Projeto de microbiologia

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UNIVERSIDADE FEDERAL DE SÃO PAULO 
 
Campus Parque Tecnológico 
Interdisciplinar em Ciência e tecnologia-Trajetória: Biotecnologia 
 
 
 
 
 
 
 
AVALIAÇÃO DA QUALIDADE MICROBIOLÓGICA DE ÁGUAS E 
SUPERFÍCIES DE BEBEDOUROS DE PARQUES DE SÃO JOSÉ DOS 
CAMPOS 
 
 
 
 
 
 
 
LUCAS MATHEUS ALEIXO 
 
 
ORIENTADOR(A):ELISA ESPOSITO 
 
 
 
 
 
SÃO JOSÉ DOS CAMPOS 
JULHO DE 2021 
 
 
 
1 
 
 
 
Resumo 
A qualidade da água é uma questão de saúde pública e a segurança dos consumidores 
deve ser garantida através das especificações que determinam as condições favoráveis 
para consumo. 
Os parques públicos das cidades são uma ótima escolha para quem deseja ter uma vida 
saudável, ou para um lazer em família. Habitualmente nesses locais existem bebedouros 
para o consumo de água, e infelizmente, é um fator de fácil acesso para a transmissão 
de microrganismos patogênicos. É importante a análise de microbiotas patogênicas para 
identificação de doenças causadas por esses seres. Tornando assim, possível a 
identificação 
de gêneros ou espécies de bactérias de bebedouros públicos dos parques das cidades. 
Esse projeto de pesquisa tem como principal objetivo avaliar condições higiênico-
sanitárias de águas e superfícies de bebedouros presentes no bebedouro do Parque da 
Cidade Roberto Burle Max localizado na região norte de São josé dos Campos e no 
bebedouro do Parque Santos Dumont localizado na região central de São josé dos 
Campos, tendo em vista, um informativo para que as pessoas conscientizem órgãos 
públicos para um saneamento adequado do local. As análises consistem em pesquisa de 
coliformes totais e termotolerantes pela Técnica do Número Mais Provável, presença ou 
ausência de Escherichia coli, contagem de bactérias heterotróficas, utilizando-se a 
técnica de plaqueamento em profundidade em agar padrão para contagem e 
quantificação de bolores e leveduras pela técnica de plaqueamento em superfície em 
agar Sabouraud. 
 
ABSTRACT 
Water quality is a public health issue and consumer safety must be guaranteed through 
specifications that determine favorable conditions for consumption. Public parks in cities 
are a great choice for those who want to have a healthy life, or for family leisure. Usually 
in these places there are drinking fountains for water consumption, and unfortunately, it is 
an easily accessible factor for the transmission of pathogenic microorganisms. It is 
important to analyze pathogenic microbiota to identify diseases caused by these beings. 
 
 
2 
 
 
 
This makes it possible to identify of genera or species of bacteria from public drinking 
fountains in city parks. This research project has as main objective to evaluate the 
hygienic-sanitary conditions of water and surfaces of drinking fountains present in the 
drinking fountain of Parque da Cidade Roberto Burle Max located in the northern region 
of São José dos Campos and in the drinking fountain of Parque Santos Dumont located 
in the central region of São Paulo. São José dos Campos, with a view to providing 
information for people to make public bodies aware of the proper sanitation of the place. 
The analyzes consist of search for total and thermotolerant coliforms by the Most Probable 
Number Technique, presence or absence of Escherichia coli, counting of heterotrophic 
bacteria, using the technique of deep plating in standard agar for counting and 
quantification of molds and yeasts by surface plating technique on Sabouraud agar. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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LISTA DE ILUSTRAÇÕES 
 
