Endocrinologia Tecsa Laboratórios

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ÍNDICE
03. ENDOCRINOLOGIA VETERINÁRIA - A PRECIsãO E A sEGuRANçA DO
RADIOImuNOENsAIO
05. DIAGNÓsTICO DE DOENçAs ENDÓCRINAs: PROVAs FuNCIONAIs
07. OBEsIDADE CANINA
09. PRINCIPAIs ALTERAçõEs hORmONAIs Em EquINOs: CORRELAçãO 
CLíNICO – LABORATORIAL
11. hIPERPARATIREOIDIsmO sECuNDÁRIO RENAL
13. hIPOADRENOCORTICIsmO: ENFERmIDADE RARA Ou suB-DIAGNOs-
TICADA Em NOssO mEIO?
14. FuNçãO TIREOIDIANA – VALOR DO K TIREOIDEO
03. ENDOCRINOLOGIA
15 . quALIDADE DA COLETA DE 
AmOsTRAs BIOLÓGICAs Em 
mEDICINA VETERINÁRIA
13. MEDICINA VETERINÁRIA 
PREVENTIVA 17 . PARÂmETROs CLíNICO-LABO-RATORIAIs NO CãO IDOsO
17. GERIATRIA
21. DERmATITE ATÓPICA – DI-
AGNÓsTICO CADA VEZ mAIs 
COmum NOs CãEs
21. DERMATOLOGIA
23. ENTENDENDO A ALERGOLO-
GIA VETERINÁRIA
25. AsmA E BRONquITE Em CãEs 
E GATOs
23. ALERGOLOGIA
27. DIAGNÓsTICO DA LEPTOsPI-
ROsE E TOXOPLAsmOsE POR PCR 
– REAL TImE
27. BIOLOGIA MOLECULAR
29. ANEmIA hEmOLíTICA Em
CãEs E GATOs(1)
29. HEMATOLOGIA
31. mITOs E VERDADEs NO 
DIAGNÓsTICO LABORATORIAL 
DA LEIshmANIOsE VIsCERAL 
CANINA
31. LEISHMANIOSE
VISCERAL CANINA 33. APLICAçõEs DAs COLORA-
çõEs EsPECIAIs NO DIAGNÓsTI-
CO hIsTOPATOLÓGICO
36. ACNE FELINA
37. COLETA DE sANGuE PARA 
ANÁLIsEs LABORATORIAIs Em 
FELINOs
39. COLETA DE AmOsTRAs Em 
AVEs sILVEsTREs
DICAs E ORIENTAçõEs
33. PATOLOGIA 36. MEDICINA LAB. DE FELINOS 39. MEDICINA LAB. DE SILVESTRES
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Na Internet: 
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CIRCULAÇAO DIRIGIDA
A revista VetScience® Magazine é uma publicação do Grupo TECSA dirigida somente 
aos médicos veterinários, como parte do Projeto JORNADA DO CONHECIMENTO, cri-
ado pelo mesmo. Este projeto visa a universalização do conhecimento em Medicina 
Laboratorial Veterinária. A periodicidade é Bimestral, com artigos originais de pesquisa 
clínica e experimental, artigos de revisão sistemática de literatura, metanálise, artigos 
de opinião, comunicações, imagens e cartas ao editor.
Não é permitida a reprodução total ou parcial do conteúdo desta revista sem a prévia 
autorização do TECSA.
Os editores não podem se responsabilizar pelo abuso ou má aplicação do conteúdo da 
revista VetScience magazine.
Grupo TECSA – 20 anos de precisão, tecnologia e agilidade.
EXPEDIENTE
ISSN: 2358-1018
 Caros Colegas,
Neste Terceiro número da Vetscience, o TECsA laboratórios comemora o seu 20 º Aniversário. Desde o começo o TECsA já se preparava para atingir 
o posto de melhor Lab. Veterinário da América Latina! Para que isto fosse possível investimos durante anos em consultorias, equipamentos sofisticados e 
precisos, profissionalização de equipes, sistemas de garantia da qualidade, otimização de processos e, sobretudo em INOVAçãO. O TECsA Laboratórios 
tem a inovação no seu DNA. 
• Inovação na Gestão administrativo-financeira - visando maximizar e automatizar pro-
cessos. Para isto possui equipe de consultores com práticas reconhecidas mundialmente para 
otimização de recursos e procedimentos, com conseqüente diminuição de perda/retrabalho e 
assim redução de custos. Através da gestão pela excelência e por ser o TECsA hoje, o maior 
laboratório de Patologia Clínica/Anatomia Patológica Veterinária da América Latina - com 
um volume médio de 4 milhões de análises ano, conseguimos importantes negociações com 
fornecedores nacionais e internacionais. Todos estes fatores nos levaram a alcançar o melhor 
custo-benefício, mantendo qualidade Classe mundial. hoje o TECsA se encontra em um 
patamar de eficiência e oferta de exames que supera muitos laboratórios no mundo, mas com 
valores que atendem a realidade socioeconômica do Brasil. Dentro desta política sempre ficou 
claro que todos os nossos ganhos em escala iriam ser revertidos para estabelecer preços justos 
ao cliente e priorização do desenvolvimento de novas tecnologias;
• Inovação na Logística de Materiais Biológicos - A qualidade da amostra está diretamente relacionada aos padrões estabelecidos de coleta, armazena-
mento e transporte. Estes determinam a confiabilidade e garantia do resultado encontrado. sabe-se que a implantação de procedimentos padrões (POPs) é 
o primeiro passo para que haja o controle destas variáveis. O TECsA desenvolveu e padronizou o uso da exclusiva Bolsa Canguru, que estabeleceu a forma 
apropriada de envio de amostras veterinárias, sem que possíveis derramamentos contaminem os pedidos de exames. Por outro lado, após várias experiências 
com empresas especialistas em transporte de biológicos do mercado, o TECsA criou sua própria empresa de Logística – a LOGLIFE - que já nasceu 
atuando em 26 Estados e mais de 200 cidades no País. Com uma rede de funcionários próprios e com o padrão TECsA de atendimento! Na Loglife as 
inovações e os controles, gerando qualidade das amostras, são tantos que os maiores Labs. humanos se tornaram clientes Loglife!
• Inovação em Exames e Metodologias – O TECsA foi o primeiro laboratório veterinário a realizar exames com a metodologia ELIsA no segmento 
veterinário, o que gerou uma redução significativa no prazo de entrega de resultados , que antes duravam ate 20 dias. A entrada do TECsA revolucionou 
todo o mercado de análises veterinárias. Impôs um padrão de qualidade certificado (IsO9001/DNV/INmETRO, PRImEIRO DA AmÉRICA LATI-
NA) onde todos os processos e insumos são diferenciados. O TECsA sempre utilizou Kits de procedência certificada e considerados padrão–ouro no 
mundo, não aceitando utilizar kits baratos oriundos de países com histórico de baixa qualidade. Além disto, foi o TECsA quem trouxe ao Brasil os melhores 
métodos e os melhores kits para doenças que até então não eram nem diagnosticadas por aqui. Após Pesquisas e intercâmbios empresa – universidades, 
conseguimos viabilizar um menu de exames inovadores, de tal forma que hoje somente raros laboratórios dos EuA possuem a mesma gama de opções de 
diagnóstico animal que o TECsA lhes oferece. 
são 20 anos de pesquisas, estudos, intercâmbios, investimentos financeiros e ca-
pacitação em equipes. somos mais de 130 profissionais garantindo a posição que 
o TECsA conquistou e o reconhecimento que temos em todos os segmentos da 
medicina Veterinária no Brasil. mas nada disto importa se não for para lhe atender 
– colega médico veterinário – se não for para facilitar sua atuação e para lhe engran-
decer e lhe gerar orgulho em ter ao seu lado uma empresa Brasileira com qualidade 
Padrão mundial.
Dr. Afonso Perez
Diretor Executivo
Dr. Luiz Ristow
Diretor Técnico
O MELHOR CUSTO-BENEFÍCIO PARA VOCÊ, MÉDICO VETERINÁRIO
Dr. Afonso Perez Dr. Luiz Ristow
ENDOCRINOLOGIA VETERINÁRIA
A Precisão e a Segurança do Radioimunoensaio
Os animais, assim como os seres humanos, podem apresentar uma série de distúrbios hormonais que em geral são caracterizados 
por um conjunto de sinais determinando síndromes que, apenas ao exame clínico, não permitem um diagnóstico conclusivo. Portanto 
torna-se necessário tanto para fi ns diagnósticos como para avaliação do tratamento, a realização de exames laboratoriais que envol-
vem provas hormonais específi cas, além de avaliações indiretas demonstradas por provas hematológicas e bioquímicas.
A casuística de endocrinopatias abrange disfunções relacionadas principalmente às glândulas Tireóide, Adrenal e Pâncreas (endó-
crino), sendo Diabetes, hiperadrenocorticismo, hipotireoidismo e hipertireoidismo as mais frequentes doenças hormonais.
Para o diagnóstico dessas e outras enfermidades do sistema endócrino existem várias metodologias de análises e uma boa gama de 
kits. Porém, em sua imensa maioria, trata-se de Kitsp/ Lab. humano e metodologias testadas e aprovadas para análises humanas. A 
grande diferença entre as dosagens hormonais em animais e em seres humanos está na concentração de determinados hormônios e 
também na sua biodisponibilidade, o que torna a grande maioria dos kits e métodos diagnósticos dos Labs. humanos inapropriados 
para as análises hormonais em medicina veterinária .
Desde a década de 60 a metodologia de RADIOImuNOENsAIO-RIE está disponível para a medicina veterinária, por isto 
quase a totalidade dos trabalhos científi cos sobre endocrinopatias estão referenciados com dados da metodologia de RIE. Desde a 
sua implantação esta metodologia se mostrou insubstituível para o uso pelo médico veterinário, sendo infi nitamente superior aos 
métodos de quimioluminescencia e Elisa , pois apresenta leitura de níveis hormonais muito baixos – picogramas – o que não é pos-
sível em métodos que foram desenvolvidos para humanos . As características do método RIE o tornam o mais preciso e seguro para 
o diagnóstico dos hormônios seja em mamíferos, aves ou em outras espécies . Os kits de RIE são os únicos que podem ser utilizados 
para dosagem de hormônios em animais silvestres de forma confi ável. 
sua extrema precisão , aliado ao fato de poderem dosar hormônios de quase todas as espécies de animais de estimação, fi zerem com 
que este método fosse considerado o Padrão Ouro em hormonologia e até hoje insubstituível para o endocrinologista que precisa de 
dados confi áveis e precisos. 
hormônios disponíveis em metodologia RIE :
HORMÔNIOSCOD-EXAME
Avaliação Hormônios Sexuais
Avaliação da Função Tireoidiana/Paratireoidiana
Avaliação da Função Pancreática Exócrina
Avaliação da Função Adrenal
LH
Estradiol
Estradiol - RIE
Progesterona
FSH
Testosterona
293
70
635
69
275
154
TSH
T4 Total 
T4 Livre
T3 Total - - RIE
T4 Total Pós-Levotiroxina
T4 Livre - - RIE
T4 Livre Diálise – análise de 1ª escolha 
71
147
74
624
636
73
626
Cortisol Pós-supressão com Dexametasona (Basal, 4 e 8 horas) - RIE 621
Insulina72
PRAZO (DIAS)
2 dias
2 dias
3 dias
2 dias
2 dias
ENDOCRINOLOGIA
3
PERFIS FACILITADORES PRAZO (DIAS)
124- Curva glicêmica (Glicose - Até 5 determinações)
320 - Perfil Andrológico (Espermograma + Testosterona)
581 - Perfil Glicêmico (Glicemia de Jejum + Glicohemoglobina + Frutosanima + Dosagem de Insulina)
336 - Perfil Hipotireoidismo (Hemog., Colesterol, Fosf. Alcalina , TSH, T4 Livre )
334 - Perfil Hiperadrenocorticismo (Hemog., Sódio, Potássio , Uréia , Cortisol Basal)
339 - Perfil Cão Obeso (Hemog. , TSH , T4 livre , Cortisol Basal , Colesterol Total, Glicemia, Uréia e Creatinina )
332 - Perfil Geriátrico II (Hemog. ; Urina Rotina ; Glicose ; Uréia : Creatinina; T4 Livre ; TGP (ALT))
352 - Perfil Reprodutivo Patologias (Hemog., Estrógeno, Testosterona, Progesterona,Citologia Vaginal, Brucelose)
695 - Perfil Tireoidiano (T4Total;T4 Livre;TSH)
01
03
01
03
03
02
02
03
02
Equipamentos de RIE – TECSA LABORATÓRIOS
Avaliação da Função Adrenal (continuação)
Cortisol Pós-estímulo com ACTH - RIE
ACTH Hipersensível
Relação Cortisol/Creatinina Urinária
646
218
634
2 dias
COD-EXAME HORMÔNIOS PRAZO (DIAS)
ENDOCRINOLOGIA
4
1. HIPERADRENOCORTICISMO
O hiperadrenocorticismo é uma de-
sordem endócrina comum, causada pela 
secreção excessiva de cortisol pelo cór-
tex adrenal por disfunção desta glândula 
ou por hiperestímulos oriundos da hi-
pófise. É mais frequente em cães adul-
tos e idosos, sendo incomum em gatos 
e outros animais domésticos. Alguns 
estudos têm demonstrado que animais 
com excesso de cortisol circulante tam-
bém apresentam concentrações elevadas 
de hormônios sexuais, sugerindo que a 
dosagem destes também poderia auxi-
liar na confirmação da doença. 
O diagnóstico endócrino desta enfer-
midade é realizado após a confirmação 
da suspeita de hiperadrenocorticismo 
pelos dados de anamnese, exame físi-
co, resultados laboratoriais (urinálise 
e perfil bioquímico), achados radio-
gráficos e/ou ultrassonográficos. As 
principais técnicas utilizadas para o 
diagnóstico desta enfermidade são o 
radioimunoensaio, quimioluminescên-
cia, entre outros. somente a dosagem 
do nível basal de cortisol não tem va-
lor diagnóstico, devido ao fato de que 
tanto o cortisol quanto o hormônio 
corticotrófico (ACTh) são secretados 
esporadicamente, o que leva a ocorrên-
cia de valores mais altos ou mais baixos 
de acordo com o período do dia. Por 
este motivo são necessárias provas es-
pecíficas para o diagnóstico desta enfer-
midade como, por exemplo, o teste de 
supressão pela dexametasona e a esti-
mulação pelo ACTH.
2. TESTE DE SUPRESSÃO PELA 
DEXAMETASONA
A dexametasona é um potente glico-
corticóide sintético que quando admi-
nistrado em pequenas doses normal-
mente suprime a liberação de ACTh e, 
conseqüentemente, do cortisol. Portanto, 
este teste baseia-se no fato de que o eixo 
hipófise-adrenal mostra-se resistente à 
supressão induzida pela dexametasona 
nos pacientes com hiperadrenocorti-
cismo. Em animais normais e naque-
les com hiperplasia idiopática cortical 
adrenal, o cortisol plasmático é reduzido 
8h após a injeção EV de 0,01mg/kg de 
dexametasona, sendo que também se re-
comenda a análise de amostra coletada 
4h após a aplicação da droga. A supres-
são apenas parcial do cortisol plasmático 
(duração de 3 a 6 horas) ocorre quando 
há hiperplasia cortical adrenal associada 
a tumores funcionais hipofisários, sen-
do que nenhuma supressão significativa 
acontece em animais com tumores fun-
cionais do córtex adrenal. uma alta dose 
de dexametasona, no teste de supressão, 
pode ser benéfica na diferenciação dos 
casos questionáveis de excesso de corti-
sol ocasionados por tumores funcionais 
hipofisários, daqueles originados por 
um tumor do córtex adrenal. Os níveis 
de cortisol, na maioria dos animais com 
tumores hipofisários, tornam-se depri-
midos com esta dose mais elevada do 
medicamento, ao passo que não há de-
pressão quando o excesso de cortisol é 
causado por tumores funcionais do cór-
tex adrenal.
