parasitologia relatorio

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1- Técnica de Hoffman, Pons e Janer ou Lutz ou  método de sedimentação espontânea:
Técnica em que detecta a presença de ovos pesados nas fezes, faz-se uma mistura da amostra das fezes com água corrente homogeneizando bem, logo após é feito a filtração com ajuda de um coador ou gaze e deixa em repouso, é preciso trocar a água do sobrenadante até que fique translúcida, esperar até que forme um sedimento no fundo do cálice , logo após faz uma coleta desse sedimento com a pipeta de Pasteur para a lâmina e faz o esfregaço, para ser feita análise, após a coloração com lugol é possível verificar a presença de cistos de protozoários e larvas de helmintos. Pesquisa de ovos e cistos em fezes, especialmente para pesquisa de Schistosoma mansoni.
2- Método de Blagg ou MIFC- éter – mertiolate - sedimentação por centrifugação
Técnica que detecta larvas, ovos mais leves de helmintos e cistos de protozoários conservados. Colocar as fezes frescas em conservador MIF por meses, filtrar com gaze, transferir mais ou menos 2ml do filtrado para um tubo e acrescentar 5ml de éter sulfúrico/ sistema éter mertiolate, agitar e centrifugar por um minuto, desprezar o liquido que fica em cima e acrescentar ao tubo gotas de lugol , levar para lâmina e examinar. 
3- Método de Ritchie ou formol – éter centrifugação
Método que visualiza cistos de protozoários e ovos de helminto, principalmente para detecção de oocistos de coccídeos: Isospora belli, Cryptosporidium sp e Ciclospora sp. Pega-se 5g de amostra com 10ml de agua, logo após filtra utilizando o funil de vidro dentro do tubo cônico, leva a centrifuga por dois minutos, descarta o sobrenadante, repete esse processo até que o sobrenadante fique límpido , acrescenta 10ml de formol a 10% , misturar e deixa em repouso por no máximo 20 minutos de água outra vez e leva a centrifuga por mais dois minutos, adiciona 2ml de éter, homogeneíza e leva a centrifuga, descarta o sobrenadante e com uma pipeta coletar amostra do sedimento, colocar na lamina com gotas de lugol e analisar no microscópio.
4 - Método de Willis (Solução saturada de NaCl)
Método que tem como fundamento a flutuação utilizando soluções de densidade elevada (solução saturada de NaCl 30%) com isso os ooscistos e ovos de densidade menor que a solução tendem a flutuar, usada para identificação de ovos de helmintos, ancilostomídeos e cistos de protozoários. Colocar a amostra fecal em um recipiente, homogeneizar com solução saturada de NaCl , completar com água, transferir pra o tubo de centrifuga até que a formação do menisco positivo, tampar com uma lamínula até que os ovos flutuem e sejam aderidos a manínula passados 15 munitos , colocar a lamínula na lamina de microscopia para análise. 
5 - Método de Faust (Solução de Sulfato de Zinco)
Parte do mesmo princípio do método de Willis , com a diferença que substitui a solução saturada de cloreto de sódio pela solução de sulfato de zinco, colocar em centrifuga por um minuto e repetir a operação até o sobrenadante ficar límpido, adiciona a solução de sulfato de zinco, coloca novamente em centrifuga até a formação de uma película ao meio, pega uma alça de platina e coletar uma amostra da película e colocar na lamina de microscopia , coloca uma lamínula por cima e leva ao microscópio. Este procedimento simples e eficiente está indicado para pesquisa de ovos com densidade especifica baixa como os de Ancilostomídeos.
6 - Método de Baermann-Moraes
Este método é baseado no hidro-termo-tropismo positivo das larvas pela ação da gravidade. É um método seletivo para pesquisa de larvas e não específico, pois podemos encontrar cistos e ovos de outros parasitos. Indicado para a pesquisa de larvas de Strongyloides stercorales e de Ancilostomideos. Aquecer a água a 45º , colocar amostra em um funil com gase e verter a agua aquecida, aguardar por uma hora, depois foi a coleta do liquido (amostra + água), em um tubo de ensaio levar para centrifuga, pegar uma pipeta de Pasteur e retirar amostra do fundo do tubo, levar até a lamina do microscópio, colocar uma gota de lugol para facilitar a identificação da larva.