 
Figura 1: Esquema ilustrativo da coleta com swab em superfície..............................pg 09 
Figura 2: Esquema ilustrativo da diluição em série das amostras de água...............pg 11 
Figura 3: Técnica NMP para coliformes totais e termotolerantes...............................pg 11 
Figura 4: Esquema do procedimento de análise para bactérias heterotróficas em 
águas..........................................................................................................................pg 12 
Figura 5: Ilustração do processo realizado para análises presuntivas de coliformes totais 
e termotolerantes em superfície..................................................................................pg13 
Figura 6: Técnica realizada para bactérias heterotróficas em superfície...................pg 14 
Figura 7 : Procedimento de contagem de bolores e leveduras em superfície...........pg 15 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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Sumário 
1. INTRODUÇÃO............................................................................................................05 
2. OBJETIVOS................................................................................................................08 
2.1 Objetivos Gerais.....................................................................................................08 
2.2 Objetivos específicos.............................................................................................08 
3. MATERIAIS E MÉTODOS.........................................................................................08 
3.1 Coleta das amostras de água e da superfície do bebedouro..............................08 
3.2 Análises Microbiológicas da Água .......................................................................09 
3.2.1 Coliformes Totais e Termotolerantes................................................................09 
3.2.2 Contagem de Bactérias Heterotróficas............................................................11 
3.3 Análises Microbiológicas da Superfície do Bebedouro......................................12 
3.3.1Coliformes Totais e Termotolerantes (NMP)......................................................12 
3.3.2 Contagem de Bactérias Heterotróficas..............................................................13 
3.3.3 Contagem de Bolores e Leveduras....................................................................14 
4. CRONOGRAMA.........................................................................................................15 
5. CONSIDERAÇÕES FINAIS.......................................................................................16 
BIBLIOGRAFIA ..............................................................................................................16 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
5 
 
 
 
INTRODUÇÃO 
 
A água é um elemento indispensável para a vida na Terra, pois é o solvente universal 
da biosfera e permite que inúmeras reações ocorram na natureza e nos seres vivos1. A 
água denominada potável corresponde à água doce disponível para consumo humano, 
após adequação de suas propriedades físico-químicas e biológicas. Esta não deve 
apresentar alterações físico- químicas e biológicas fora do estabelecido pela legislação, 
além de mudanças das suas características físicas como cor, odor, sabor e material em 
suspensão(FERREIRA FS, 2017, BARROS FGN, 2008, OLIVEIRA EM, 2018. 
Fatos históricos mostram que algumas epidemias globais que atingiram a 
população humana estão relacionadas com a água contaminada por micro-
organismos, causando doenças como a cólera e a enterocolite( OLIVEIRA AP., 
2016). 
A qualidade da água tornou-se uma questão de saúde pública no final do século XIX 
e início do século XX, devido à compreensão entre a relação água contaminada e as 
doenças. As doenças transmitidas pela água são caracterizadas principalmente pela 
ingestão de microrganismos patogênicos de origem entérica, animal ou humana, 
transmitidos basicamente pela rota fecal-oral (BERTAGNOLLI, et al., 2003; SILVA, 
ARAÚJO, 2003; LIBÂNIO; CHERNICHARRO; NASCIMENTO, HELLER, 2005; 
TORTORA; FUNKE; CASE, 2005). 
Dados da Organização Mundial de Saúde (OMS) revelam que 80 % das doenças nos 
países em desenvolvimento são causadas pela água contaminada. A contaminação 
microbiana dos principais sistemasurbanos tem o potencial de causar grandes surtos de 
doenças transmitidas pela água, portanto garantir a qualidade de tais sistemas é uma 
prioridade (FERNANDEZ; SANTOS, 2007; COELHO et al., 2007; WHO, 2008). 
A qualidade da água é de responsabilidade do estado e da nação, devendo o primeiro 
assegurar que seja feita a gestão adequada dos recursos hídricos, e o segundo de usar 
o recurso conscientemente. A garantia de segurança e de potabilidade da água depende 
do funcionamento adequado de diversas etapas no processo de abastecimento, que vão 
desde o tratamento até a distribuição e, caso alguma delas apresente falhas, pode 
desencadear um processo de contaminação (BRASIL, 2011). 
 