3. TESTE DE ESTIMULAÇÃO 
PELO ACTH 
Em contrapartida, o teste de esti-
mulação pelo ACTh baseia-se no fato 
de que, tanto animais acometidos por 
adenomas hipofisários (secretores de 
ACTh) quanto aqueles que possuem 
tumores adrenocorticais funcionantes 
apresentam uma resposta exagerada à 
estimulação pelo hormônio corticotrófi-
co e podem, portanto, ser diferenciados 
daqueles animais saudáveis.
4. HIPOADRENOCORTICISMO
O hipoadrenocorticismo ou síndro-
me de Addison é uma endocrinopatia 
pouco freqüente em cães, e ainda mais 
incomum em gatos. Pode ser classificada 
de acordo com a origem em: hipoadre-
nocorticismo primário e secundário. O 
hipoadrenocorticismo primário carac-
teriza-se pela deficiência na secreção de 
glicocorticóide (cortisol) e mineralocor-
ticóide (aldosterona) pelo córtex adre-
nal, causada geralmente por destruição 
imunomediada desta glândula. No hi-
poadrenocorticismo secundário (menos 
freqüente) tem-se secreção deficiente 
de glicocorticóides em consequência ao 
déficit hipofisário de ACTh. É impor-
tante ressaltar que a secreção de glico-
corticóides pelas adrenais é estimulada 
pelo ACTh. Na falta deste hormônio, 
a camada fasciculada do córtex adrenal 
(camada responsável pela produção de 
glicocorticóides) sofre atrofia. Nota-se 
que a produção de mineralocorticóides 
está preservada uma vez que a camada 
responsável pela sua produção (camada 
glomerulosa do córtex adrenal) não é 
controlada pelo ACTh, mas sim pelo 
sistema renina-angiotensina. 
Os sinais clínicos são muito variáveis 
e dependem da severidade e da evolução 
da doença. Alguns cães apresentam si-
nais crônicos e intermitentes (por exem-
plo, êmese e diarréia) enquanto que 
outros apresentam quadros agudos e 
chegam ao hospital veterinário em cho-
que (hipotensos, bradicárdicos e hipo-
glicêmicos). As alterações clínicas não 
são específicas e sim comuns a uma va-
riedade de outras doenças. No entanto, 
deve-se suspeitar de hipoadrenocorti-
cismo crônico quandouma doença tem 
seus sintomas exacerbados pelo estresse 
DIAGNÓSTICO DE DOENÇAS ENDÓCRINAS 
PROVAS FUNCIONAIS
Figura 1: Animal com hiperadrenocorticismo apresentan-
do perda de pelo e distenção abdominal. Fonte: (1)
ENDOCRINOLOGIA
5
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TECNOLOGIA EM SANIDADE ANIMAL
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Bibliografia
• 1. Peterson, Mark E. Cushing’s Syndrome: A Common Hormonal Disorder in Dogs. Animalendocrine. [Online] 17 de Março de 2011. 
[Citado em: 15 de Julho de 2014.] http://animalendocrine.blogspot.com.br/2011/03/cushings-syndrome-common-hormonal.html.
e respondem a tratamentos inespecífi cos e à terapia de suporte.
O diagnóstico baseia-se nos achados clínicos, exames laboratoriais complementares (hiponatremia, hiperca-
lemia, hipoglicemia e hipostenúria) e teste funcional. Ainda que os sinais clínicos estejam presentes e os exa-
mes complementares sejam compatíveis com hipoadrenocorticismo, um diagnóstico defi nitivo requer a comprova-
ção do mau funcionamento da adrenal. Para tanto, utiliza-se um teste funcional (teste de estimulação com ACTH).
MATERIAL
Sangue em tubo tampa roxa
Sangue em tubo tampa roxa (enviar plasma congelado)
Sangue em tubo tampa vermelhaSangue em tubo tampa vermelha
Sangue em tubo tampa roxa
Sangue em tubo tampa vermelha
Sangue em tubo tampa vermelha
Sangue em tubo tampa vermelha
Sangue em tubo tampa roxa e vermelha
Sangue em tubo tampa roxa, cinza e vermelha
Urina em frasco estéril
PRAZO DIAS
Mesmo dia
2 Dias
2 Dias
2 Dias
2 Dias
2 Dias
3 Dias
1 Dia
1 Dia
COD/EXAMES
39- HEMOGRAMA COMPLETO - PET E ANIMAIS SILVESTRES 
218- ACTH - HORMONIO ADRENOCORTICOTROFICO 
619- DOSAGEM DE CORTISOL BASAL (RADIOIMUNOENSAIO)
630- DOSAGEM DE CORTISOL POS ACTH (RADIOIMUNOENSAIO) 
BASAL + POS ESTIMULO COM ACTH
621- CORTISOL POS SUPRESSAO DEXA 3 DOSAGENS
(RADIOIMUNOENSAIO)
634- RELACAO CORTISOL CREATININA URINÁRIA
334- PERFIL HIPERADRENOCORTICISMO (hemograma completo + 
sodio + potassio + ureia + dosagem de cortisol basal )
788- CHECK UP GLOBAL DE FUNCOES COM HEMOGRAMA
234- URINA ROTINA 
EXAMES DO TECSA LABORATÓRIOS (LABORATÓRIO DE REFERÊNCIA NACIONAL) QUE AUXILIAM NO
DIAGNÓSTICO DE HIPERADRENOCORTICISMO E HIPOADRENOCORTICISMO:
ENDOCRINOLOGIA
6
1. INTRODUÇÃO
É cada vez mais frequente e preocu-
pante, a quantidade de cães obesos aten-
didos nas clínicas e hospitais veteriná-
rios. segundo o último levantamento da 
Associação médica Veterinária Ameri-
cana, 40% dos cães dos Estados unidos 
carregam quilos extras. No Brasil, a esti-
mativa é que 30% dos cães sejam obesos. 
má alimentação, sedentarismo, castra-
ção e predisposição genética são alguns 
dos principais vilões do sobrepeso. 
A obesidade é um distúrbio grave em 
animais: é fator de risco para problemas 
respiratórios e cardiovasculares e ainda 
predispõe a dores nas articulações. O 
mais difícil é convencer os donos de que 
a situação é séria e requer tratamento e 
que eles são os principais responsáveis 
pela obesidade do seu animal de estima-
ção. Em muitos casos o animal pode até 
correr risco de vida.
2. FATORES PREDISPONENTES
• MÁ ALIMENTAÇÃO
muitos proprietários desconhecem 
que a maioria das rações disponíveis 
no mercado atendem perfeitamente as 
necessidades nutricionais dos cães. No 
entanto, além da ração, muitos proprietá-
rios também fornecem petiscos e comida 
caseira como arroz, feijão e angu fazendo 
com que o animal ingira mais energia do 
que gasta (balanço energético positivo) 
e esta energia excedente é armazena-
da principalmente em forma de tecido 
adiposo. É comum abusar de ossinhos, 
bifinhos e biscoitos que contém muitas 
calorias (um biscoito médio em forma de 
ossinho tem cerca de 90 calorias).
• SEDENTARISMO
Os cães estão vivendo cada vez mais 
confinados, muitos vivendo em apar-
tamentos que não possuem área físi-
ca para se exercitarem e, além disso, 
acompanham o estilo de vida do dono 
que mal sai de casa e se o fazem, é so-
mente no momento das necessidades, 
passando praticamente o dia todo dei-
tados ou dormindo. quanto mais eles 
engordam, mais sedentários ficam, e 
com isso a capacidade de se locomove-
rem fica mais dificultada.
• CASTRAÇÃO
Cães e cadelas castrados apresentam o 
dobro da probabilidade de se tornarem 
obesos – o distúrbio é mais freqüente 
entre as fêmeas. Com a castração, elas 
deixam de produzir hormônios que atu-
am na inibição do apetite e consequen-
temente comem mais do que o neces-
sário. No caso dos machos, a retirada 
dos testículos interrompe a produção 
de hormônios andrógenos, importantes 
para instigá-los a se movimentar.
• PREDISPOSIÇÃO GENÉTICA
Cães de algumas raças, como labra-
dor, Golden Retriever, Collie, Cocker 
spaniel, Beagle e Dachshund têm pre-
disposição a engordar. há alterações nos 
hormônios que controlam a saciedade, 
como a leptina, produzida pelas células 
adiposas. Cães obesos têm resistência à 
substância, ingerindo maior quantidade 
de alimentos.
2. SINAIS CLÍNICOS
A obesidade é identificada basica-
mente pela inspeção visual do animal, 
pela palpação da quantidade de tecido 
adiposo no tórax, no dorso e na região 
pélvica e pela pesagem do animal. um 
cão normal deve ter suas costelas facil-
mente palpáveis e o contorno corporal 
deve ter forma de ampulheta quando 
visto de cima. É mais difícil avaliar a 
obesidade em gatos, por causa da dife-
rente distribuição de gordura nesta es-
pécie. 
As seguintes alterações são observa-
das em um cão obeso:
•Dificuldade em palpar as costelas;
•Ausência de cintura visível;
•Necessidade de afrouxar a coleira;
•Dificuldade para caminhar;
•Locomoção vagarosa;
•Respiração curta/ofegante;
•Animal dorme mais que o normal.
3. COMPLICAÇÕES
Assim como no ser humano, nos 
cães a obesidade predispõe a doenças 
ou agrava as pré-existentes, como por 
exemplo: 
-  EXPECTATIvA DE vIDA DI-
MINUÍDA:  Já foi demonstrado atra-
vés de um estudo que durou cerca de 13 
anos e analisou 48 Labradores que a obe-
sidade diminui a longevidade em cães.
-  DOENÇAS OSTEO-ARTI-
CULARES: a obesidade leva a pro-
blemas ósseos em todas as idades do 
cão.  Cães filhotes de raça grande, com 
OBESIDADE CANINA
Figura 1: Exemplo de cão obeso (imagem superior) e o 
mesmo animal no peso ideal (imagem inferior). Fonte: (2)
Bibliografia
1. Canine Obesity – A HUGE Problem…. 
A place for paws. [Online] 17 de Abril de 
2011. [Citado em: 16 de Julho de 2014.] 
http://www.aplaceforpaws.com/blog/
canine-obesity-a-huge-problem.
2. Becker, Karen. Why are So Many Pet 
Owners Allowing Their Companions to 
Get Fat? Halthy Pets. [Online] 06 de Ju-
lho de 2012. [Citado em: 16 de Julho de 
2014.] http://healthypets.mercola.com/
sites/healthypets/archive/2012/07/06/
high-risks-of-pets-obesity.aspx.
ENDOCRINOLOGIA
7
Figura 2: Escala de peso – Muito magro a Obeso. Fonte: (1)
ingestão excessiva de alimento podem desenvolver Osteodistrofi a hipertrófi ca, além 
de agravar sintomas de displasia coxo-femoral. A artrite também pode ocorrer, pois 
a obesidade aumenta a força sobre as articulações, podendo levar à destruição da 
cartilagem.  Cães obesos podem exacerbar doenças do disco intervertebral piorando 
o prognóstico. E de certa forma problemas osteoarticulares tendem a complicar a 
obesidade, pois os animais com dor fi cam mais sedentários devido à restrição de 
atividade física, instalando um círculo vicioso.
- Distúrbios Circulatórios:  a obesidade aumenta o risco de insufi ciência cardíaca congesti-
va  por aumentar as necessidades de perfusão da massa gordurosa desenvolvida.
- Condições Respiratórias Crônicas:  ocorre restrição do volume pulmonar, devi-
do aos depósitos  de gordura intratorácica,assim como deslocamento do diafragma 
pela gordura abdominal.
- Diabetes Mellitus: cães obesos po-
dem desenvolver  resistência a insulina en-
dógena, o que pode agravar a intolerância 
a glicose em animais já predispostos à dia-
betes. Os cães podem acabar desenvolven-
do diabetes tipo 1 (insulino-dependente).
- Hipertensão: em condições experi-
mentais demonstrou-se que aumentos ou 
reduções moderadas no peso corpóreo au-
mentam ou diminuem a pressão sanguí-
nea arterial média nos cães.
- Problemas Dermatológicos: tais 
como dermatite de prega cutânea, se-
borréia e dermatite por malassezia po-
dem ser mais comuns em cães obesos.
- Risco cirúrgico e anestésico au-
mentado: O risco anestésico depende 
da técnica empregada, mas pode haver 
superdosagem de medicação bem como  
recuperação anestésica lenta pelo depósito 
de drogas lipossolúveis na gordura corpo-
ral.  O tempo cirúrgico, por exemplo de 
uma cirurgia de castração em fêmeas (ova-
riohisterectomia) pode ser muito maior 
numa cachorra obesa. 
 Outras doenças que podem ser 
induzidas pela obesidade são a hiperlipide-
mia, lipidose hepática e pancreatite. O ani-
mal obeso deve passar por um exame físico 
completo, além de exames laboratoriais, in-
cluindo hemograma, urinálise, bioquímicos 
e em alguns casos  exames hormonais, para 
avaliar a possibilidade de causa de base le-
vando a obesidade ou doença concomitante.
MATERIAL
Sangue em tubo tampa roxa, cinza e vermelha
Sangue em tubo tampa vermelha
Sangue em tubo tampa vermelha
Sangue em tubo tampa roxa, cinza e vermelha
Sangue em tubo tampa vermelha
Sangue em tubo tampa vermelha
Sangue em tubo tampa roxa e cinza
Sangue em tubo tampa roxa e cinza
PRAZO DIAS
2 Dias
2 Dias
2 Dias
1 Dia
1 Dia
1 Dia
1 Dia
1 Dia
COD/EXAMES
339- PERFIL OBESIDADE (hemograma, TSH, cortisol basal, colesterol total, glicose, uréia, creatinina, T4 livre)
626- T4 LIVRE - DIALISE (PRE-RADIOIMUNOENSAIO)
624- T3 TOTAL - RADIOIMUNOENSAIO
788- CHECK UP GLOBAL DE FUNCOES COM HEMOGRAMA
107- LIPIDES TOTAIS
97- COLESTEROL TOTAL E FRACOES (TOTAL+LDL+VLDL+HDL)
581- PERFIL GLICEMICO (Glicose, Glicohemoglobina, Frutosamina, Insulina)
234- URINA ROTINA
APOIO DIAGNÓSTICO TECSA LABORATÓRIOS - O TECSA Laboratórios oferece inúmeros exames para o diagnóstico da
obesidade e doenças correlacionadas. Os seguintes exames são oferecidos com os respectivos prazos de entrega:
ENDOCRINOLOGIA
8
A endocrinologia veterinária é a es-
pecialidade responsável pelo diagnósti-
co e tratamento de doenças que afetam 
as glândulas endócrinas (produtoras de 
hormônios). Os hormônios são substân-
cias químicas que controlam o metabo-
lismo, o crescimento, o desenvolvimen-
to e a reprodução, além de atuarem na 
adaptação dos animais ao meio ambien-
te. As glândulas endócrinas situam-se 
em diferentes partes do corpo, sendo 
que as principais são: hipotálamo, hipó-
fi se, tireóide, pâncreas, adrenais, ovários e 
testículos. Essas glândulas podem desen-
volver problemas no seu funcionamen-
to de forma a produzir hormônios em 
quantidade insufi ciente ou em excesso.
A endocrinologia de equinos é uma 
especialidade que tem se destacado 
progressivamente nos últimos anos às 
custas da melhor capacitação e especia-
lização dos médicos veterinários e de 
testes diagnósticos mais apurados e dis-
poníveis nos laboratórios. Os distúrbios 
mais frequentes encontrados nos equi-
nos são aqueles envolvendo o pâncreas, 
pituitária e tireóide.