7 - Método de Rugai (isolamento de larvas)
Método pelo mesmo principio do Método de Baermann, só que mais simplificado, Permite detectar larvas vivas, estimuladas pelo calor brando a 45º. Pega-se o vidro da amostra , coloca-se as gases em cima do próprio enrolando fazendo uma “trouxinha”, logo após coloca-se de ponta a cabeça dentro de um Becker e coloca agua quente a 45º e deixa por uma hora, logo depois com a pipeta de Pasteur, retirar uma amostra do final e colocar na lamina com uma gota de lugol, levar ao microscópio.
8 - Método de Swab ou fita anal para oxiúros
O swab anal detectar ovos e fêmeas de Enterobius vermicularis (Oxiurus) da região perianal é o método mais eficaz para diagnosticar essa parasitose. Como a postura dos ovos pelas fêmeas desse parasita não é feita no intestino, e, sim, na região perianal, o encontro de ovos nas fezes se mostra puramente acidental ocorre em somente 5 a 10% dos indivíduos infectados. Para demonstrar a infecção, precisa-se coletar de 3 a 6 amostras de material, em dias consecutivos. A parasitose por Enterobius é extremamente comum em crianças e incide com mais freqüência em mulheres que em homens. Pela manhã antes do paciente fazer a higiene, fixar sobre um tubo coletor um durex pela parte externa do tubo e afastar os glúteos do paciente e encostar rápida e firme a fita adesiva sobre o ânus, retirar a fita e colocar na lamina para microscopia. 
9 - Método de Kato-Katz original
Teste qualitativo-quantitativo, permite revelar ovos de helmintos presentes nas amostras de fezes, tais como: Ascaris, Schistosoma, ancilostomídeos, Trichuris, Taenia e com menos frequência os de Enterobius e Strongyloides. Colocar no papel semipermeável mergulhados em solução verde malaquita ( glicerina + agua + corante verde malaquita) por 24 horas, , colocar sobre um papel amostra de fezes a ser examinada, compactar as fezes com um pedaço de tela metálica, com auxilio de um palito retirar um pouco da amostra e colocar em um orifício de 6mm de diâmetro de um cartão retangular de plástico colocado em uma lamina de microscopia , cobrir com uma lamínula de papel celofane e inverter a lamina sobre a folha de papel e comprimir, aguardar duas horas e contar todos os ovos. O número de ovos encontrados no esfregaço fecal, multiplicado por 23, corresponderá ao número de ovos por grama de fezes.
10- Gota espessa 
A gota de sangue é colocada no centro de uma lâmina bem limpa e desengordurada, colocar gota de sangue e fazer movimento para cima baixo e lados, fazendo o formato de um quadrado, cobrir com uma lamínula e examinar ao microscópio. Poderão ser vistos parasitos vivos ou mortos, podem apresentar diagnostico de malária.
REFERÊNCIAS
Aula prática de parasitologia - https://edisciplinas.usp.br/pluginfile.php/
4273629/mod_resource/content/1/Aula%20Pratica%20Tecnicas%20Parasitologicas_2018.pdf
BARBOSA, Constança S. et al. Controle de qualidade das lâminas pelo método Kato-Katz para o diagnóstico parasitológico da esquistossomose mansônica. J. Bras. Patol. Med. Lab. [online]. 2017, vol.53, n.2, pp.110-114. ISSN 1678-4774
Cursos Aprendiz- https://www.cursosaprendiz.com.br/metodos-para-o-exame-parasitologico-de-fezes/ acesso em 08/11/2020
DE CARLI, G. A. Parasitologia clínica: seleção de métodos e técnicas de laboratório para o diagnóstico das parasitoses humanas. 2ª ed. São Paulo: Atheneu, 2007.
Pesquisa de oxiúros- https://www.laboratoriobehring.com.br/
pdfs/?id=47 acesso em 08/11/2020