Métodos coprológicos

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�ielly Fernanda da Silva
Métod�� coprológic��
Importância: A partir da análise das fezes
conseguimos investigar de forma precoce
diversas doenças e sintomas causadas por
parasitas, como alteração hepática e
sangramento gastrointestinal.
Exame parasitológico de fezes
Etapas: Detecção e identificação de
macroparasitos (Macroscópica) e
identificação da existência de cistos e
trofozoítos de protozoários ou larvas e ovos
de helmintos (Microscópica)
Orientações para realizar a coleta
1. Não contaminar fezes com urina ou
água do vaso sanitário
2. Defecar em local limpo e seco,
forrado com papel ou direto no
frasco de coleta
3. Coletar o material com o frasco de
boca larga fornecido pelo
laboratório
4. Passar, com auxílio da espátula, as
fezes para o frasco plástico de 80
ml, até preencher⅓ do seu volume
5. Colocar nome do paciente no frasco
6. Se tiver diarreia, muco, sangue, é
importante que esta parte -
relevante para o exame - seja
igualmente coletada
7. Se tiver suspeita de infecção
intestinal, escrever "precauções" no
frasco
8. Levar material para o laboratório o
mais rápido possível. Se a coleta foi
feita à noite, conservar na
geladeira
Métodos usados
Método de Hoffman, Pons e Janer
- Conhecido como método de Lutz ou
sedimentação espontânea
- Fácil realização e baixo custo
- Pesquisa de ovos e larvas de
helmintos e cistos de alguns
protozoários, como o da Giardia
Lamblia e Entamoeba Histolytica
Material necessário: Bastão de vidro,
Cálice (200-250ml), frasco de borel, Gaze,
Lâminas, Lamínulas, Microscópio, pipeta de
1ml, recipiente para as fezes, solução de
lugol
Técnica
1. Colocar 2g de fezes no frasco de
Borrel + 25 ml de água filtrada ou
destilada
2. Transferir filtração da solução para
cálice cônico e colocar a gaze
dobrada
3. Lavar gaze com água até cálice
ficar quase cheio
4. Deixar material formado em
repouso por 2h para sedimentar
5. Se o sobrenadante estiver limpo
passar para a próxima etapa, caso
esteja turvo → Descartar líquido
com cuidado, para que o sedimento
não se perca ou mobilize e
acrescentar água novamente →
deixar em repouso por mais 1h
6. Coletar sedimento
a. Técnica 1: Desprezar fluido
sobrenadante com cuidado
→ Homogeneizar o
sedimento até conseguir
uma gota de sedimento
b. Técnica 2: Inserir pipetta no
cálice até o fundo → pegar
uma gota de sedimento →
Retirar pipeta do cálice
7. Depositar sedimento em uma
lâmina, colocar lugol →
Homogeneização → colocar
lamínula → análise microscópica
Método de Faust
- Também conhecido como método
de centrifugação-flutuação
- Utilizado para concentração de
ovos leves de helmintos e cistos de
protozoários
�ielly Fernanda da Silva
Materiais necessários: Alça de platina,
bastão de vidro, lâminas, lamínulas, frasco
de Borrel, gazes, microscópio,, pipetas de
1ml, tubo cônico, solução de lugol e solução
de sulfato de zinco (ZnSo4) a 33%.
- A solução de lugol é constituída
por: Cristal de iodo (5g), Iodeto de
potássio (10g) e água destilada
(100ml)
Técnica
1. Dissolver 5g de fezes em 10ml de
água, utilizando o bastão de vidro
2. Filtrar suspensão formada em gaze
dobrada
3. Centrifugar a amostra (1500 rpm
em 2 minutos)
4. Desprezar sobrenadante e, depois,
suspender resíduo em 10 ml de
água
5. Repetir passo 3 e 4 até que
sobrenadante se torne claro
6. Adicionar 10 ml da solução de
ZnSO4
7. Homogeneizar e centrifugar
material (1500 rpm por 2 min)
8. Usar alça platina para recolher
película superficial e,
posteriormente, colocá-la na lâmina
9. Adicionar lugol e cobrir com
lamínula → Verificar no
microscópio
Método de Baermann-Moraes
- Importante para identificar larvas de
Strongyloides stercoralis
- É um método que detecta larvas
vivas, por meio do hidrotropismo
positivo das larvas
Material necessário; Água aquecida à 45°,
espátula de madeira, funil, Gaze cirúrgica,
lâmina, lamínula, microscópio, solução de
lugol, tubo de borracha com pinça metálica
- A solução de lugol tem a mesma
composição do método de Faust
Técnica
1. Encher funil com água a 45°
2. Coletar 8-10g de fezes e colocar sobre
gaze dobrada em 4, com a espátula
de madeira
3. Adaptar gazes sobre funil para que
as fezes entre em contato com a
água sem que este fique submerso
4. Deixar 1 h em repouso
5. Usar a borracha pinçada para coletar
5-7 ml da água do fundo do funil
6. Centrifugar fluido obtido (1000rpm/1
minuto) e depositar sedimento na
lâmina
7. Acrescentar lugol e cobrir com
lamínula → examinar no microscópio
Método de Kato kaz
- Investiga a presença de ovos de
Schistosoma Mansoni e, menos
frequentemente, de outros
helmintos
- Técnica possui menor
reprodutibilidade e costuma ser
usado como método quantitativo
Material necessário: Lâminas, palitos,,
papel celofane previamente embebido em
solução verde malaquita, papel higiênico
- A solução verde malaquita é
composta por: Glicerina (100 ml),
verde malaquita 3% (1 ml) e água
destilada (100 ml)
Técnica
1. Colocar material fecal sobre o
papel higiênico
2. Comprimir parte superior das fezes
com uma tela de 200 nm, a qual
possibilita a passagem de ovos de
helmintos e estruturas menores que
eles
3. retirar as fezes que passaram pela
tela e com ajuda do coletor passar
para cartão retangular/placa
perfurada (possui um orifício de
6mm de diâmetro onde as fezes vão
ser colocadas)
�ielly Fernanda da Silva
4. Colocar em uma lâmina de
microscopia
5. Quando preencher o orifício, tirar
cartão com cuidado, deixando as
fezes na lamina
6. Cobrir fezes com celofane,
comprimindo a lâmina, após sua
inversão, contra uma folha de papel
higiênico
7. Aguardar 1-2h e examinar no
microscópio
8. Número de ovos tem que ser
multiplicado por 24 para obter o
número de ovos por grama de fezes
Método de Graham
- Utilizado para a pesquisa de ovos
de Taenia saginata, Taenia Solium
e, principalmente, Enterobius
vermicularis.
- Procedimento feito de manhã, antes
do banho
Material necessário: Lâminas, microscópio,
tubo de ensaio, fita adesiva transparente
Técnica
1. Pegar 8-10 cm de fita adesiva
transparente
2. Colocar fita sobre o tubo de ensaio
com parte adesiva sem estar em
contato com a parede do tubo
3. Colocar fita na região perianal,
várias vezes
4. Colocar fita sobre uma lâmina,
como se fosse uma lamínula
5. Examinar fita no microscópio