1. SÍNDROME METABÓLICA 
EQUINA(SME)
A síndrome metabólica Equina é 
caracterizada por uma resistência crô-
nica à insulina, sendo esta defi nida por 
uma redução na capacidade da insulina 
em estimular tecidos. A smE pode ser 
diagnosticada através da história clínica, 
detecção de obesidade ou depósitos de 
adipócitos regionais e nos exames labo-
ratoriais. Cavalos suspeitos devem ser 
testados para resistência à insulina, sub-
metendo uma amostra de plasma para 
medição dos valores basais de glicose e 
insulina.Para determinar o valor de gli-
cemia e insulinemia é aconselhado fazer 
um período de jejum de pelo menos 6 
horas antes da colheita de sangue, uma 
vez que o valor de insulina está falsa-
mente aumentado em alguns cavalos 
após as refeições. A determinação des-
tes parâmetros deve também ser adiada 
caso o paciente se encontre com episó-
dios agudos de laminite, onde o valor de 
cortisol e leptina podem também auxi-
liar o diagnóstico: leptina acima de 7,3 
ng/mL pode ser usado como preditivo 
de laminite.
O teste de açúcar oral é o mais utili-
zado. Deve-se coletar as amostras san-
guíneas para avaliação de glicose em 
tubo para coleta de sangue a vácuo de 
tampa cinza e as amostras para avalia-
ção de insulina em tubo para coleta de 
sangue a vácuo de tampa vermelha. 
muitas vezes cavalos com smE pos-
suem baixos níveis de T4, tendo sido 
detectada uma correlação negativa entre 
os níveis de insulina e a concentração de 
T4. Cavalos suspeitos de smE podem 
ser testados para hipotireoidismo através 
da medição da concentração de T4 e T3 
no soro. O diagnóstico de hipotireoidis-
mo pode ainda ser comprovado através 
da medição das frações de T4 e T3.
O TECsA Laboratórios oferece inú-
meros exames para diagnóstico de smE. 
Os seguintes exames são oferecidos com 
os respectivos prazos de entrega:
2. DISFUNÇÃO DA PARS
INTERMÉDIA DA PITUITÁRIA 
(SÍNDROME DE CUSHING)
A Disfunção da Pars Intermedia da 
Pituitária (DPIP), também conhecida 
como síndrome de Cushing, é uma do-
ença neurodegenerativa caracterizada 
pela diminuição dos neurotransmissores 
da dopamina, ocasionando a proliferação 
das células melanotrópicas e, consequen-
temente, produzindo quantidades excessi-
vas de pro-opiomelanocortina (POmC) e 
peptídeos derivados. somado ao hormô-
nio adrenocorticotrófi co (ACTh), este 
aumento do POmC resulta na hipertrofi a 
e hiperplasia do pars intermedia da pitui-
tária. A DPIP é reconhecida por pesqui-
sadores como principal endocrinopatia 
geriátrica dos equinos.
Os sinais clínicos apresentados são: 
hirsutismo, cobertura de pelos longos e 
crespos que inicialmente se restringe ao 
pescoço, base da calda e aspecto palmar 
e plantar dos membros; perda de peso 
por perda de massa muscular promovi-
da pelo aumento do catabolismo protéi-
co em resposta ao aumento do cortisol, 
embora o apetite permaneça normal ou 
aumentado. A principal complicação da 
DPIP é a laminite crônica. Aproximada-
mente 50% dos cavalos com sindrome 
de Cushing apresentam laminite. A ex-
pansão do tumor pela sela diafragmática 
pode provocar a compressão do hipotála-
mo e do quiasma óptico, o que resulta em 
cegueira e défi cits neurológicos. 
Existem diversos testes no TECsA 
Laboratórios que são utilizados no au-
xílio ao diagnóstico da DPIP, sendo que 
o teste inicial deve incluir hemograma 
completo, perfi l bioquímico sérico e uri-
nálise. Indica-se também fazer o teste de 
insulina, uma vez que os níveis de insu-
lina plasmática são regularmente mais 
Principais alterações hormonais em 
equinos: correlação clínico – laboratorial
Frederico Miranda Pereira
EXAMECOD. PRAZO
1 Dia
2 Dias
2 Dias
2 Dias
2 Dias
MATERIAL
Tubo tampa cinza
Tubo tampa vermelha
Tubo tampa vermelha
Tubo tampa vermelha
Tubo tampa vermelha
105
72
626
66
164
Glicose - Glicemia
Dosagem de Insulina
T4 Livre pós Diálise
T4 Total
T3 Total
EXAMES REALIZADOS NO TECSA LABORATÓRIOS
Figura 1: Síndrome de Cushing Equina. Fonte: Arquivo 
Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia.
ENDOCRINOLOGIA
9
altos em equinos com adenoma de pi-
tuitária, podendo chegar a 125,3 mu/ml.
3. TIREÓIDE EQUINA
A glândula tireóide tem função im-
portante no crescimento e maturação 
de órgãos, além de estimular o consumo 
de oxigênio, a síntese e o catabolismo 
dões e atraso no desenvolvimento ósseo.
Os sinais clínicos que caracterizam 
o hipotireoidismo são: apatia, letargia, 
gordura localizada no pescoço, anor-
malidade da pelagem, apetite reduzido, 
letargia e edema dos membros posterio-
res. Pesquisadores estão concordando 
que muitos dos sinaisclínicos do hipo-
tireoidismo são semelhantes aos da sín-
drome metabólica Equina (smE), por 
isso a importância também em avaliar o 
animal para smE. Também encontra-
ram alguns sinais clínicos semelhantes à 
Disfunção do Pars Intermedia da Pitui-
tária (Cushing).
Para o diagnóstico laboratorial do hi-
potireoidismo equino e, dentro do que 
é encontrado disponível no mercado 
para equinos, os testes sugeridos são: 
T4 total, T4 livre pós diálise e T3 total, 
e todos esses exames você encontra no 
TECsA Laboratórios. Existem vários 
fatores que podem alterar os valores de 
T4 total. Desta forma, não é caracteri-
zado que o animal seja hipotireóideo, 
apesar do nível de T4 total estar abaixo 
da normalidade. Exemplos destes fato-
res são tratamentos com fenilbutazona 
ou corticosteróide, fatores nutricionais, 
mudança de rotina etc.
Assim, até que mais pesquisas sejam 
realizadas e melhores testes sejam de-
senvolvidos, os diagnósticos devem ser 
baseados na combinação de um históri-
co bem feito, de sinais físicos, de testes 
laboratoriais e de diagnósticos diferen-
ciais com a doença de Cushing equina e 
a síndrome metabólica Equina.
4. DIAGNÓSTICO DE GESTAÇÃO 
EM ÉGUAS E vIABILIDADE FETAL
A análise do nível de progesterona não 
é sufi ciente para confi rmar a gestação da 
égua, pois o exame informa apenas se a 
égua está produzindo este hormônio em 
níveis sufi cientes para a manutenção da 
gestação. Recomenda-se a realização do 
exame PmsG (Gonadotrofi na Coriô-
nica Equina), quando as éguas estive-
rem entre o 45º e o 90º dia de gestação. 
Éguas gestantes que apresentem índices 
inferiores a 10 u.I. por ml podem cor-
rer o risco de perder a gestação, sendo 
necessária a manutenção de terapia com 
progesterona. Do 90º dia em diante, a 
análise de estrógenos totais é utilizada 
para confi rmar a gestação e monitorar a 
viabilidade fetal. Este teste inclui sulfa-
to de estrona e tem nível de confi abili-
dade de aproximadamente 99%.
Aproximadamente duas semanas 
antes do parto, os níveis de estrógenos 
totais reduzem rapidamente para 300 
pg/ml. Nas éguas, os progestágenos se 
elevam e os estrógenos totais caem an-
tes do parto. Esta rápida elevação dos 
progestágenos pode ocorrer em função 
da secreção de corticóide pelo feto.
de proteínas, a taxa metabólica basal, 
ajudar na regulação do metabolismo de 
lipídeos, dentre outras. 
Existe uma grande discussão sobre a 
ocorrência de hipotireoidismo equino, 
com apenas poucos trabalhos que con-
fi rmam a presença de hipotireoidismo. 
Aparece, em alguns casos, de forma ia-
trogênica, por meio de uso prolongado 
de medicações sistêmicas à base de iodo. 
O hipotireoidismo congênito (Bócio) 
ocorre em potros ao nascimento devido 
à defi ciência ou ao excesso de iodo, in-
gestão de plantas goitrogênicas ou defi -
ciência de selênio, todos relacionados à 
dieta da égua. Estes potros muitas vezes 
nascem fracos, com hipotermia, alope-
cia e anormalidades músculo esqueléti-
cas, como contratura e ruptura de ten-
EXAMECOD. PRAZO
0 Dias
1 Dia
1 Dia
2 Dias
2 Dias
MATERIAL
Tubo tampa roxa
Tubo tampa vermelha
Tubo para uriina
Tubo tampa vermelha
Tubo tampa vermelha
39
324
234
156
72
Hemograma Completo
Perfil Bioquímico Sérico
Urina Rotina
Dosagem de Insulina
Cortisol pós Supressão 
da Dexametasona
EXAMES REALIZADOS NO TECSA LABORATÓRIOS
EXAMECOD. PRAZO
2 Dias
2 Dias
2 Dias
MATERIAL
Tubo tampa vermelha
Tubo tampa vermelha
Tubo tampa vermelha626
164
66
T4 Livre pós Diálise
T4 Total
T3 Total
EXAMES REALIZADOS NO TECSA LABORATÓRIOS
Bibliografia
• http://www.ufrgs.br/lacvet/restrito/pdf/cushing_equinos.pdf
• www.betlabs.com.br
• www.escoladocavalo.com.br
ENDOCRINOLOGIA
10
1. A DOENÇA
Trata-se de uma síndrome caracteri-
zada pela elevada concentração de para-
tormônio (PTh) biologicamente ativo 
secundária a uma falência renal crônica 
(IRC). Em geral, deve-se à ausência ab-
soluta ou relativa de síntese de calcitriol, 
embora também esteja ligado a baixas 
concentrações de cálcio iônico. Afeta 
mais comumente cães do que gatos.
2. FISIOPATOLOGIA
A hiperfosfatemia secundária a falên-
cia renal leva a diminuição da atividade 
de 1a-hydroxylase nos rins, levando a 
uma diminuição na produção do calci-
triol. A redução da massa renal tubular 
funcional também contribui para a sín-
tese reduzida de calcitriol. sua concen-
tração basal normal exerce efeito de fee-
dback negativo na síntese de PTh pelas 
glândulas paratireóides. Baixas concen-
trações séricas de calcitriol e cálcio iôni-
co resultam em estimular a produção de 
PTh e hiperplasia da glândula paratire-
óide. O aumento da produção crônica de 
PTh eleva os níveis séricos de calcitriol 
e a concentração de cálcio. A síntese do 
calcitriol é deficiente em pacientes com 
insuficiência renal crônica severa e o re-
duzido número de túbulos funcionais é 
incapaz de compensar os níveis de PTh 
,podendo esse atuar como uma toxina 
urêmica e promover nefrocalcinose e a 
progressão da falha renal.
3. SINAIS
Os sinais envolvem as alterações 
clínicas comumente presentes na in-
suficiência renal, variando de acordo 
com o grau de acometimento dos rins: 
poliúria, polidipsia, anorexia, letargia, 
vômitos, eliminação de urina durante a 
noite, constipação, diarréia, hipertensão, 
cegueira, ptialismo e fraqueza muscular 
com ventro-flexão cervical. Osteodis-
trofia também pode ocorrer, sendo um 
achado comum em cães jovens acome-
tidos severamente pela doença.
4. DIAGNÓSTICOS DIFERENCIAIS
Os diagnósticos diferenciais envolvem:
• Hiperparatireoidismo Terciário: 
nefropatia hipercalcêmica, devido a au-
sência de feedback negativo das glân-
dulas paratireóides, onde se tem altos 
níveis de cálcio sérico ionizado;
• Adenocarcinoma de glândulas 
apócrinas paranais e Linfoma: níveis 
de PTh encontram-se reduzidos de-
vido à hipercalcemia determinada por 
essas neoplasias;
• Hiperparatireoidismo primário: 
hipercalcemia (total e iônica), concen-
trações normais a aumentadas de fósfo-
ro e elevada concentração de PTh.
5. DIAGNÓSTICO LABORATORIAL
O exame laboratorial é baseado na 
avaliação semanal da taxa de filtração 
glomerular através da determinação dos 
níveis de uréia e creatinina sérica; dosa-
gem de fósforo e cálcio sérico, cálcio io-
nizado, urinálise e, mensalmente, a con-
centração de PTh. Para tal, oTECsA 
Laboratórios oferece inúmeras análises:
• Uréia – material 2,0 mL de sangue 
total, sem anticoagulante (tubo tampa 
vermelha) ou 1,0 mL de soro;
• Creatinina – material 2,0 mL de 
sangue total, sem anticoagulante (tubo 
tampa vermelha) ou 1,0 mL de soro;
• Perfil Facilitador - Perfil Renal 
(uréia + Creatinina) – material 2,0 mL 
de sangue total, sem anticoagulante (tubo 
tampa vermelha) ou 1,0 mL de soro;
• Fósforo – material 2,0 mL de san-
gue total, sem anticoagulante (tubo 
tampa vermelha) ou 1,0 mL de soro;
• Cálcio – material 2,0 mL de sangue 
total, sem anticoagulante (tubo tampa 
vermelha) ou 1,0 mL de soro;
• Cálcio Iônico – material 2,0 mL de 
sangue total, sem anticoagulante (tubo 
tampa vermelha) ou 1,0 mL de soro;
• Urina rotina – urina coletada em 
frasco estéril, mínimo de 5,0 mL (cis-
tocentese ou micção natural, nesse caso 
coletar jato médio);
• Razão Proteína/Creatinina Urinária 
– urina coletada em frasco estéril, mínimo 
de 5,0 mL (cistocentese ou micção natu-
ral, nesse caso coletar jato médio);
• PTH – Paratormônio Intacto – 
material 2,0 mL de sangue total, sem 
anticoagulante (tubo tampa vermelha) 
ou 1,0 mL de soro;
• Histopatologia (biópsia) – Frag-
mento de órgão em formol 10%.
HIPERPARATIREOIDISMO
SECUNDÁRIO RENAL
Figura 1: Localização anatômica da parathyreóide no 
cão. Fonte: (1)
Figura 2: Rim com lesão crônica e paratireoide aumenta-
da (seta). Fonte: (2)
ENDOCRINOLOGIA
11
HIPOADRENOCORTICISMO: ENFERMIDADE RARA OU 
SUB-DIAGNOSTICADA EM NOSSO MEIO?
O hipoadrecorticismo, também conhe-
cido como síndrome de Addison, é uma 
disfunção endócrina resultante da defici-
ência da produção de glicocorticóides e 
mineralocorticóides,que tem sido relatada 
pela literatura como uma “enfermidade” 
pouco comum em cães e raríssima em 
felinos, mas hoje em dia a casuística tem 
aumentado na espécie canina.
quanto à causa dessa síndrome, elas 
podem ser classificadas como Primárias 
e secundárias. A primária é idiopática, 
podendo se tratar de processo imuno-
mediado, overdose de mitotano, doença 
granulomatosa ou metástase de neo-
plasias. A secundária ou iatrogênica é 
conseqüente da interrupção de terapia 
longa com glicocorticóides, deficiência 
isolada de ACTh, pan-hipopituitaris-
mo e tumor de hipófise não–funcional.
sua patofisiologia relaciona-se à ina-
bilidade da aldosterona (mineralocorti-
cóide) em exercer seu papel regulatório 
na excreção de potássio e retenção de 
sódio, levando a diminuição do volume 
efetivo circulante, que por sua vez, con-
tribui para a azotemia pré-renal, hipo-
tensão, desidratação, fraqueza e depres-
são. A hipercalemia (juntamente com 
outros distúrbios metabólicos) pode 
resultar em toxicidade do miocárdio, 
ao passo que a deficiência na produção 
de glicocorticóides (cortisol) contribui 
para vômitos, anorexia, melena, letargia 
e perda de peso, além de predispor à 
hipoglicemia e resultar em excreção de-
ficiente de água livre de sódio, o que se 
verifica clinicamente como incapacida-
de de concentrar urina determinando 
Pu/PD (poliúria e polidipsia).