 
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Dentre os principais usos da água, o abastecimento público é o uso mais nobre 
devendo esta ser considerada potável, ou seja, devem atender aos parâmetros 
microbiológicos, físicos, químicos e radioativos definidos pela legislação vigente e não 
não oferecer riscos à saúde do consumidor (SPERLING, 1996; BRASIL, 2011). 
A Portaria n° 2.914, de 12 de dezembro de 2011, do Ministério da Saúde, 
estabelece como padrão de potabilidade, para a água destinada ao consumo humano, 
ausência de bactérias do grupo dos coliformes termotolerantes ou Escherichia coli. Já 
em relação às bactérias heterotróficas, recomenda-se que não ultrapasse o limite de 
500 UFC/mL ( BRASIL, 2011). 
Há dois grupos de coliformes. Os coliformes totais são uma classe de bactérias 
que possui como principal característica a fermentação de lactose com produção de 
ácidos, aldeídos e gás a 35°C entre 24 e 48 horas. Essas bactérias incluem 
principalmente os gêneros Klebsiella, Enterobacter e Citrobacter. Os coliformes 
termotolerantes são bactérias de um subgrupo de coliformes totais que possuem a 
capacidade de fermentar lactose a 44-45°C em 24 e 48 horas, sendo importantes 
indicadores da qualidade higiênico-sanitária. A principal espécie desse grupo é a 
Escherichia coli (E. coli), encontrada na microbiota intestinal humana e de animais de 
sangue quente, sendo identificada como indicador de contaminação fecal e da 
presença de patógenos entéricos em água, e, consequentemente, é utilizada como 
indicador para avaliar e monitorar as condições sanitárias de água para consumo 
(SILVA, 2017, ZULPO, 2006, ALVES, 2018). 
A utilização de testes para a determinação de indicadores de contaminação 
fecal em água é a maneira mais sensível e específica de estimar a qualidade da água, 
em relação à higiene e cuidados primários à saúde. Os métodos mais utilizados são: a 
quantificação de coliformes totais e fecais, seguida da enumeração de bactérias 
heterotróficas totais (BOMFIM et al., 2007). 
A contagem de heterotróficos, também conhecida como contagem padrão em 
placas, é um procedimento que objetiva estimar o número de bactérias heterotróficas 
na água, particularmente como uma ferramenta para acompanhar as variações nas 
condições de processo, no caso das águas minerais, ou eficiência das diversas etapas 
 
 
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de tratamento, no caso de águas tratadas. Permite ainda verificar as condições 
higiênicas em diferentes pontos da rede de distribuição. Não diferencia tipos de 
bactérias, sendo mais utilizadas para se obter informações sobre a qualidade de 
produtos, práticas de manufatura, matérias-primas utilizadas, condições de 
processamento, manipulação e vida de prateleira. Não é um indicador de segurança, 
pois não está diretamente relacionado à presença de patógenos ou toxinas, mas 
dependendo da situação, pode ser útil na avaliação da qualidade, porque populações 
altas de bactérias podem indicar dficiências na sanitização ou falha no controle de 
processo ou dos ingredientes (SILVA, et al 2010). 
 
A análise microbiológica de amostras de água proveniente de bebedouros de parques 
públicos, assim como do próprio bebedouro, é de suma importância para a sociedade, 
pois permite comprovar se a fonte de consumo está dentro dos parâmetros 
estabelecidos pela legislação vigente e verificar a potabilidade da água, como medida 
de prevenção de possível ocorrência de surtos de doenças veiculadas pela água 
contaminada por micro-organismos. 
Os bebedouros também podem ser fontes de contaminação microbiana, pois 
geralmente há contato direto entre eles e pessoas com hábitos higiênicos inadequados, 
levando à contaminação cruzada, e se os mesmos não forem devidamente e 
periodicamente higienizados também podem contribuir na transmissão de doenças 
causadas pelo consumo de água(MATA, 2020). 
Dentro deste contexto, o objetivo desta pesquisa é avaliar a qualidade 
microbiológica da água de bebedouros, disponíveis em dois parques públicos 
localizadoem São José dos Campos- São Paulo, e as condições higiênico- sanitárias 
da superfície dos mesmos, utilizando técnicas microbiológicas, além de determinar, de 
acordo com os padrões de potabilidade estabelecidos pela legislação vigente, se o 
consumo da água disponibilizada neste parque pode oferecer riscos à saúde. 
Todos os bebedouros disponíveis nos parques públicos serão amostrados. 
Para a coleta das amostras, as mãos deverão ser previamente higienizadas e todas as 
coletas serão das torneiras do bebedouro, com algodão embebido em álcool 70%, e 
 
 
8 
 
 
 
aberta por 2 minutos para vazão da água acumulada na tubulação. A seguir, um volume 
correspondente a 400 ml de água, de cada um dos bebedouros,será coletado em 
frascos de coleta, com capacidade para 500 ml, esterilizados, identificados e contendo 
solução de tiossulfato de sódio a 0,1% para neutralizar o cloro residual presente na 
água. 
 
