – 200 mL; • H2O destilada – 700 mL. • Tempo: 1h 20 min (proteínas de até 200 kDa); • Amperagem: 0,4 mA Membranas podem ser guardadas na geladeira em TBS para se proceder à imunodetecção no dia seguinte (máximo em 1 semana, idealmente 1 a 3 dias) 45 Transferência para membrana 46 As proteínas foram transferidas?? Ponceau staining (reversible) Marcador 46 Bloqueio 47 Bloqueio de ligação inespecífica; Evitar interações entre a membrana e o antcorpo; BSA ou leite em pó sem gordura (5%), com uma porcentagem mínima de Tween 20 (0,1%) – TBST 1x 1 h 47 Reação Antígeno-Anticorpo 48 48 2/4/20 13 Reação Antígeno-Anticorpo 49 Direto Indireto 49 Procedimento de lavagem de membranas 50 • Uso de TBST e TBS; • Tris HCl • NaCl • pH 7,5 • Add Tween 20 0,1% • Remoção de anticorpos não ligados 50 Revelação 51 Incubação com substrato que reage com a enzima reveladora ligada ao anticorpo secundário. 51 Revelação 52 Ex.: AP – fosfatase alcalina Funciona por catalisação da fosfatase alcalina (AP), um substrato incolor BCIP será convertido em um produto azul. • Conversão do corante solúvel em insolúvel, com diferente coloração, precipitando próximo à enzima, colorindo a membrana; • Análise – densitometria ou espectrofotometria 52 2/4/20 14 Revelação 53 • Método mais sensível; Ex.: Detecção por HRP Incubação com substrato luminescente (luminol) que é oxidado por peroxidase e emite luminescência; • Revelação e análise: filme fotográfico ou câmera de CCD; densitometria 53 Revelação 54 • Método mais sensível; Ex.: Alexa 488 Incubação com sonda marcada, a qual é excitada por luz; Emissão e excitação detectada por um fotossensor (Câmeras CCD) 54 "house-keeping proteins" 55 • Diferença entre amostras? - é real? • Normalize cada amostra com base no controle; • Quantificação – ImageQuant software • Possíveis controles- tubulina, Beta-actina, GAPDH. 55 56 Problemas comuns Non specific bands Probably too much antbody Or insufficient blocking High background Probably too much antibody Or insufficient blocking Or insufficient washing Blotchy transfer Air bubbles between gel and membrane Incomplete transfer Transfer time too short Transfer current too low 56 2/4/20 15 Western Blot vAplicações • Diagnóstico de HIV 57 Western Blot vAplicações • Diagnóstico de HIV Fonte: http://telelab.aids.gov.br/moodle/pluginfile.php/22172/mod_resource/content/3/HIV%20-%20Manual%20Aula%2011.pdf 58 vAplicações 59 Vamos analisar? 60 60 2/4/20 16 Análise 61 61 62 62 63 63 64 64 2/4/20 17 65 65 66 Como avaliar a significância?? Coeficiente de variação?? ANOVA + pos hoc??? - A low CV value indicates low signal variability and high precision of measurement. - A larger CV indicates greater variation in signal and reduced precision 66 67 QUESTÕES (CESPEUnB-2010) Considerando, ainda, as metodologias de biologia molecular, assinale a opção correta. A. A técnica de Northern blotting é utilizada para analisar DNA por meio de uma sonda. B. O método Southern blotting é utilizado para a análise de mRNAs transferido de um gel para um suporte específico. C. O termo clonagem de DNA se refere ao ato de produzir várias cópias exatas de uma molécula, não sendo utilizado na amplificação de sequências. D. Ao se cortar o DNA genômico aleatoriamente, serão observados genes em todos os fragmentos. E. A endonuclease de restrição, uma das principais ferramentas da tecnologia do DNA recombinante, corta a molécula de DNA em sequências específicas. 68 2/4/20 18 (FIOCRUZ, 2010) Num estudo para verificar se a espécie “A" de bactéria apresenta e expressa um gene similar ao gene tox da espécie “B", seria correto afirmar que: A. A obtenção de um produto de PCR amplificado a partir de iniciadores para tox da espécie “B" comprova a presença de um gene tox sendo expresso na espécie “A“. B. Uma hibridação tipo Southern-blot com sonda tox marcada empregando amostras de DNA total da espécie “A", indicaria que de fato este gene é expresso na espécie “A". C. Uma hibridação tipo Northern-blot com sonda tox marcada empregando amostras de RNA total da espécie “A", indicaria que de fato este gene é traduzido na espécie “A". D. Uma hibridação tipo Southern-blot com sonda tox marcada com DNA total, indicaria que um DNA similar a este gene está presente em “A" sem informação sobre transcrição ou tradução do mesmo. E. Uma hibridação tipo Western-blot com sonda tox marcada empregando amostras de DNA total da espécie “A" indicaria que um DNA similar a este gene está presente no genoma da espécie “A". 69 (IFTO - 2016) As técnicas de hibridação Northern Blotting, Southern Blotting e Western Blotting permitem estudar respectivamente: a) RNA, DNA e Proteínas b) DNA, RNA e Proteínas c) RNA, Proteínas e DNA d) DNA, Proteínas e RNA e) Proteínas, RNA e DNA 70 (ESAG – 2004) Southern Blot é uma das técnicas mais importantes para a detecção de seqüências específicas de DNA. Assinale a alternativa correta, em relação a essa técnica: A. A principal diferença entre as técnicas Southern blot e Northern blot, é que a primeira utiliza gel de poliacrilamida e, a segunda, gel de agarose. B. Depois de separadas por eletroforese, em gel de poliacrilamida, as bandas são cuidadosamente cortadas e transferidas para uma membrana de nitrocelulose, onde são hibridizadas com sondas específicas e coradas com brometo de etídio para serem visualizadas sob UV. C. Fragmentos de DNA são separados por eletroforese em gel de agarose e tratados com o intercalante brometo de etídio, podendo, assim, serem visualisados sob luz ultravioleta antes de serem hibridizados em papel de nitrocelulose. D. A técnica de Southern blot não é sensível o suficiente para detectar polimorfismos que determinam alterações de clivagem, quando as alterações são muito pequenas. 71 Uma catástrofe natural ocorreu numa cidade, atingindo uma maternidade e fazendo com que alguns bebês desaparecessem. Um dos recém-nascidos foi encontrado sem identificação, dias depois. Cinco casais alegaram serem os pais dela. Para esclarecer a dúvida, foi realizado o teste de “paternidade”. Baseado na figura abaixo, responda: A) Qual a técnica empregada para obtenção das bandas da imagem? B) Qual dos casais corresponde aos pais do bebê desaparecido? Figura 1: membrana de nitrocelulose contendo fragmentos de DNA dos supostos pais e da criança. Fonte: adaptado de http://tecnologiasrelacionadasaodna.blogspot.com.br 72 http://tecnologiasrelacionadasaodna.blogspot.com.br/ 2/4/20 19 (UnB – CESPE – 2007) Considerando os princípios da técnica de northern blot e sua aplicação dentro da biologia molecular, julgue os itens seguintes. Na técnica de northern blot, são empregados géis de agarose na presença de agentes desnaturantes. C. Certo E. Errado 73 OBRIGADO! Dr. Daniel Pascoalino Pinheiro E-mail: daniepascoalino@gmail.com 74
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