O diagnóstico é laboratorial, uma 
vez que não há sinais patognomônicos 
e envolve as seguintes análises:
HEMOGRAMA COMPLETO, 
no qual pode ser verificada anemia, eo-
sinofilia e linfocitose.
Amostra: sangue (1,0 mL) em tubo 
tampa roxa (EDTA)
DOSAR: SODIO, POSTÁSSIO, 
CLORETO (Cloro), CÁLCIO, 
FOSFATASE ALCALINA cons-
tiuem-se componentes séricos alterados 
que merecem avaliação e complemen-
tam o diagnóstico.
Amostra: sangue (2,0 mL) em tubo de tam-
pa vermelha (sEm ANTICOAGuLANTE)
URINA ROTINA frequentemente re-
vela incapacidade de concentração urinária.
Amostra: urina (3,0 mL) em tubo 
coletor tipo seringa (monovet)
CORTISOL BASAL disponível 
nas metodologias de Eletroquimio-
luminescência ou Radioimunoensaio 
(mais sensível).
Amostra: sangue (2,0 mL) em tubo de tam-
pa vermelha (sEm ANTICOAGuLANTE)
CORTISOL PÓS ACTH disponí-
vel nas metodologias de Eletroquimio-
luminescência ou Radioimunoensaio , 
no qual os animais portadores da sín-
drome apresentam cortisol em níveis 
indetectáveis, não responsivo ao estí-
mulo de ATCh.
Amostra: sangue (2,0 mL) em tubo de tam-
pa vermelha (sEm ANTICOAGuLANTE)
ACTH: sua dosagem no plasma de pa-
cientes com níveis eletrolíticos dentro da 
normalidade permite diferenciar o hipoa-
drenocorticismo primário do secundário.
Amostra: sangue (1,0 mL) em tubo 
tampa roxa (EDTA). Amostras que 
serão transportadas por período maior 
que 4 horas, solicitamos o envio do 
plasma congelado.
CÁLCULO DA RELAÇÃO CORTI-
SOL/ACTH PARA O DIAGNÓS-
TICO DO HIPOADRENOCOR-
TISISMO PRIMÁRIO EM CÃES
O método é uma alternativa a esti-
mulação com ACTh. A estimulação 
com ACTh é o método mais habitu-
almente utilizado para diagnosticar a 
enfermidade de Addison em cães, mas 
o cálculo da relação Cortisol/ACTh é 
um sistema mais barato y totalmente 
confiável segundo os resultados de um 
estudo desenvolvido pela universidade 
Estatal de mississippi.
Cientistas da universidade de Vete-
rinária do Estado do mississippi-u-
sA , validaram um método confiável 
e mais barato que a estimulação com 
ACTh para diagnosticar hipoadreno-
corticismo primário, ou enfermidade de 
Addison, em cães. O método se baseia 
no cálculo da relação cortisol/ACTh 
no soro sanguíneo.Neste estudo o gru-
po com hipoadrenocorticismo (hAD) 
mostrou concentrações basais de corti-
sol significativamente mais baixas e de 
ACTh mais altas que os grupos sem 
hipoadreno (P < 0,001). Desta forma, 
a relação cortisol/ACTh foi significa-
tivamente menor no grupo hAD que 
noss outros dois grupos (P < 0,001). 
Ficou confirmado que a Ralação Cor-
tisol/ACTh permite diagnosticar de 
forma precisa o cão que sofre de hipo-
adrenocorticismo primário.
*Lathan P, Scott-Moncrieff JC, Wills RW. Use of the 
Cortisol-to-ACTH Ratio for Diagnosis of Primary Hypo-
adrenocorticism in Dogs. J Vet Intern Med. 2014 Jun 25. 
doi: 10.1111/jvim.12392.
Figura 1: O cão de água Português é uma das raças com 
pré-disposição a sofrer a enfermidade de Addison (Foto: 
Langhaartyp - CC License)
ENDOCRINOLOGIA
13
O resultado de um exame laboratorial 
confiável e de qualidade depende do pre-
paro do animal, da colheita do material e 
do manuseio e armazenamento da amostra 
colhida. Para que se tenha resultados labo-
ratoriais condizentes com o quadro clínico 
do animal, deve-se tomar cuidados para 
evitar alterações nas amostras provocadas 
por estresse, garroteamento prolongado, 
antissepsia inadequada, contaminação. 
quando os devidos cuidados não 
são tomados, pode-se gerar complica-
ções na saúde do animal devido a uma 
interpretação incompleta ou incorreta 
de resultados.
Preencher corretamente a ficha que 
acompanhará a amostra é imprescindível, 
devendo conter na mesma, NOmE do 
PACIENTE, NOmE do Proprietário, 
Código do Convenio, médico veterinário 
responsável, suspeita clínica, informações 
de medicamentos usados, dieta, presença 
de agitação durante coleta e ainda se houve 
utilização de anestésicos.
1. HEMOGRAMA
Amostra hemoconcentrada: na 
amostra destinada a hemograma, há mais 
sangue do que o recomendado, risco da 
amostra coagular, eleva falsamente valo-
res de eritrócitos, leucócitos e plaquetas. 
Amostra hemodiluída: na amos-
tra destinada a hemograma, há me-
nos sangue do que o recomenda-
do diminui falsamente valores de 
eritrócitos, leucócitos e plaquetas, o 
excesso de anticoagulante pode cau-
sar dano na morfologia dos eritrócitos. 
O anticoagulante de eleição para a re-
alização do hemograma na maioria das 
espécies, é o EDTA, pois a heparina não 
evita a aglomeração plaquetária e causa 
alterações leucocitárias. 
Amostra com coágulo e/ou fibrina: 
altera muito o resultado, impossibilita a 
contagem de plaquetas.
2. CAUSAS DE HEMÓLISE
- Velocidade de aspiração X Agu-
lha de pequeno calibre;
- Tubos com fluoreto = Deterioração 
celular. 
-Colocar o sangue no tubo sem retirar a 
agulha da seringa antes; 
- homogeneização violenta; 
- Lipemia; 
- Tempo até o processamento; 
- Congelamento da amostra; 
Alterações que a hemólise provoca no 
hemograma: - Falsa diminuição no nú-
mero de hemácias;
- Falsa diminuição do hematócrito;
 - Falso aumento da [hemoglobina];
- Falso aumento do ChCm;
- Falsa diminuição do VCm;
 - Falso aumento na Proteína.
Amostras com hemólise intensa po-
dem influenciar bastante nos resultados 
sorológicos de várias patologias como 
Leishmaniose, Leptospirose, Cinomose 
e dentre outras.
3. AMOSTRAS PARA ANÁLISES 
BIOQUÍMICAS
Tubo de coleta para a maioria das análises:
- Tampa vermelha e preta ou tampa ver-
melha e amarela (preferencial).
- Tubo para glicemia: Tubo tampa cinza 
e branca.
- Tubo para análise de tempo de coagula-
ção, fibrinogênio: Tubo tampa azul.
A maioria dos exames bioquímicos 
recomenda jejum de 8 horas, mas para a 
dosagem de colesterol e triglicerídeos esse 
tempo deve ser aumentado para 12 h.
sempre mandar amostra suficiente 
para a realização dos exames solicitados, 
lembrando que para a obtenção de 1 ml 
de soro são necessários 3 mL de sangue 
 (rendendo menos em caso de desidra-
tação e menos na presença de anemia) 
O ideal é enviar mais amostra do que 
o necessário, caso haja necessidade de re-
petir o exame.
4. URINA
Enviar no mínimo 5 ml para o exa-
me de urinálise (urina tipo 1). Deve 
ser protegida da luz, pois pode conter 
QUALIDADE DA COLETA DE AMOSTRAS
BIOLÓGICAS EM MEDICINA vETERINÁRIA
Figura 1:Coleta de amostra biológica. 
Fonte: http://www.agencia.fiocruz.br/ 
Figura 2: Tubo para coleta de amostra - Hemograma.
Figura 3: Parâmetros de amostras hemolisadas
Fonte: http://www.hemoglobinopatias.com.br/dialab/
dialab-index.htm
Figura 4: Tubos de coleta paraanálises bioquímicas
Fonte: http://www.labmedvet.blogspot.com.br/
MEDICINA VETERINÁRIA PREVENTIVA
15
substâncias fotossensíveis (bilirrubina 
e urobilinogênio).
A análise deve ser feita em até 2 horas 
após a colheita, pois podem ocorrer di-
versas alterações, como deteriorização de 
células, formação de cristais in vitro, proli-
feração de bactérias com posterior alcalini-
zação da amostra e dissolução de cilindros.
Amostras destinadas a urocultura e 
antibiograma devem ser armazenadas 
em tubo estéril e coletadas por cistocen-
tese. Para análise de cálculos urinários 
armazenar em frasco limpo e seco, sem 
o uso de conservadores e em temperatu-
ra ambiente.
5. FEZES
Ideal colher diretamente da ampola 
retal, caso o tamanho do animal não 
permita, a amostra deve ser obtida da 
parte superior do bolo fecal, onde não 
houve contato com o solo.Para copro-
cultura coletar com swab estéril direta-
mente do reto.
6. CITOLOGIA
O exame citológico apresenta como 
característica principal a rapidez do 
diagnóstico, quando comparado ao exa-
me histopatológico e por necessitar de 
pequena quantidade de material. sua 
desvantagem é não permitir a visualiza-
ção da arquitetura do órgão e, portanto, 
deve ser considerada uma tentativa de 
antecipar o diagnóstico. É indicada par-
ticularmente para diferenciar processos 
inflamatórios agudos ou crônicos e neo-
plásicos benignos e malignos.
utilizar sempre lâminas limpas e de-
sengorduradas em álcool comum. Após 
a colheita do material as lâminas de-
vem ser fixadas ao ar, conservadas em 
temperatura ambiente, identificadas em 
adesivo ou esparadrapo e enviadas ao la-
boratório em no máximo 48 horas junta-
mente com as informações relacionadas.
Figura 5: Amostra de urina
Fonte: http://br.images.search.yahoo.com/
Figura 6: Swab para coleta.
Fonte: http://br.images.search.yahoo.com/
Figura 7: Amostra em lâmina. Fonte: http://www.upf.br/ppg-
bioexperimentacao/index.php/infraestrutura/laboratorios
REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS
• http://www.agencia.fiocruz.br/
• SIMON, C. F.; FISCHER, C. B. D.; SILVEIRA, F.; ALLGAYER, M. C. Patologia clínica: colheita, conservação 
e remessa de amostras. Veterinária em Foco. Canoas. v.4. n.2. jan./jun. 2007. p.131-141. Disponível em <http://
www.imuno.com.br/novo/site/docs_vet/siimon_fischerv4n2.pdf.
• http://www.labmedvet.blogspot.com.br/
• Chaves Borges, F.A., Mineo, J.R. Medidas de Biossegurança em laboratórios. UFU. 1997.
• World Health Organization. Laboratory biosafety manual. 2ª. 2003.
MEDICINA VETERINÁRIA PREVENTIVA
16
1. INTRODUÇÃO
A idade adulta e a velhice no cão dife-
rem de raça para raça, em geral as raças 
de pequeno porte vivem mais que as de 
grande porte, mas a idade que o cão atin-
girá também depende da criação e dos 
cuidados que recebeu durante a vida, que 
dura entre dez e quinze anos em média.
Como acontece com os humanos, o 
pêlo pode fi car esbranquiçado com a 
idade e a pele mais frágil e fl exível. sen-
do assim, o dono deve ter cuidado para 
evitar ferimentos no animal, pois nesta 
idade a recuperação do organismo tam-
bém é mais lenta e há uma diminuição 
no funcionamento do sistema imunoló-
gico, o que pode tornar perigosa uma in-
fl amação. Existem alguns problemas de 
saúde típicos da idade avançada como a 
osteoporose, perda relativa da visão e do 
olfato. Além destas existem outros pro-
blemas fi siológicos e de comportamento 
dos quais trataremos.
Dentre os problemas fi siológicos es-
tão os cardíacos. Pode haver dilatação 
do coração ou problemas nas válvulas 
cardíacas. Pode ocorrer também a insu-
fi ciência renal crônica, quando há perda 
de 75% dos néfrons dos rins. Este é um 
problema sério e deve ser tratado o quan-
to antes. Pode ocorrer acúmulo de tártaro 
nos dentes, o que pode levar a infecções 
nas gengivas, mau-hálito e perda de den-
tes se não forem retirados. Pode ocorrer 
também a “prisão de ventre”, mas este 
problema tende a ser evitado por uma 
alimentação adequada.
Outros problemas, apesar de aparece-
rem em todas as idades, se tornam mais 
frequentes no cão idoso como dermati-
tes, problemas de visão e aparecimento 
de tumores benignos ou malignos.
2. MUDANÇAS NO PêLO E PELE
O cão idoso pode apresentar gradu-
al embranquecimento dos pêlos, prin-
cipalmente no focinho e ao redor dos 
olhos. seu pêlo pode se tornar mais fi no 
e sem brilho, ainda que isto também 
possa ser sintoma de doença ou defi ci-
ências nutricionais.
A pele dos cães mais idosos torna-se 
mais fi na, menos elástica e mais pro-
pensa a ferimentos. Alguns cães podem 
também desenvolver múltiplos tumores 
benignos de pele (ou verrugas) que não 
devem ser removidos antes de uma ava-
liação clínica e laboratorial.
3. DECRÉSCIMO NA 
MOBILIDADE
A artrite tem uma ocorrência bastante 
comum em cães idosos, especialmente 
em cães de grande porte ou em cães com 
um espaço maior entre as patas diantei-
ras e traseiras, como os Dachshunds e 
Bassets, raças com tendência a doenças 
intervertebrais (do IV disco). Cães que 
tiveram acidentes ou algum problema 
em suas articulações quando jovens tam-
bém têm tendência a desenvolver artrite 
quando envelhecem. Assim como nos 
humanos, a artrite pode causar apenas 
um pequeno enrijecimento ou se tornar 
uma limitação debilitante e terrivelmen-
te dolorosa. Os cães podem ter difi cul-
dades em subir ou descer escadas, pular 
para dentro do carro ou mesmo ergue-
rem-se rapidamente quando acordam.
4. DECRÉSCIMO NO 
SISTEMA IMUNOLÓGICO
Outra decorrência do envelhecimento: 
o sistema imunológico já não funciona 
de modo efi ciente e o cão idoso está mais 
sujeito a desenvolver doenças infeccio-
sas e, nestes casos, a infecção se apresen-
ta com mais gravidade do que num cão 
PARÂMETROS CLíNICO-LABORATORIAIS NO CÃO IDOSO
Fonte: http://www.superbwallpapers.com/animals/old-dog-in-the-forest-26289/
JOVEM
ADULTO
IDOSO
IDADE DO SEU CÃO
IDADE CORRESPONDENTE AO HOMEM
Tamanho do seu cachorro
Pequeno Médio Grande Gigante
6 meses
1 ano
1 ano e 1/2
2 anos
4 anos
6 anos
8 anos
10 anos
12 anos
14 anos
16 anos
18 anos
20 anos
17 anos
22 anos
25 anos
27 anos
29 anos
36 anos
46 anos
55 anos
62 anos
68 anos
76 anos
87 anos
99 anos
8 anos
12 anos
20 anos
23 anos
39 anos
51 anos
63 anos
75 anos
82 anos
98 anos
6 anos
8 anos
12 anos
16 anos
22 anos
40 anos
-
55 anos
75 anos
94 anos
8 anos
12 anos
16 anos
22 anos
40 anos
55 anos
-
75 anos
94 anos
GERIATRIA
17
jovem. É importante manter seu velho 
amigo com todas as vacinas em dia. In-
festações de pulgas, carrapatos e vermes 
devem ser imediatamente combatidas.