 
 
2. OBJETIVOS 
2.1 Objetivos gerais 
Analisar a microbiota presente nas águas e superfícies dos bebedouros dos parques 
Santos Dumont e parque da cidade Robert Burle Max localizados em São josé dos 
Campos. 
2.2 Objetivos específicos 
 
• Identificar microrganismos presentes nos dois bebedouros. 
• Relacionar a presença desses microrganismos com o local. 
• Avaliar a presença de microrganismos patogênicos nas amostras. 
• As análises consistem em pesquisa de coliformes totais e termotolerantes pela 
técnica do número mais provável 
• Identificar presença ou ausência de Escherichia coli 
• contagem de bactérias heterotróficas, utilizando-se a técnica de plaqueamento em 
profundidade em agar padrão 
• contagem e quantificação de bolores e leveduras pela técnica de plaqueamento 
em superfície em agar Sabouraud. 
 
3. MATERIAS E MÉTODOS 
3.1. Coleta das amostras de água e da superfície do bebedouro 
 
 
 
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Para este estudo serão selecionados dois parques públicos (A e B) da cidade de São 
José dos Campos-SP que possuem bebedouros disponíveis para a população. 
A coleta de amostras da superfície dos bebedouros será realizada com o auxílio de swab 
estéril embebido em água peptonada 0,1 %, sendo as amostras limitadas por um gabarito 
de 100 cm2 (um quadrado de 10cm x 10cm ) para padronizar o espaço a ser realizado o 
esfregaço. Para tal, o swab foi inclinado a 30 graus e os esfregaços foram coletados em 
diferentes pontos da área limitada pelo gabarito, tanto na horizontal quanto na vertical e 
na diagonal do mesmo. A seguir, cada swab foi introduzido em um tubo de ensaio estéril 
e identificado com data, horário e local. 
Todas as amostras foram acondicionadas em caixa de isopor com gelo e 
transportadas imediatamente ao laboratório de microbiologia 
Para a coleta das amostras de água realizou-se a assepsia do local de saída 
da água com álcool 70 % e posterior escoamento da água por 3 minutos. Um volume 
de 500 mL de água foi coletado em um frasco previamente esterilizado com 0,5mL 
tiossulfato de sódio a 1,8 %. Estas amostras foram transportadas até o laboratório de 
lanálise em isopor refrigerado. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Figura 1 – Esquema ilustrativo da coleta com swab em superfície. Fonte: Autor 
 
3.2 Análises Microbiológicasda Água 
 
3.2.1 Coliformes Totais e Termotolerantes 
 
Todos os procedimentos que serão utilizados estarão de acordo com a American Public 
Health Association (APHA), descrita no Compendium of Methodos for the 
Microbiological Examination of Foods( SILVA N, 2017). 
Coletar 4 pontos diferentes, sendo em 
direções diferentes e/ou em locais 
distintos 
Água pepitonada 0,1% 
 
 
10 
 
 
 
Para análise de coliformes totais e termotolerantes, será empregada a técnica do 
Número Mais Provável (NPM). A homogeneização da amostra da água coletada de 
cada local deve ser realizada a partir da agitação de cada frasco num arco de 30º, trinta 
vezes. A seguir, as amostras de água serão submetidas a três diluições sucessivas. 
A primeira diluição consistiu em pipetar 1,0 ml da amostra de água e transferir 
assepticamente o volume pipetado para um tubo de ensaio contendo 9,0 ml de solução 
salina a 0,9% esterilizada (diluição 10-1). Na segunda diluição, deve ser transferido 1,0 
ml da diluição 10-1 para um tubo de ensaio contendo 9,0 ml de solução salina a 0,9% 
esterilizada (diluição 10-2). Na última diluição, 1,0 ml da diluição 10-2 será inoculado em 
um tubo de ensaio contendo 9,0 ml de solução salina a 0,9% esterilizada (diluição 
10-3). 
Para cada diluição da amostra, alíquotas serão inoculadas em séries de três 
tubos contendo 10 ml de caldo Lauril Sulfato Triptose em concentração dupla, três 
tubos contendo 9,0 ml de caldo Lauril Sulfato Triptose em concentração simples e três 
tubos contendo 9,9 ml de caldo Lauril Sulfato Triptose em concentração simples, 
respectivamente com 10 ml, 1 ml e 0,1 ml da amostra (teste presuntivo). Todos os tubos 
contendo o meio de cultura apresentavam tubos de Durham invertidos. Após 
homogeneização, estes foram incubados a 35ºC por 48 horas. 
Os tubos de ensaios positivos para a presença de coliformes (turvação e formação de 
gás no interior do tubo de Durham) serão selecionados para realização do teste 
confirmativo para pesquisa de coliformes totais em tubos de ensaio contendo Caldo Bile 
Verde Brilhante (VB) a 2%, com tubo de Durhan invertido, e incubação a 35°C por 48 
horas. Paralelamente, realizará o teste confirmativo para coliformes termotolerantes em 
tubos de ensaio contendo Caldo Escherichia coli (EC), com tubo de Durhan invertido, e 
incubação em banho-maria a 44ºC por 48 horas. Em ambos os testes, uma alçada do 
conteúdo do tubo positivo deve ser transferida para um tubo correspondente contendo 
o meio adequado à análise. Os testes serão considerados positivos quando 
apresentarem turvação do meio e produção de gás. 
Para os testes presuntivos negativos, com a ausência de produção de gás 
durante o período de incubação, a investigação será finalizada nessa fase e o resultado 
interpretado como negativo. 
 