5. DIMINUIÇÃO DA
FUNÇÃO CARDÍACA
À medida que o coração de seu amigo 
canino envelhece, ele perde um pouco 
de sua eficiência e deixa de ser capaz de 
bombear a quantidade de sangue neces-
sária (num certo intervalo de tempo). As 
válvulas do coração perdem um pouco de 
sua elasticidade e isto também contribui 
para uma diminuição de sua eficiência de 
bombeamento. A válvula mitral é a que 
está mais comumente envolvida nestes 
quadros, especialmente entre as raças pe-
quenas. Alguma mudança na função car-
díaca é normal. Entretanto, as mudanças 
mais severas podem ocorrer em cães que 
tiveram algum problema cardíaco quan-
do jovens, apresentam algum problema 
congênito ou, como nos humanos, quan-
do estão muito acima do peso adequado. 
Exames para um diagnóstico correto de-
vem ser feitos.
6. DIMINUIÇÃO DA
 FUNÇÃO PULMONAR
Os pulmões também perdem sua 
elasticidade durante o processo de 
envelhecimento e a capacidade de 
oxigenar o sangue também pode estar 
diminuída. Alguns problemas cardía-
cos podem fazer refluir líquidos para 
os pulmões que, gradualmente, ocu-
pam o espaço do ar tornando o cão 
ofegante e facilmente cansável. Cães 
idosos também têm mais tendência a 
terem infecções respiratórias.
7. DIMINUIÇÃO DA 
FUNÇÃO RENAL
Com a idade, os animais correm um 
maior risco de doenças renais. Isto pode 
ser devido a mudanças no próprio rim 
ou como resultado da disfunção de ou-
tros órgãos, como o coração - que se não 
estiver funcionandodireito, diminuirá o 
fluxo sanguíneo ao rim. A função renal 
pode ser medida através de exames bio-
químicos no sangue e análise de urina. 
Estes testes podem identificar problemas 
antes que sintomas físicos os denunciem. 
O mais frequente sinal de doença renal 
que pode ser observado pelos donos é o 
aumento marcado no consumo de água 
e na eliminação de urina, mas isso ge-
ralmente não ocorre até mais ou menos 
70% da função renal estar perdida.
8. DIMINUIÇÃO DA
FUNÇÃO DO FÍGADO
Apesar de o fígado ser um órgão incrí-
vel e único na sua capacidade de regene-
ração, envelhece do mesmo modo que os 
demais órgãos do corpo. sua habilidade 
de desintoxicar o sangue e de produzir 
numerosas enzimas e proteínas diminui 
com a idade.
Algumas vezes as enzimas podem 
estar aumentadas de forma anormal 
num animal aparentemente normal e 
saudável. Outras vezes num animal com 
doença hepática aparente, a análise das 
enzimas acusa um resultado normal. Isto, 
naturalmente, dificulta bastante a inter-
pretação destes testes.
E porque o fígado metaboliza muitos 
medicamentos e anestésicos, a dose des-
tas drogas deve ser diminuída se a função 
hepática já não está mais normal. Testes 
pré-anestésicos devem ser realizados 
para evitarem problemas potenciais em 
caso da necessidade de alguma cirurgia.
9. MUDANÇAS NA
FUNÇÃO GLANDULAR
Algumas glândulas tendem a produzir 
menos hormônios à medida que enve-
lhecem, outras, ao contrário, tendem a 
produzir mais. Problemas hormonais são 
comuns em cães idosos, e a propensão de 
criarem problemas está, com freqüência, 
relacionada com a raça e/ou a linhagem. 
Os Golden Retrievers, por exemplo, têm 
uma tendência muito grande a desenvol-
verem hipotireoidismo. Exames de san-
gue auxiliam a diagnosticar tais doenças.
10. ALARGAMENTO
DA PRÓSTATA
O homem e o cachorro são seres que 
possuem próstata. quando um macho, 
que não foi castrado, chega aos 8 anos de 
idade, ele tem 80% de chances de desen-
volver doenças da próstata, mas estas ra-
ramente são cancerosas. Na maioria dos 
casos a próstata apenas alarga-se. O alar-
gamento da próstata, entretanto, pode 
causar problemas para urinar ou defecar. 
Cães machos idosos, especialmente os 
não castrados, deveriam ter sua glândula 
checada regularmente.
11. MUDANÇAS NAS
GLÂNDULAS MAMÁRIAS
As fêmeas podem desenvolver algum 
enrijecimento das glândulas mamárias 
com a idade devido à infiltração de te-
cido fibroso. Neoplasia mamária, em 
fêmeas não castradas, é bastante comum 
tanto quanto nos humanos. Isso aconte-
ce a tal ponto que o câncer de mama é 
o tumor mais comum da fêmea idosa e 
também o mais maligno. As fêmeas ido-
sas devem ter suas mamas checadas pelo 
veterinário regularmente e também por 
seus donos: basta virá-las de barriga para 
cima e apalpar suavemente cada mama, 
em busca de nódulos duros, verrugas ou 
outras alterações.
12. MEDULA SUBSTITUÍDA POR 
GORDURA
Os cães idosos têm tendência a acu-
mularem mais gordura. Esta gordura 
também se infiltra na medula, que é a 
responsável por criar as células verme-
lhas no sangue (que são as células que 
carregam e distribuem o oxigênio no 
organismo), as células brancas (que com-
batem as infecções, etc.) e as plaquetas 
(que auxiliam a coagulação). se a medula 
é substituída por gordura de modo exa-
gerado, o cão pode tornar-se anêmico. 
Esta é uma das razões pelas quais é re-
comendado que os cães façam um exame 
completo de sangue como parte de seu 
check-up anual.
Figura 1 – A degradação enzimática das cartilagens 
favorece a imobilidade articular no cão idoso. Fonte: publica-
tions.royalcanin.co2
GERIATRIA
18
DOÊNÇAS COMUNS
CÂNCER
ARTRITE
DOENÇA/
INSUFICIÊNCIA RENAL 
HIPOTIREOIDISMO
OLHOS SECOS
EPILEPSIA
COD - EXAMES (sugestões) 
• 649- IMUNO-HISTOQUÍMICA (1 MARCADOR)
• 648- IMUNO-HISTOQUÍMICA (PAINEL GERAL)
• 86- HISTOPATOLOGICO – HE
• 644- HISTOPATOLOGICO COM MARGEM CIRURGICA 
(BIOPSIA)
• 87- CITOLOGIAS - PET 
• 535- PROTEINA C REATIVA - PCR
• 349- PERFIL RENAL (UREIA E CREATININA)
• 234- URINA ROTINA
• 696- PERFIL DE HIPOTIREOIDISMO - RIE
• 39- HEMOGRAMA COMPLETO
• 97- COLESTEROL TOTAL E FRAÇÔES
• 101- FOSFATASE ALCALINA
• 73- T4 LIVRE RIE
• 71- TSH
• 51- CULTURA C/ ANTIBIOGRAMA 
• 169- ANÁLISE DE LIQUOR
• 100- DOSAGEM DE FENOBARBITAL
• Inchaços anormais que persistem ou continuam a crescer;
• Feridas que não cicatrizam;
• Perda de peso;
• Perda de apetite;
• Sangramento ou descarga de qualquer órgão aberto;
• Odor desagradável;
• Dificuldade em comer ou engolir;
• Hesitação ao exercício ou perda de resistência;
• Dificuldade em respirar, urinar ou defecar;
• Dificuldade de permanecer de pé;
• Dificuldade para subir degraus e/ou saltar;
• Mudanças de comportamento – irritável/ recluso;
• Perda de massa muscular;
• Aumento do ato de urinar e sede; Perda de peso;
• Vômitos; Perda de apetite; Fraqueza;
• Mucosas pálidas;
• Diarréia;
• Sangue no vômito ou fezes enegrecidas;
• Úlceras orais e mau hálito;
• Mudanças de comportamento;
DOENÇAS PROSTRANTES • 234- URINA ROTINA
• 788- CHECK UP GLOBAL DE FUNÇÕES COM HEMOGRAMA
• Urina concentrada;
• Sangue na urina;
• Ganho de peso;
• Pele seca e fina;
• Letargia, depressão;
DOENÇA DE CUSHING
• 334- PERFIL HIPERADRENOCORTICISMO
• 39- HEMOGRAMA COMPLETO
• 110-SÓDIO E 108-POTÁSSIO
• 114- URÉIA
• 621- CORTISOL PÓS SUPRESSÃO C/ DEXAMETASONA 
(3 DOSAGENS) RIE
• Pele e pelagem fina;
• Aumento de sede e micção;
• Aumento do apetite;
• Abdômen distendido (“barrigudo”)
• Grandes quantidades de descargas amarelo-esverdeadas dos olhos;
• Animal apreensivo.
SINAIS E SINTOMAS
O TECSA Laboratórios tem sempre a preocupação em auxiliar o veterinário clínico em perfis de exames que lhe darão a ajuda necessária 
no esclarecimento do diagnóstico de cada caso. Veja abaixo alguns sinais e as respectivas doenças associadas em Cães Idosos. A partir 
destas hipóteses diagnósticas você pode escolher os melhores exames.
DOENÇA INFLAMATÓRIA INTESTINAL
DIABETES MELLITUS
• 788- CHECK UP GLOBAL DE FUNÇÕES COM 
HEMOGRAMA 
• 63- EXAME PARASITOLOGICO DE FEZES
• 732-PARVOVIROSE (PCR QUALITATIVO)
• 393- COPROCULTURA
• 581- PERFIL GLICEMICO (GLICOSE, GLICOHEMO-
GLOBINA, FRUTOSAMINA, INSULINA)
• 124- CURVA GLICEMICA
• 234- URINA ROTINA 
DOENÇAS GASTROINTESTINAIS
• 788- CHECK UP GLOBAL DE FUNÇÕES COM 
HEMOGRAMA 
• 63- EXAME PARASITOLOGICO DE FEZES
• 732-PARVOVIROSE (PCR QUALITATIVO)
• 393- COPROCULTURA
• Vomito e diarréia;
• Perda do apetite e de peso;
• Sangue nas fezes;
• Fezes enegrecidas (melena)
• Diarréia;
• Vômito;
• Muco ou sangue nas fezes;
• Aumento da freqüência da defecação.
• Aumento da sede e micção;
• Perda de peso;
• Fraqueza, depressão;
• Vômitos;
OBESIDADE
ANEMIA
DOENÇAS HEPÁTICAS
CÁLCULOS RENAIS
• 339- PERFIL OBESIDADE
• 39- HEMOGRAMA COMPLETO
• 71- TSH e 73- T4 LIVRE RIE
• 68- DOSAGEM DE CORTISOL BASAL RIE
• 97- COLESTEROL TOTAL E FRAÇÔES
• 105- GLICOSE – GLICEMIA
• 349- PERFIL RENAL (UREIA e CREATININA)
• 39- HEMOGRAMA COMPLETO
• 273- FERRO SERICO
• 311- TRANSFERRINA 
• 333- PERFIL HEPÁTICO (BILIRRUBINAS, PROTEINA 
TOTAL E FRAÇÕES, TGP (ALT) e TGO (AST), LIPIDES 
TOTAIS, FOSFATASE ALCALINA)
• 234- URINA ROTINA 
• 213- ANALISE DE CALCULO URINARIO
• Excesso de peso;
• Intolerância ao exercício;
• Dificuldade para andar ou levantar-se;
• Pêlo despenteado, especialmente na região anal
• Intolerância ao exercício;
• Mucosas fracamente coradas.
• Vômitos;
• Perda de apetite;
• Mudanças de comportamento;
• Mucosas pálidas ou amareladas;
• Dificuldade de urinar e/ou sangue na urina;
• Pode não demonstrar sinais.
GERIATRIA
19
1. INTRODUÇÃO
A Dermatite Atópica (DA) é uma do-
ença inflamatória da pele, recidivante e de 
caráter crônico,caracterizada por prurido 
intenso, com eritema, alopecia, pápulas e 
colaretes epidérmicos. A DA acaba cau-
sando incômodo tanto para os proprietá-
rios quanto para os animais, uma vez que 
a coceira acaba por deixar os proprietários 
incomodados e o animal pode acabar se le-
sionando de tanto se coçar. Algumas vezes 
o prurido é tãointenso que o animal deixa 
de brincar, de interagir com seu dono e de 
se alimentar adequadamente.
É uma das causas mais comuns de do-
ença inflamatória crônica recorrente de 
pele ,em que estão envolvidas comple-
xas interações entre fatores ambientais, 
microbianos, genéticos, imunológicos e 
farmacológicos.Como ocorre com ou-
tras manifestações alérgicas, é possível 
que várias doenças sejam englobadas na 
denominação de DA com características 
clínicas semelhantes. 
Assim como outras doenças atópicas, 
os sintomas da DA envolvem a intera-
ção de múltiplos genes, do ambiente e 
do sistema imunológico.
2. FATORES DE RISCO
A elevação de casos de doenças alérgi-
cas, incluindo DA, torna fundamental o 
estabelecimento de fatores de risco para 
possíveis intervenções. Na DA, fatores 
hereditários, imunológicos e ambientais 
são os de maior importância.
• Pais e irmãos com atopia esta-
belecem um importante fator de risco ao 
desenvolvimento da DA. Caso ambos os 
pais apresentem DA a chance dos filhotes 
em desenvolver a doença é de aproxima-
damente 70%. 
• Alguns estudos têm tentado 
identificar marcadores imunológicos para 
o desenvolvimento de doenças alérgicas, 
entre elas a DA. É importante salientar 
que é muito comum a associação de DA 
com outras doenças alérgicas.
• Alérgenos presentes em tecidos 
sintéticos, carpetes, agentes de limpeza, em 
plantas e em gramíneas podem causar um 
incômodo levando a uma irritação mecâ-
nica, isso acaba modificando o ph tegu-
mentar e alterando a barreira epidermal. 
Tudo isso leva a uma resposta inflamató-
ria exacerbada e, consequentemente, a um 
prurido intenso no cão atópico.
3. ETIOPATOGENIA
A DA não tem uma etiopatogenia to-
talmente esclarecida. Tem sido encontrada 
uma relação complexa envolvendo fatores 
genéticos, imunitários, ambientais, farma-
cológicos e alteração da própria estrutura 
da pele. A DA, recentemente, foi classifi-
cada em extrínseca e intrínseca. A extrín-
seca ou alérgica atinge 70 a 80% dos pa-
cientes com DA e está relacionada com a 
sensibilização contra alérgenos ambientais 
e níveis elevados de IgE. Já na intrínseca 
ou não alérgica, que ocorre em 20 a 30% 
dos casos, são encontrados baixos níveis de 
IgE e ausência de detecção de sensibiliza-
ção alérgica.
A pele do paciente com DA está sempre 
mais suscetível a colonizações ou a infec-
ções por microrganismos. O staphylococ-
cus sp coloniza mais de 90% de lesões de 
pacientes que tenham DA, podendo exa-
cerbá-las ou mantê-las, também tem sido 
isolado de pele não lesionada. Alguns si-
nais clínicos como aumento de exsudação 
e pequenas pústulas superficiais são indi-
cadores sensíveis de DA infectada. O fato 
DERMATITE ATÓPICA – DIAGNÓSTICO 
CADA VEZ MAIS COMUM NOS CÃES
de se coçar facilita a colonização bacteriana 
por acarretar solução de continuidade da 
barreira cutânea.
Os fungos também estão entre os fato-
res desencadeantes de DA, principalmen-
te os do gênero malassezia. há relatos de 
casos em que houve essa relação e foi em 
forma de DA de difícil tratamento. A IgE 
específica para malassezia é encontrada 
em grande parte dos pacientes atópicos.
Alguns estudos têm mostrado a im-
portância dos aeroalérgenos em provocar 
ou agravar as lesões eczematosas da DA. 
Entre esses aeroalérgenos destacam-se os 
ácaros da poeira domiciliar, as baratas e 
os fungos. Os alérgenos de ácaros são os 
mais envolvidos na sensibilização atópica. 
Alguns representantes principais são o 
Dermatophagoidespteronyssinus, Der-
matophagoides farinae e Blomiatropicalis. 
Eles podem atravessar a barreira córnea e 
penetrar profundamente na epiderme, ge-
ralmente ocorre na DA pelo fato de haver 
pele lesionada. Outros alérgenos associa-
dos a DA são pólens de arbustos, de ervas 
daninhas e de gramíneas. 