 
11 
 
 
 
 
Figura 2 – Esquema ilustrativo da diluição em série das amostras de água. Fonte: Autor 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
FIGURA 3 – Técnica NMP para coliformes totais e termotolerantes 
 
3.2.2 Contagem de Bactérias Heterotróficas 
 
1 mL de amostra 
+ 9,0 ml de 
solução salina a 
0,9% 
1 mL de solução 
10-1 9,0 ml de 
solução salina a 
0,9% 
Solução a 10-1 Solução a 10
-2 
Solução a 10-3 
1 mL de solução 
10-2 9,0 ml de 
solução salina a 
0,9% 
 
 
12 
 
 
 
As amostras de água deverão ser diluídas em 9 mL de salina 0,9 % até 10-3. Após será 
utilizado a técnica de semeadura em profundidade, transferindo-se 1 mL de cada 
diluição para placas de petri estéreis, seguidos com 20 mL de ágar PCA (Plate Count 
Agar) e incubadas a 35-37°C por 24horas. O procedimento deverá ser realizado em 
duplicata. 
FIGURA 4 – Esquema do procedimento de análise para bactérias heterotróficas em águas 
3.3 Análises Microbiológicas da Superfície do Bebedouro 
 
3.3.1Coliformes Totais e Termotolerantes (NMP) 
A análise de Coliformes Totais e Termotolerantes serão efetuadas conforme 
descrito na figura 5. Para tanto, devem ser retirados 1 mL de amostra após o 
procedimento de coleta descrita no item 2.1 e colocados em tubos contendo caldo 
LST que foram incubados à 35-37 °C durante 24-48 horas após inoculação da 
amostra e então verificaremos o possível crescimento (turvação e gás) nestes tubos. 
 
 
13 
 
 
 
 
FIGURA 5 – Ilustração do processo realizado para análises presuntivas de coliformes totais e 
termotolerantes em superfície. 
 
3.3.2. Contagem de Bactérias Heterotróficas 
 
A contagem de bactérias heterotróficas deve ser procedida conforme descrito 
na figura 6. Após o procedimento de coleta descrito no item 2.1, as amostras foram diluídas 
em 9 mL de salina 0,9 % até 10-3. 
A técnica será realizada pelo método Pour plate, semeadura em profundidade. 
Para tanto serão retiradas alíquotas de 1 mL de amostra não diluída e também de cada 
uma das diluições e colocados em placas de petri estéreis nas quais serão vertidos 20mL 
de ágar PCA. O cálculo será expresso em unidades formadoras de colônias por 100 cm². 
 
 
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FIGURA 6 – Técnica realizada para bactérias heterotróficas em superfície 
 
3.3.3 Contagem de Bolores e Leveduras 
 
A contagem de bolores e leveduras deverá ser realizada de acordo com o 
esquema apresentado na figura 7. Para tanto serão retirados 1 mL de 
amostra após o procedimento de coleta descrito no item 2.1 e colocados em 
placas contendo 20mL de ágar Sabouraud pelo método de semeadura em 
superfície (Spread plate), no qual as amostras deverão espalhadas sobre este ágar 
com auxílio de uma alça de plástico estéril. 
 
 
 
 
 
 
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FIGURA 7 : Procedimento de contagem de bolores e leveduras em superfície 
 
5. CRONOGRAMA 
 
MES/ETAPAS Nov/2021 Dez/2021 Jan/2022 fev/2022 mar/2022 abr/2022 
Escolha do tema X 
Levantamento 
bibliográfico 
X X X x 
Elaboração do 
anteprojeto 
X x 
Apresentação do 
projeto 
 x 
Coleta de dados X X 
Análise dos dados X X X 
Elaboração de 
protocolos 
 X X x 
Redação do trabalho X X X 
Revisão e redação 
final 
 X X 
 
 
 
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6. CONSIDERAÇÕES FINAIS 
 
Com base nos resultados que iremos obter poderemos estabelecer se os 
bebedouros se encontram em condições sanitárias e higiênicas adequadas para 
consumo, sem trazer riscos à saúde humana. 
A positividade das amostras da água e da superfície dos bebedouros analisadas 
para coliformes totais indica a presença de matéria orgânica, presumindo-se que a 
superfície dos bebedouros não está sendo higienizada corretamente ou está sendo 
higienizada sem a periodicidade necessária, e consequentemente ocorre a 
contaminação da água. 
Os bebedouros podem ser considerados fontes diretas de contaminação através da água e 
indiretas através do contato das pessoas com o equipamento. Além de estarem expostos ao 
ambiente ou instalados no interior de sanitários, falhas na sua higienização e hábitos 
higiênicos inadequados na sua utilização contribuem para a contaminação microbiológica e 
os riscos à saúde, ao adquirir alguma doença infecciosa. Desta forma, se fazem necessários 
alguns cuidados, como, por exemplo, a constante manutenção e higienização dos 
bebedouros. 
 
 
BIBLIOGRAFIA 
ALVES SGS, ATAIDE CDG, SILVA JX. Análise Microbiológica de coliformes totais e 
termotolerantes em água de bebedouros de um parque público de Brasília, Distrito Federal. Rev. 
Cient. Sena Aires. [periódico online]. 2018 7(1): 12-17. Disponível em: 
http://revistafacesa.senaaires.com.br/index.php/revisa/article/view/298. [acesso em 11 de fev. 
022]; 
 
BARROS FGN, AMIN MM. Água: um bem econômico de valor para o Brasil e o mundo. Revista 
Brasileira de Gestão e Desenvolvimento Regional [periódico online]. 2008 4(1): 75-108. 
Disponível em: http://www.rbgdr.net/012008/artigo4.pdf. [acesso em 10 fev. 2022]; 
 
BERTAGNOLLI, S. M. M.; MEDEIROS, J. T.; TAVARES, G. M. D. ; LIMBERGER, J. 
B.; TRAESEL, A. C. Estudo decoliformes totais de fontes alternativas de água da zona rural da 
região centro do estado do Rio Grande do Sul. Saúde , 29 (1) : 97-102, 2003. 
 
BOMFIM, M. V. J.; SOEIRO, G. de O.; MADEIRA, M.; BARROS, H. D. Avaliação 
http://revistafacesa.senaaires.com.br/index.php/revisa/article/view/298
http://www.rbgdr.net/012008/artigo4.pdf
 
 
17 
 
 
 
físicoquímica e microbiológica da água de abastecimento do laboratório de bromatologia da 
UERJ. Revista Higiene Alimentar, São Paulo, v. 21, n. 152, p. 99- 103, 2007. 
 
 
BRASIL. Portaria nº 2.914, de 12 de dezembro de 2011. Dispõe sobre os procedimentos de 
controle e de vigilância da qualidade da água para consumo humano e seu padrão de 
potabilidade. Diário Oficial da União. 12 dez 2011. 
 
COELHO, D. A.; SILVA, P. M. de F.; VEIGA, S. M. O. M.; FIORINI, J. E. Avaliação da qualidade 
microbiológica de águas minerais comercializadas em supermercados da cidade de Alfenas, MG. 
Revista Higiene Alimentar, São Paulo, v. 21, n. 151, p. 88-92, 2007. 
 
FERNANDEZ, A. T.; SANTOS, V. C. dos. Avaliação de parâmetros físico-químicos e 
microbiológicos da água de abastecimento escolar, no município de Silva Jardim, RJ. Revista 
Higiene Alimentar, São Paulo, v. 21, n. 154, p. 93-98, 2007. 
 