4. SINAIS CLÍNICOS
A DA pode apresentar quadros clínicos 
variados, desde formas mais leves e loca-
lizadas, até formas mais graves e dissemi-
nadas pelo corpo do animal. O prurido é 
o sinal clínico clássico da DA. Devido e 
Figura 1: Na dermatite atópica precoce a coceira é muitas 
vezes sazonal e a pele parece normal.Os cães tendem a se 
coçar todo, mas muitas vezes se concentram nas orelhas, 
axilas e no abdome. Eles também mastigam e esfregam os 
pés, virilha e rosto. Fonte: County Vets. (1)
Figura 2: Algumas gramíneas estão entre os alérgenos 
que acometem os cães.
Fonte: Bonny Bonita Berkovec (2)
21
DERMATOLOGIA
esse prurido há presença de hipotricose, alopecia, escoriações, ulcerações, pápulas, pústulas, 
crostas e liquenifi cação. A infecção secundária é comum devido à cronicidade, apresentan-
do hiperqueratose, hiperpigmentação, liquenifi cação tegumentar e, na maioria das vezes, 
associada à seborreia seca. A DA é conhecida não como uma lesão que coça, mas sim um 
prurido que lesa. De acordo com alguns estudos, os sinais clínicos geralmente iniciam en-
tre os seis meses e três anos de idade. Alguns autores têm demonstrado que há uma maior 
incidência em fêmeas, isso ainda não foi comprovado. Embora possa ocorrer em qualquer 
cão, algumas raças são mais predispostas, como por exemplo, shar Pei, West highland 
White Terrier, Lhasa Apso, shih Tzu, Dálmata, Pug, Golden Retriever, Boxer, Labrador, 
schnauzer, Pastor Belga, entre outras.
Na DA as lesões tem predileção por determinadas áreas, como por exemplo, membros 
torácicos e pélvicos, tanto nas extremidades, quanto nas áreas fl exurais, nas orelhas, na 
face (regiões perilabiais, perioculares e mentonianas), na superfície ventral (região cervical 
ventral, axilas, abdômen, e região inguinal), e na região perianal.
Em 86% dos cães com DA há presença de otite externa associada à infecção bacteriana 
Figura 3: Alopecia, hiperqueratose, DA crônica e severa.
Fonte: County Vets (1).
MATERIAL
Sangue total (3,0 mL) colhido em tubo de tampa vermelha ou 1,0 mL de soro sem hemólise
Sangue total (3,0 mL) colhido em tubo de tampa vermelha ou 1,0 mL de soro sem hemólise
Sangue total (3,0 mL) colhido em tubo de tampa vermelha ou 1,0 mL de soro sem hemólise
Pêlos arrancados gentilmente de forma a preservar a integridade de sua estrutura
Raspados de pele e pêlo superficiais e profundos
Raspados de pele e pêlo superficiais e profundos
Raspados de pele e pêlo superficiais e profundos. Cepa de fungo isolado em cultivo
Sangue total (3,0 mL) colhido em tubo de tampa vermelha ou 1,0 mL de soro sem hemólise
Sangue total (3,0 mL) colhido em tubo de tampa vermelha ou 1,0 mL de soro sem hemólise
Raspados de pele e pêlo superficiais e profundos
Raspados de pele e pêlo superficiais e profundos. Cepa de fungo isolado em cultivo
685 / TESTE ALERGICO PAINEL C/ 36 ALERGENOS
686 / TESTE ALERGICO PAINEL C/ 24 ALERGENOS 
683 / TESTE ALERGICO TRIAGEM SCREENING 
736 / TRICOGRAMA (AVALIACAO MORFOLOGICA MICROSCOPICA DE PELOS)
355 / PESQUISA DE SARNA E FUNGOS
51 / CULTURA C/ ANTIBIOGRAMA
759 / CULTURA DE FUNGOS COM ANTIFUNGIGRAMA
PRAZO DIAS
7 dias
7 dias
2 dias
3 dias
1 dia
5 dias
30 dias
COD/EXAMES
ou a malassezia sp. Já em 68% dos pacientes a piodermite superfi cial (impetigo ou foliculite) ou profunda (celulite) está presente.
5. PROFILAXIA
A eliminação dos fatores desencadeantes da alergia no animal é de fundamental importância no manejo desses pacientes, assim como 
evitar o contato dos mesmos com os alérgenos. sendo assim, deve-se evitar, por exemplo, o contato do animal com vegetais, com locais 
empoeirados, eliminar almofadas, caminhas, cobertores e outros objetos que possam acumular ácaros. quando por saliva de pulga, evitar 
que o animal tenha esses ectoparasitos. Ou seja, de acordo com a alergia do animal evitar a presença do alérgeno.
Para auxiliar o animal a reduzir as reações alérgicas o TECsA disponibiliza a hEsKA ImmuCEPT, que é um tratamento imuno-
terápico indicado como controle e prevenção dos sintomas associados à atopia. De acordo com estudos recentes o número de alérgenos 
selecionados para a produção da vacina deve ser o mínimo possível. Em casos de múltiplas reações positivas obtidas, as reações mais fortessão os alérgenos mais importantes clinicamente que devem ser selecionados para o tratamento. Para otimização do tratamento é recomen-
dado que não sejam utilizados mais de 10 (dez) alérgenos.
6. DIAGNÓSTICO
O diagnóstico da DA deve ser baseado no histórico do paciente, em uma anamnese completa e em um exame clínico sistemático, iden-
tifi cando as lesões primárias na pele do animal quando essas estiverem presentes. É importante também sempre se lembrar dos possíveis 
diagnósticos diferenciais que podem levar a um diagnóstico errôneo.
A avaliação laboratorial fornece auxílio para identifi car os agentes provocadores da DA, e de outras possíveis dermatopatias.Isso é de 
grande importância para que o tratamento e as orientações que serão passadas ao proprietário do paciente sejam feitos de forma adequada. 
No TECsA são realizados exames importantes que auxiliam nos diagnósticos de várias dermatopatias. O tricograma é importante para 
que seja feita uma avaliação do pelo, desde as pontas, hastes até as raízes, permitindo identifi car a fase de crescimento em que o pelo está, 
se há alteração na pigmentação e, às vezes, se há infecção por fungo. A pesquisa de sarnas e fungos está entre os exames complementares 
mais usados na área de dermatologia veterinária. Cultura fúngica e bacteriana, com fungigrama e antibiograma, respectivamente. 
Além desses exames complementares, existem os testes específi cos com painéis de 24 e 36 alérgenosque auxiliam na detecção dos cau-
sadores da alergia no animal. Nesses testes serão dosadas Imunoglobulinas E (IgE) vinculadas a cada alérgeno pesquisado.
Referências:
• 1. Itchy Pet. County Vets. [Online] [Citado em: 25 de Maio de 2014.] http://www.county-vets.co.uk/veterinary-services/small-animals/dogs/itchy-pet/.
• 2. Berkovec, Bonny Bonita. All Natural Pet Care.com . [Online] 23 de Agosto de 2012. [Citado em: 25 de Maio de 2014.] http://allnaturalpetcare.com/blog/2012/08/23/natural_treat-
ment-allergic-atopic-dermatitis-skin_allergies-dogs-shampoo-recipe/.
• 3. Patel, Anita e Forsythe, Peter. Dermatologia em Pequenos Animais. Saunders Elsevier. 
• 4. Castro, Ana Paula M. et al. Guia Prático para o Manejo da Dermatite Atópica. Artigo de Atualização. 20 de Dezembro de 2006.
22
DERMATOLOGIA
ENTENDENDO A ALERGOLOGIA VETERINÁRIA
1. INTRODUÇÃO
Em medicina veterinária, as alergias 
constituem 70% das dermatopatias 
atendidas, sendo a “coceira” a principal 
queixa dos proprietários, com exceção 
aos felinos, que são considerados “coça-
dores silenciosos”.
sua importância deve-se ao fato 
de se constituírem a causa primária 
de problemas de pele persistentes em 
pets, estando diretamente ligadas a um 
diagnóstico trabalhoso, recorrência das 
crises e incômodos aos proprietários 
devido a aparência dos animais e odor 
desagradável de algumas lesões.
2. O QUE É ALERGIA?
O termo alergia refere-se a uma res-
posta imunológica exagerada (hiper-
sensibilidade) a um estímulo antigênico 
externo específico (alérgenos), provo-
cando uma lesão tecidual resultante da 
não eliminação de antígenos/patógenos 
pelo organismo. Essa ocorre por ocasião 
de uma segunda provocação, ou estímu-
lo subseqüente com o alérgeno (antíge-
no causador de alergia).
3. QUAIS AS CAUSAS DE ALERGIA?
As causas de alergia estão ligadas a heredi-
tariedade, ingestão, inalação ou contato com 
alergênicos. Os principais alergênicos são:
• Pólen;
• Fungos/bolores;
• Ácaros;
• Pó / poeira;
• Alimentos;
• Substâncias químicas (produ-
tos industriais, saliva de artrópodes - 
DAAP), medicamentos.
4. QUAIS OS TIPOS DE HIPER-
SENSIBILIDADES ENvOLvIDOS 
NOS PROCESSOS ALÉRGICOS?
Os processos alérgicos envolvem ba-
sicamente dois tipos de hipersensibili-
dade, seguindo uma simples classifica-
ção baseada principalmente na variação 
de tempo decorrido entre contato do 
organismo sensibilizado com antígeno e 
a visualização macroscópica do fenôme-
no alérgico. hipersensibilidade Imedia-
ta (tipo I) e hipersesnibilidade Tardia 
(tipo IV).
A hipersensibilidade do tipo I é cara-
terizada por uma resposta de IgE, mas-
tócitos e basófilos podendo se apresentar 
de forma instantânea, minutos ou pou-
cas horas depois do contato com alérge-
nos. As reações envolvidas são anafilaxia, 
as reações citotóxicas e as reações devi-
das a determinados tipos de complexos 
antígeno-anticorpo determinando al-
terações teciduais. Fisiologicamente, na 
hipersensibilidade tipo I tem se uma fase 
incial de liberação abundante de hista-
mina seguida de leucotrienos. A atopia, 
doença de carácter hereditário, consti-
tui-se um exemplo de reação tipo I, na 
qual há a produção de IgE anti-alérge-
nos ambientais e grande concentração.
Já a hipersensibilidade tipo IV ou tar-
dia é caracterizada pela sensibilização de 
linfócitos T, determinando o aporte de 
células inflamatórias (linfócitos e macró-
fagos) ao local de estímulo antigênico. A 
dermatite de contato é um exemplo clá-
sico de reação do tipo IV.
5. QUAIS OS FATORES INTENSI-
FICADORES DOS PROCESSOS 
ALÉRGICOS?
• Aero-alérgenos: ácaros e poei-
ras domésticas.
• Trofo-alérgenos: proteínas de 
carnes bovina, suína, equina e de frango, 
do leite (caseína e lactona), do ovo, do 
trigo, da aveia e de derivados da soja ou 
em fungos e algas presentes a água.
• Irritantes: lã, tecidos sintéticos 
ou ásperos, carpetes, tapetes, agentes de 
limpeza ambiental ou de roupas, irritan-
tes químicos ou presentes na superfície 
de plantas ou gramíneas podem provo-
car irritação mecânica, modificar o ph 
tegumentar, alterar a barreira epidermal 
e exacerbar a resposta inflamatória.
• Auto-alérgenos: O trauma con-
tínuo da pele induzido pelo prurido tem 
conduzido à liberação de uma proteína 
citoplasmática do ceratinócito que tem a 
capacidade de ativar células T, levar à for-
mação de IgE alérgeno-específico e à li-
beração de citocinas tipo Th1, realçando 
a resposta imunoalérgica e o prurido, sen-
do um dos responsáveis pela perpetuação, 
cronificando as lesões tegumentares.
• Alérgenos microbianos: ex-
cesso de citocinas Th2 determinam 
subexpressão de genes responsáveis pela 
formação de peptídeos antimicrobianos 
na pele levando assim a exacerbação e 
manutenção da dermatite.
• Alterações comportamentais: 
indução de ansiedade e atos compul-
sivos. Adicionalmente, a liberação de 
neuropeptídeos por fibras nervosas epi-
dermais, induzida pelo estresse, tem sido 
relacionada à diminuição da apoptose e 
ao aumento da meia vida de eosinófi-
los, o que colabora para a iniciação ou a 
perpetuação dos sintomas relacionados 
à doença.
6. QUAIS AS PRINCIPAIS DOEN-
ÇAS ALÉRGICAS QUE ACOME-
TEM CÃES E GATOS?
As principais alergias em pets são: 
urticária e angioedema; hipersensi-
bilidade alimentar; Atopia canina e 
Dermatite alérgica a picada de pulgas. 
menos comuns tem-se ainda Rinite 
alérgica; Bronquite alérgica; Pneumoni-
te alérgica; Asma brônquica e Dermati-
te alérgica de contato.
Figura 1: Animal com prurido decorrente de um proces-
so alérgico.. Fonte: http://sobrecaesegatos.com.br/
Figura 2: Acarus siro (ácaro doméstico). Fonte: ces.csiro.au/
ALERGOLOGIA
23
A DAPP – Dermatite alérgica a pica-
da de pulgas é o primeiro distúrbio mais 
comum em cães. Ela envolve hipersen-
sibilidades do tipo I e IV em resposta 
a diferentes antígenos (+ de 15) pre-
sentes na saliva de pulga que determi-
nam uma reação basofílica cutânea. As 
lesões se manifestam como dermatite 
pruriginosa papular, seguidas de lesões 
secundárias como alopecia, liqueinifi ca-
ção, crostas e hiperpigmentação, sendo 
as áreas atingidas a lombo-sacra dorsal, 
coxas na porção caudomedial, abdômen 
ventral e fl ancos. Foliculite bacteriana, 
dermatite piotraumática e seborréia se-
cundária são comuns.
A atopia ou dermatose atópica é ou-
tra enfermidade de origem alérgica com 
incidência em 10% da população de ca-
ninos e felinos, sendo considerada o 2º 
distúrbio cutâneo alérgico mais comum 
em cães. Trata-se de uma doença infl a-
matória de origem genética cujo modo 
de herança ainda é desconhecido.sua 
patogenia envolve a hipersensibilida-
de do tipo 1 na qual imunoglobulinas 
IgE e IgG são produzidas em resposta 
à sensibilização e a antígenos ambien-
tais, determinando assim uma afecção 
pruriginosa sem lesão. Apenas 40% dos 
cães apresentam prurido generalizado. 
Locais como orelha, extremidade das 
patas, ventral, inguinal e axilas são os lo-
cais mais comumente afetados. Lesões 
de auto-trauma, foliculite bacteriana 
secundária e seborréia também podem 
ocorrer concomitantemente a infecções 
recorrentes por: staphylococcus inter-
medius e malassezia pachydermatis.
Lesões como otite externa e conjun-
tivite são achados em 50% dos casos. 
Infl amações como foliculite bacteriana, 
dermatite piotraumática e dermatite 
acral por lambedura em 68% dos ca-
sos. A seborréia constitui-se um achado 
menos freqüente, estando presente em 
apenas 12% dos cães. Em relação aos 
felinos, 0 a 50% apresentam alterações 
respiratórias como tosse, rinite, bron-
copneumonia e blefaroconjuntivite.
Já a hipersensibilidade alimentar, 
terceira causa mais comum de alergia 
(15%), está ligada a resposta imune a 
antígenos da dieta, em especial pro-
teínas de alto peso molecular (18 a 36 
Kilodaltons). O alérgeno mais comum 
é a carne bovina, seguido de produtos 
lácteos, frango, trigo, ovos, milho e soja. 
As manifestações clínicas envolvem 
principalmente o prurido. secundaria-
mente apresenta sinais cutâneos diver-
sos: pápulas, placas, pústulas, alopecia, 
liqueinifi cação, pigmentação, otite ex-
terna, seborréia e foliculite.