FERREIRA FS, QUEIROZ TM, SILVA TV, Andrade ACO. À margem do rio e da sociedade: a 
qualidade da água em uma comunidade quilombola no estado de Mato Grosso. Saúde Soc. 
[periódico online]. 2017; 26(3): 822-828. Disponível 
em:http://www.scielo.br/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0104- 12902017000300822&lng=en. 
https://doi.org/10.1590/s0104-12902017166542. [acesso em 10 fev. 2022] 
 
LIBÂNIO, P. A. C.; CHERNICHARRO, C. A. L.; NASCIMENTO, N. O. A dimensão da qualidade 
de água: avaliação da relação entre indicadores sociais, de disponibilidade hídrica, de 
saneamento e de saúde pública. Engenharia Sanitária e Ambiental,10 (3): 219-228, 2055 
 
MATA TVE, CAMPOS LL. Microbiological analysis of the water and surface of troughs in a 
regional hospital of Distrito Federal – DF. Revista de Saúde - RSF. [periódico online]. 2020 
[acesso em 01 junho 2020]; 7 (1): 21-29. Disponível em: 
http://revista.faciplac.edu.br/index.php/RSF/issue/view/51/showToc. 
 
 
OLIVEIRA AP, ASSUNÇÃO DES, FERNANDES MVO, BARROS JJC. Coliformes 
Termotolerantes em Águas Pluviais Recebidas pelo Ribeirão Pirapitinga no Município de Catalão-
GO, p. 163-176. In: Estudos Interdisciplinares em Ciências Biológicas, Saúde, Engenharias e 
Gestão. São Paulo: Blucher, 2016. DOI 10.5151/9788580391619-10. 
 
 
OLIVEIRA EM, RIBEIRO DM, CRONEMBERGER MGO, CARVALHO WF, LIMA MDP, SOUSA 
KR. Análises físico-químicas e microbiológicas da água de bebedouros em escolas públicas da 
cidade de Timon – Ma. PUBVET. [periódico online].;12(5): 1-6. Disponível em: 
http://www.pubvet.com.br/artigo/4652/anaacutelises-fiacutesico-quiacutemicas-e- 
microbioloacutegicas-da-aacutegua-de-bebedouros-em-escolas-puacuteblicas-da- cidade-de-
timon-ma. [acesso em 10 fev. 2022] 
 
http://www.scielo.br/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0104-
http://revista.faciplac.edu.br/index.php/RSF/issue/view/51/showToc
http://www.pubvet.com.br/artigo/4652/anaacutelises-fiacutesico-quiacutemicas-e-
 
 
18 
 
 
 
SILVA, N. da; JUNQUEIRA, V.; SILVEIRA, N. F. A.; TANIWAKI, M. H.; SANTOS, R. F. S. dos, 
GOMES, R. A. R. Manual de métodos de análise microbiológica de alimentos e água. 4 edição. 
São Paulo: Livraria Varela, 614p, 2010. 
 
 
SILVA, R. C. A.; ARAÚJO, T. M. Qualidade da água do manancial subterrâneo em áreas 
urbanas de Feira de Santana (BA). Ciência & Saúde Coletiva, 8 (4): 1019-1028, 2003 
 
SPERLING, M. V. Noções de qualidade das águas. In: Introdução à qualidade das águas e ao 
tratamento de esgotos. 2. ed. Belo Horizonte: Departamento de Engenharia Sanitária e Ambiental 
- UFMG, v. 1. cap. 1, p. 11-50, 1996 
 
TORTORA, G. J.; FUNKE, B. R.; CASE, C. L. Microbiologia. 8ª Edição, Editora Artmed, 
2005. 
 
WHO (World Health Organization). Guidelines for Drinking-Water Quality. Geneva: WHO, 
2008 
 
 
ZULPO DL, PERETTI J, ONO LM, GARCIA JL. Avaliação microbiológica da água consumida nos 
bebedouros da Universidade Estadual do Centro-Oeste, Guarapuava, Paraná, Brasil. Semina: 
Ciências Agrárias [periódico online]. 2006; 27(1): 107-110. Disponível em: 
http://www.uel.br/revistas/uel/index.php/semagrarias/article/view/2405/2058. [acesso em 11 de 
fevereido de 2022] 
 
 
 
 
 
http://www.uel.br/revistas/uel/index.php/semagrarias/article/view/2405/2058