Por fi m, a urticária e angioedema são 
alterações incomuns nos cães e raras 
nos gatos, determinando geralmente 
quadros agudos. sua fi siopatogenia en-
volve a degranulação de mastócitos ou 
basófi los devido a causas diversas (ex: 
picada de inseto, vacina). Clinicamente 
apresentam-se como vergões prurigino-
sos ou não, durando menos de 24hs e 
tumefações grandes, respectivamente.
MATERIAL
SORO
SORO
SORO
SORO
SORO
FRAGMENTO DE TECIDO FIXADO EM FORMOL 10%
FRAGMENTO DE TECIDO FIXADO EM FORMOL 10%
RASPADO DE PELE
RASPADO DE PELE
SANGUE EM EDTA – TAMPA ROXA
Sangue total colhido em tubo de tampa cinza e em tubo de tampa vermelha
SORO
SORO
SORO
FRAGMENTO DE TECIDO FIXADO EM FORMOL 10%
RASPADO DE PELE
Sangue total colhido em tubo de tampa cinza e em tubo de tampa vermelha
683 / TESTE ALÉRGICO TRIAGEM - SCREENING 
688 / TESTE ALÉRGICO – ALERGIA À MALASSEZIA 
684 / TESTE ALÉRGICO – ALERGIA À PICADA (SALIVA) DE PULGA 
686 / TESTE ALÉRGICO – PAINEL COM 24 ALÉRGENOS 
685 / TESTE ALÉRGICO – PAINEL COM 36 ALÉRGENOS 
86 / EXAME HISTOPATOLÓGICO
650 / EXAME HISTOPATOLÓGICO – COLORAÇÃO ESPECIAL
355 / PESQUISA DE SARNA E FUNGOS
60 / PESQUISA DE ECTOPARASITOS
39 / HEMOGRAMA COMPLETO
570 / PERFIL CHECK UP GLOBAL DE FUNÇÕES
PRAZO DIAS
2 DIAS
7 DIAS
7 DIAS
7 DIAS
7 DIAS
4 DIAS
7 DIAS
1 DIA
2 DIAS
MESMO DIA
1 DIA
COD/EXAMES
ALERGOLOGIA
24
1. INTRODUÇÃO
A asma é uma doença crônica dos pulmões, na qual as vias respiratórias se estreitam 
e a respiração se torna mais difícil. As vias respiratórias em um animal asmático são 
extremamente sensíveis a certos fatores conhecidos como desencadeantes. quando 
estimuladas por esses desencadeantes, as vias respiratórias reagem desesperadamente 
com uma inflamação anormal que leva ao edema, aumento da secreção de muco e 
contração muscular das vias áreas.
O fluxo de ar normal é interrompido por esses fatores, entretanto, os sintomas são 
reversíveis e podem ocorrer horas depois de uma primeira crise.
Assim como os seres humanos, cães e gatos também são suscetíveis à asma, os fe-
linos, inclusive, são ainda mais suscetíveis. A asma em um animal de estimação pode 
ser agravada por alérgenos ou irritantes encontrados no ambiente do animal.
Os gatilhos mais comuns para os animais costumam ser a grama, poeira, pólen 
de árvores, fumaça do escapamento do carro, poluição do ar, fungos, mofo, cigarro, 
sprays domésticos e soluções químicas, tais como: sprays de cabelo, desodorantes, 
fragrâncias de material de limpeza, odorizadores de ambiente e sprays para pulgas. 
Também podem ser fatores para desencadear a asma: alergias alimentares, exercícios 
e sensibilidade ao frio ou calor.
2. E COMO IDENTIFICAR SE SEU ANIMAL DE ESTIMAÇÃO 
TEM ASMA?
O principal sintoma para reconhecer esta doença em cães e gatos é através da tosse e da dificuldade respiratória. Os gatos, quan-
do não conseguem respirar, mantém o pescoço esticado. Outros sintomas incluem aumento da frequência respiratória, letargia, 
engasgos, e lábios azulados. Nesses casos, leve-os logo ao veterinário.
3. GRUPO MAIS AFETADO
Cães e gatos de todas as idades po-
dem sofrer de asma, mas é mais preva-
lecente em jovens. Gatos siameses têm 
uma predisposição especial.
4. DIAGNÓSTICO
O diagnóstico da bronquite é feito 
baseado no histórico de tosse crônica 
com duração de dias ou meses na ausên-
cia de outras doenças ativas, bem como 
na presença de alterações características 
nas radiografias toráxicas. Porém nem 
todos pacientes com bronquite apresen-
tarão alterações nas radiografias. uma 
vez diagnosticado, existem diversos tra-
tamentos que podem ser adotados. En-
tretanto, apenas o veterinário é capaz de 
apontar o melhor caminho.
5. TESTES ALÉRGICOS DE 24/36 
ALÉRGENOS
Os Testes Alérgicos oferecidos pelo 
TECsA se baseiam na Dosagem de 
IgE Específico, produzido pelos linfó-
citos B ativados após o contato com o 
alérgeno. É o contato destes alérgenos 
com os anticorpos IgE presentes nas 
membranas de mastócitos que levam à 
ativação destas células, gerando libera-
ção de mediadores químicos que levam 
aos sinais clínicos.
É possível mensurar os níveis des-
tes anticorpos específicos através de 
testes sorológicos, sensíveis o bastante 
para identificar concentrações mínimas 
que podem ser prejudiciais ao animal. 
Interessante ressaltar que o teste dosa 
o IgE ligado ao mastócito, ou seja, a 
fração realmente ativa no processo de 
alergia. Não devemos confundir a DO-
sAGEm DE IgE com teste de provo-
cação (intradérmico).
A DOsAGEm DE IgE utiliza o 
sORO do animal, onde a reação de 
ELIsA busca por anticorpos IgE es-
pecíficos para cada alérgeno. O teste de 
provocação insere proteínas misturadas 
de alérgenos sobre a pele do animal 
através de uma agulha, onde se mede o 
halo de inflamação gerado. A superiori-
dade da sorologia se deve pela reação de 
ELIsA, que é mensurada por aparelhos 
calibrados e direcionados APENAs 
para este fim, garantindo sensibilidade 
e especificidade (superiores à 93%) in-
finitamente superior à do olho huma-
no ou qualquer método macroscópico, 
além disto, não existe desconforto para 
o paciente.
Conseguir identificar o alérgeno es-
pecífico que desencadeia o processo 
alérgico no animal é essencial para que 
o médico veterinário tenha sucesso no 
tratamento e na prevenção.
6. TRATAMENTO PARA ASMA
uma grande parte do sucesso do trata-
ASMA E BRONQUITE EM CÃES E GATOS 
Figura 1: Brônquio normal à esquerda e exemplo de bron-
quite à direita. Fonte: (1)
Figura 2: Os ácaros do pó estão entre os gatilhos mais 
comuns associados ao desenvolvimento e exacer-
bação de asma. Fonte: (2)
Figura 3: As radiografias dos pulmões são cruciais para 
se descartar condições que exigem um tratamento 
específico. Na bronquite, muco nas vias aéreas descre-
vem padrões com formas definidas, linhas paralelas ou 
círculos. Fonte: (3)
ALERGOLOGIA
25
mento da asma é determinar quais são os gatilhos. se os gatilhos forem identifi cados e forem eliminados, ela pode ser resolvida 
sem que seja necessário nenhum tratamento adicional. No entanto, raramente é possível identifi car todos os gatilhos, ou mesmo 
se eles estiverem identifi cados, pode ser impraticável eliminá-los. Nestes casos o seu animal pode precisar ser medicado por toda 
vida para evitar que novos ataques de asma ocorram.
O Tratamento medicamentoso pode ser feito com drogas terapêuticas convencionais:
- Broncodilatadores
- Corticosteróides
- Anti-histamínicos
7. TRATAMENTO COMA IMUNOTERAPIA SUBLINGUAL
O tratamento sublingual heska ImmuCEPT é indicado como uma ferramenta auxi-
liar para o alívio dos sintomas associados à doença em cães e gatos.
A partir dos resultados obtidos no teste alérgico sorológico, nós do TECsA disponibi-
lizamos a ImuNOTERAPIA EsPECíFICA, totalmente personalizada, desenvolvida 
unicamente para o animal utilizando proteínas dos alérgenos que se mostraram positivos 
nos ensaios. O tratamento não é agressivo e muito raramente o animal apresenta algum 
tipo de reação secundária, ou seja, é uma opção muito melhor do que o uso de corticóides 
que a médio prazo causam efeitos colaterais irreversíveis.
O objetivo da ImuNOTERAPIA é dessensibilizar o animal, ensinando o organismo 
a não montar uma resposta alérgica contra os alérgenos. As aplicações são fáceis já que são 
via oral/sublingual – a solução é doce e muito palatável. Os frascos são apresentados em 
3 rótulos ( “A, B, C”). A caixa com o tratamento inicial contem dois frascos, identifi cados 
como A e B. O tratamento deve se iniciar com o frasco A e quando o frasco for completa-
mente utilizado, comece a utilizar o frasco B. Os refi s seguintes também conterão 2 frascos, mas ambos identifi cados como C (manuten-
ção). Cada frasco tem volume sufi ciente para 75 dias de tratamento. O protocolo de administração não se altera, ou seja, qualquer que seja 
o frasco (A, B ou C), devem ser administradas 2 doses, 2 vezes por dia
A imunoterapia permite a redução signifi cativa na terapia farmacológica sintomática e ocasionalmente sua eliminação. Acredita-se que 
os efeitos benéfi cos da imunoterapia têm relação com a teoria do anticorpo de bloqueio, que propõe que o paciente responda formando 
anticorpos específi cos. Esses anticorpos circulantes são protetores, por se ligarem ao alérgenos invasores antes que esses atinjam as IgE´s.
Figura 4: Animais sendo tratados. Fonte : (4)
Figura 5: Vacinas de IMUNOTERAPIA:a esquerda a 
SUBCUTANEA e a direita a SUBLINGUAL. Fonte: 
heska, empresa Suíça parceira do TECSA
MATERIAL / COR TAMPA DO TUBO
Sangue tubo tampa vermelha
Sangue tubo tampa vermelha
Sangue tubo tampa vermelha
Swab com meio
Swab com meio
Sangue em tubo tampa Cinza, Roxa e Vermelha
Sangue tubo tampa vermelha
Sangue tubo tampa vermelha
Swab com meio
TESTE ALÉRGICO TRIAGEM - SCREENING
TESTE ALÉRGICO – PAINEL C/ 24 ALÉRGENOS
TESTE ALÉRGICO – PAINEL C/ 36 ALÉRGENOS
CULTURA COM ANTIBIOGRAMA COMBINADO (AEROBIOS E ANAEROBIOS)
BORDETELLA BRONCHISEPTICA - PESQUISA (CULTURA C/ATB)
CHECK UP GLOBAL DE FUNCOES COM HEMOGRAMA
PRAZO DIASCÓDIGO
2 DIAS
7 DIAS
7 DIAS
8 DIAS
5 DIAS
1 DIAS
683
686
685
576
225
788
COD/EXAMES
REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS
• ASTHMA in catsanddogs. In: THE WORLD PET ASSOCIATION.
• SYMPTOMS. In: FELINE asthma. Disponível em: www.felineasthma.org/symptoms/index.htm.
• http://www.chegadeasma.com.br/asma-em-animais/Acesso em: 08/07/2014
• 1. Geekie, Peter. Bronchitis Acute and Chronic - both in humans, cats and dogs. HubPages. [Online] [Citado em: 11 de Julho de 2014.] http://petergeekie.hubpages.com/hub/Bronchi-
tis-Acute-and-Chronic.
• 2. Martin, Gilles San. Dust mites ‘swarm’ around houses. BBC - Earth News. [Online] 21 de Dezembro de 2010. [Citado em: 11 de Julho de 2014.] http://news.bbc.co.uk/earth/hi/earth_news/
newsid_9290000/9290068.stm.
• 3. Brooks, Wendy. Canine Chronic Bronchitis. Marvistavet. [Online] 28 de Setembro de 2011. [Citado em: 11 de Julho de 2014.] http://www.marvistavet.com/html/canine_chronic_bronchitis.html.
• 4. Taylor, Kirsten. Feline Asthma: What to Know . Pawnation. [Online] 20 de Agosto de 2009. [Citado em: 11 de Julho de 2014.] http://www.pawnation.com/2009/08/20/what-you-need-to-know-
about-feline-asthma/.
ALERGOLOGIA
26
1. LEPTOSPIROSE
De acordo com o ministério da saú-
de (2010) a Leptospirose é uma doença 
infecciosa febril de início abrupto. O 
agente etiológico é uma bactéria heli-
coidal (espiroqueta) aeróbica obriga-
tória do gênero Leptospira, do qual se 
conhecem atualmente 14 espécies pato-
gênicas, sendo a mais estudada a L. in-
terrogans. Dentre os fatores ligados ao 
agente etiológico que favorecem a per-
sistência dos focos de leptospirose, de-
ve-se ressaltar a capacidade de sobrevi-
vência no meio ambiente (até 180 dias) 
e à ampla variedade de animais susce-
tíveis que podem hospedar o microrga-
nismo. O principal reservatório são os 
roedores, entretanto outros importantes 
reservatórios são: caninos, suínos, bovi-
nos, equinos, ovinos e caprinos.
Na fase precoce, as leptospiras podem 
ser visualizadas no sangue, já na fase 
tardia podem ser encontradas na urina. 
A detecção pode ser por meio de exame 
direto, de cultura em meios apropriados, 
exames sorológicos e soroaglutinação. 
Entretanto, são notórias as falhas em 
decorrência da possibilidade de reações 
cruzadas com outros microorganismos. 
sendo assim, para evitar “falsos-positi-
vos” seria necessário realizar exames de 
contraprova, como o exame parasitoló-
gico direto e a reação em cadeia pela po-
limerase (PCR, na sigla em inglês). Nes-
se caso, a mais efi ciente metodologia é a 
PCR em tempo Real (qPCR). Diversos 
estudos já demonstraram que, devido à 
elevada sensibilidade do qPCR, é possí-
vel desmascarar “falsos-positivos”, como 
também a detecção de patógenos em 
animais que haviam apresentado resul-
tados negativos à sorologia, elucidando, 
da mesma forma, os “falsos-negativos”. 
O PCR em tempo real é um exame im-
prescindível e muito sensível porque ele 
detecta especifi camente a presença do 
DNA do parasita.
2. ASPECTOS CLÍNICOS
Área Rural: dentre os animais de pro-
dução, explorados em ecossistemas rurais, as manifestações clínicas mais freqüentes 
atingem a esfera reprodutiva, incluindo o abortamento, usualmente no terço fi nal da 
gestação, alta mortalidade neonatal e redução na produção de leite. Além disso, já foi 
demonstrado que a Leptospirose pode ser responsável por surtos de uveítes (infl ama-
ções oculares) em rebanhos eqüinos, caprinos e ovinos.
Área Urbana: Dentre os animais de companhia mantidos em áreas urbanas, a 
leptospirose pode acometer o cão doméstico, provocando quadros febris com sinais 
variáveis de hemorragias, icterícia e uremia com alto grau de letalidade e óbito decor-
rente das insufi ciências hepática e renal.
3. DIAGNÓSTICO LABORATORIAL
Através de exames complementares podem se chegar ao diagnóstico da doença. 
Com isso nós do TECsA Laboratórios com o objetivo de auxiliar o clínico em suas 
decisões disponibilizamos uma série de exames.
4. TOXOPLASMOSE
A Toxoplasmose é uma enfermidade 
causada por um protozoário chamado 
Toxoplasma gondii. É uma doença in-
fecciosa e\ou congênita que acomete 
animais de produção (suínos, caprinos, 
bovinos, entre outros) e de estimação 
(principalmente gatos). similarmen-
te à Leptospirose é uma enfermidade 
que atinge a esfera reprodutiva, geran-
do abortos e nascimento de fetos mal 
formados, inclusive em seres humanos. 
Outra similaridade da Toxoplasmose 
com a Leptospirose é ser frequentemen-
te causadora de surtos de uveítes em di-
versas espécies animais.
Ocasionalmente, tais incidências po-
dem gerar dúvidas e confusões durante 
o diagnóstico veterinário. sendo assim, 
a qPCR, mais uma vez se destaca dentre 
tantas outras metodologias de diagnós-
tico, pois é a mais precisa na confi rma-
ção defi nitiva da presença do patógeno, 
seja ele bacteriano ou protozoário, como 
em casos de surtos de uveítes.
5. ASPECTOS CLÍNICOS
Casos benignos são descritos com 
quadros febris e discreto aumento gan-
glionar, até casos de grave comprome-
timento do sistema nervoso central, 
uveítes oculares, o aborto e mortalidade 
neonatal. A infecção é principalmente 
adquirida pela ingestão de cistos de T. 
gondii através de consumo de carne crua 
ou através de oocistos em alimentos 
contaminados por fezes de hospedeiros. 
Existe uma elevada soroprevalência de 
T. gondii nos gatos, mas a doença clíni-
ca é rara, pois é um ciclo enteroepitelial 
e não costuma produzir sinais clínicos 
além de corrimentoocular e fezes pas-
tosas a líquidas.
DIAGNÓSTICO DA LEPTOSPIROSE
E TOXOPLASMOSE POR PCR – REAL TIME
Tubo tampa vermelha
Urina
Sangue em EDTA, Urina ou Soro
Sangue em EDTA, Urina ou Soro
Tubo tampa vermelha, roxa e urina
Tubo tampa vermelha
Sangue em EDTA, Urina ou Soro
Tubo tampa vermelha, roxa e urina
Método de Microaglutinação
Pesquisa de Campo Escuro
PCR Real Time qualitativo
PCR Real Time quantitativo
Perfil diagnóstico completo
PRAZO DIASCÓDIGO
2 dias
2 dias
7 dias
7 dias
2 dias
81
376
785
786
526
COD/EXAMES MATERIAL
Figura 1: As espiroquetas de Leptospira sp. aparecem como 
linhas escuras no interior de túbulos renais e\ou lúmen. Fonte: 
an Overview of Canine Leptospirosis, sweetshimas.com.
BIOLOGIA MOLECULAR
27
O controle de tais enfermidades pas-
sa, necessariamente, pelo diagnóstico 
preciso. Em casos de animais domésti-
cos a fi m de evitar contaminações aos 
proprietários, e no caso de animais de 
produção, a partir do número de reativos 
em cada rebanho, avalia-se a conveniên-
cia de utilização de medidas sanitárias e 
de controle, tais como vacinação e trata-
mentos como antiparasitários, a fi m de 
evitar maiores perdas econômicas para 
o criador.
6. DIAGNÓSTICO LABORATORIAL
O diagnóstico se baseia na associação da sintomatologia clínica com os testes rea-
lizados no TECsA laboratórios. Possuímos o maior menu de exames do Brasil, e os 
seguintes exames são oferecidos com os respectivos prazos de entrega:
Figura 2: Cisto tecidual contendo bradizoítos. Fonte: Toxoplas-
ma gondii, www.ufrgs.br.
Figura: Taquizoítos de Toxoplasma gondii (setas). Fonte: 
Toxoplasma gondii, www.ufrgs.br.
Tudo tampa vermelha
Tudo tampa vermelha
Tudo tampa vermelha
Tudo tampa vermelha
Fragmento de tecido formalizado
Tubo tampa roxa
Tubo tampa roxa
Toxoplasmose Canina
Toxoplasmose Equina
Toxoplasmose Felina
Toxoplasmose + Clamidiose Felina
Imunohistoquímica
PCR Real Time qualitativo
PCR Real Time quantitativo
PRAZO DIASCÓDIGO
5 dias
5 dias
5 dias
1 dia
14 dias
7 dias
7 dias
307
309
82
305
653
733
783
COD/EXAMES MATERIAL
BIOLOGIA MOLECULAR
28
ANEMIA HEMOLÍTICA EM
CÃES E GATOS(1)
1. INTRODUÇÃO
A anemia é definida como uma altera-
ção dos componentes da série vermelha 
do sangue caracterizada pela diminuição 
de eritrócitos, concentração de hemo-
globina e/ou hematócrito em relação 
aos valores de referência para a idade e 
espécie animal.
 Constitui-se raramente em uma do-
ença primária e geralmente é o resultado 
de um processo (doença) generalizado. 
sendo assim, é necessário que se conheça 
a causa da anemia para que o tratamento 
racional seja empregado, pois ele não é 
direcionado por si só, para a anemia, ex-
ceto como uma medida de emergência.
2. HEMÓLISE
A hemólise é o processo normal de 
destruição dos eritrócitos velhos pelas 
células do sistema monocítico-fagocitá-
rio (smF). Eventualmente, pode haver 
um aumento da taxa de hemólise atin-
gindo inclusive os eritrócitos normais e 
resultando numa anemia hemolítica. 
A anemia por destruição acelerada 
dos eritrócitos pode ser causada por 
hemólise intra ou extravascular (fagoci-
tose). A hemólise intravascular pode ser 
causada por bactérias como Clostridium 
perfringens tipo A ou C, Clostridium 
hemolyticum, Leptospira sp, produtos 
químicos como a fenotiazina, cebola, 
azul de metileno e cobre. Já a hemóli-
se imunomediada pode ser causada por 
transfusão incompatível ou isoeritróli-
se neonatal. A hemólise extravascular 
é causada por parasitas de eritrócitos, 
como por exemplo mycoplasma hae-
mofelis, Anaplasma sp, Eperythrozoon 
sp; pode ser imunomediada como na 
AhAI (Anemia hemolítica Auto
-Imune), lupus eritematoso, anemia in-
fecciosa equina e pode ser causada por 
defeitos eritrocíticos intrínsecos como 
deficiência da enzima piruvato quinase.
As anemias hemolíticas são normal-
mente refletidas por uma reticulocito-
se que varia de moderada a acentuada 
e parâmetros eritrocitários que vão de 
macrocítico e normocrômico a macro-
cítico e hipocrômico. Devemos sempre 
lembrar que são necessários vários dias 
para que estes índices se tornem altera-
dos e aparentes.
Podemos classificar as anemias rege-
nerativas hemolíticas conforme a sua 
causa em: anemias de origem parasitá-
ria, tóxica e por distúrbios imunológicos. 
3. ANEMIAS HEMOLÍTICAS DE 
ORIGEM PARASITÁRIA 
Alguns microorganismos parasitam 
diretamente as hemácias podendo resul-
tar em hemólise intravascular ou extra-
vascular.hemoparasitas como a Babesia 
são os causadores da Babesiose Canina, 
que é um protozoário intracelular(Babe-
sia canis - transmitida por carrapatos), 
tendo-se no início uma hemólise intra-
vascular, com aparecimento de icterícia, 
embora isso não seja uma constante. 
Outros sintomas são febre, hemoglo-
binemia e esplenomegalia. As altera-
ções laboratoriais mais importantes são: 
anemia regenerativa, trombocito-
penia, leucocitose no pico da hemólise 
(não muito intensa), linfocitose na fase 
de recuperação, hemoglobinúria, bilir-
rubinúria, proteinúria, cilindrúria e 
alterações bioquímicas inespecíficas.
galia, hepatomegalia, prostração, anorexia 
e petéquias. As alterações laboratoriais 
encontradas são: anemia regenerativa 
macrocítica hipocrômica, leucoci-
tose com eosinofilia, trombocitope-
nia e proteinúria na urinálise.
4. ANEMIA HEMOLÍTICA TÓXICA
Anemia hemolítica por corpúsculo de 
heinz pode ocorrer em cães e gatos. são 
compostos oxidantes presentes na circu-
lação que podem reagir na hemoglobina 
em dois pontos: no radical sulfidril dos 
aminoácidos da globina e em parte da 
molécula de ferro. A oxidação da hemo-
globina leva à precipitação e à formação 
do corpúsculo. muitos casos de anemia 
hemolítica por corpúsculo de heinz são 
resultantes da ingestão de substância oxi-
dantes como cebola, ou da ação de drogas 
oxidantes como a Acetaminofeno. 
A cebola e o alho contêm dissulfeto 
de alilpropila e alicina, respectivamente, 
que causam a formação de corpúscu-
los de heinz e anemia hemolítica. Os 
princípios tóxicos destes alimentos são 
oxidantes e acumulam-se nas hemácias, 
ocasionando a desnaturação da hemo-
globina e formação dos corpúsculos. há 
então a perda da capacidade de deforma-
ção das hemácias, havendo sua retenção 
nos capilares, e subseqüente fagocitose.
5. ANEMIAS HEMOLÍTICAS 
CAUSADAS POR DISFUNÇÃO 
DO SISTEMA IMUNOLÓGICO
A anemia hemolítica imunomediada 
(AhIm) é uma consequência do au-
mento da destruição de hemácias, como 
resultado da ação de anticorpos contra 
estas ou da adesão de complexos imunes 
a ela. uma forma de anemia hemolítica 
imunomediada que acomete animais re-
cém-nascidos é a isoeritrólise neonatal. 
A anemia hemolítica autoimune é 
considerada uma das causas mais fre-
qüentes de doença hemolítica em cães, 
mas é descrita com uma frequência 
muito menor em gatos. Pode ocorrer 
hemobartonelose é uma parasitemia 
de gatos e cães causada por rickettsias 
denominadas de Mycoplasma haemofelis 
e Mycoplasma haemocanis, localizadas na 
periferia dos eritrócitos.Os principais 
sintomas são febre, icterícia, esplenome-
Figura 1: Hemácia ao centro parasitada por Babesia canis. 
Fonte:(2)
HEMATOLOGIA
29
como um evento idiopático ou ser secundária a uma variedade de desordens infecciosas, neoplásicas, entre outras. Os fármacos 
mais incriminados são o levamizol em cães e o propiltiouracil em gatos.
Distinguir entre AhIm primária e secundária é crucial para um tratamento efetivo. A doença primária requer terapia imunos-
supressora agressiva. A AhIm secundária raramente responde bem sem que a causa primária seja eliminada e em alguns casos 
pode piorar com terapia imunossupressora.
Não há achados patognomônicos para a AhIm, mas sabe-se que anemia com hematócrito inferior a 25%, presença de hemoglobinúria 
e/ou bilirrubinúria, reticulocitose, auto-aglutinação, esferócitos e uma resposta apropriada a terapia imunossupressora confi rmam o diag-
nóstico de AhIm primária.
Figura 2: Mucosas ictéricas de um animal com AHIM. Fonte: (3)
39-HEMOGRAMA COMPLETO - PET E ANIMAISSILVESTRES
615- EHRLICHIA SP - METODO PCR REAL TIME QUALITATIVO 
633- BABESIA CANINA - METODO PCR REAL TIME QUALITATIVO 
548- MYCOPLASMA HAEMOCANIS (HAEMOBARTONELLA CANIS) - METODO PCR 
REAL TIME QUALITATIVO 
668 - PERFIL DOENÇA TRANSMITIDA PELO CARRAPATO
Exames: babesia - sorologia IgM, IgG; pesquisa de Erlichia - sorologia IgM, IgG.
234- URINA ROTINA
253- ANTICORPO ANTI NUCLEAR (ANA)- Diagnóstico de Lúpus Eritematoso.
788- CHECK UP GLOBAL DE FUNCOES COM HEMOGRAMA
358- PESQUISA DE HEMATOZOARIOS
713- TIPAGEM SANGUÍNEA DE CÃES
710- TIPAGEM SANGUÍNEA DE GATOS
39-HEMOGRAMA COMPLETO - PET E ANIMAIS SILVESTRES
633- BABESIA CANINA - METODO PCR REAL TIME QUALITATIVO 
668 - PERFIL DOENÇA TRANSMITIDA PELO CARRAPATO
Exames: babesia - sorologia IgM, IgG; pesquisa de Erlichia - sorologia IgM, IgG.
253- ANTICORPO ANTI NUCLEAR (ANA)- Diagnóstico de Lúpus Eritematoso.
358- PESQUISA DE HEMATOZOARIOS
710- TIPAGEM SANGUÍNEA DE GATOS
PRAZO DIAS
MESMO DIA
7
7
7
3
1
4
1
1
1
1
COD/EXAMES
Sangue no tubo tampa roxa
Sangue no tubo tampa roxa
Sangue no tubo tampa roxa
Sangue no tubo tampa roxa
Sangue no tubo tampa vermelha
Urina em frasco estéril
Sangue no tubo tampa vermelha
Sangue em tubo tampa roxa, cinza e vermelha
Sangue no tubo tampa roxa
Sangue no tubo tampa roxa
Sangue no tubo tampa roxa
MATERIAL
Bibliografia
• 1. ANEMIA HEMOLÍTICA EM CÃES E GATOS - REVISÃO DE LITERATURA. Solato, Priscila, et al., et al. 11, Garça : FAEF, 2008, Vol. VI.
• 2. VETNEXT. Babesiosis in dogs and cats. VetNext. [Online] VetNext. [Citado em: 16 de Julho de 2014.] http://www.vetnext.com/search.php?s=aandoen-
ing&id=73323052010%20201.
• 3. VetSuite Veterinarians - Hematology & Oncology . IMMUNE-MEDIATED HEMOLYTIC ANEMIA . WURTSBORO VETERINARY CLINIC. [Online] Vetstreet , 
2010. [Citado em: 16 de Julho de 2014.] http://www.wvc.vetsuite.com/Templates/ContentPages/Articles/ViewArticleContent.aspx?Id=888.
HEMATOLOGIA
30
1. DIAGNÓSTICO LABORATO-
RIAL – SOROLOGIA 
Em todo o mundo, a sorologia é 
o exame eleito como o mais sENsí-
VEL para o diagnóstico laboratorial da 
Leishmaniose Canina. Em Todos os 
países onde esta doença está presente 
o que se realiza em PRImEIRA INs-
TANCIA é a sorologia - seja por ELI-
sA e ImuNOFLuOREsCÊNCIA 
INDIRETA- RIFI e mais recentemente 
por Imunocromatografia, ou seja, pelas 
três combinadas, como realizamos no 
TECsA. A sorologia é muito sENsí-
VEL E EsPECíFICA. são centenas de 
publicações científicas respaldando este 
FATO. use a sorologia para o diagnós-
tico laboratorial inicial da Leishmaniose!
2. POR QUE UTILIZAMOS TRêS 
MÉTODOS SOROLÓGICOS NA 
LEISHMANIOSE ? 
Pelo mesmo motivo que o ministé-
rio da saúde padronizou vários mé-
todos no diagnóstico da AIDs – para 
aumentar a certeza do diagnóstico 
laboratorial,  uma vez que se trata de 
doença grave e de uma zoonose. um 
método sorológico complementa o ou-
tro em  sensibilidade (RIFI e DPP) e 
em especificidade (ELIsA), a análise 
dos três em conjunto é que vai nos dar 
um  bom diagnóstico laboratorial.
3. QUANDO TENHO OS TRêS 
MÉTODOS DIvERGENTES, O 
QUE ISTO QUER DIZER? 
Temos de analisar cada método de for-
ma separada e manter um estreito relacio-
namento com seu Laboratório de escolha 
para discutir os casos. Atualmente o méto-
do ELIsA se encontra bastante específico 
e por isto as vezes pode conflitar com o 
método de RIFI e da Imunocromatogra-
fia, que estão com alta sensibilidade. Na 
RIFI e no DPP dificilmente vai “escapar 
“ um cão reagente sem que seja diagnosti-
cado, isto quer dizer que praticamente não 
temos falso-negativos com estes métodos.
4. UM RESULTADO REAGEN-
TE NO DPP E NÃO REAGENTE 
NO ELISA E NA RIFI O QUE 
PODE SER?
Pode ocorrer de alguns animais se-
rem reagentes no DPP e Não reagen-
tes ou Indeterminados (Zona Cinza 
– perto do Cutoff do teste ) no ELIsA 
e na RIFI. Nestes casos a explicação é 
a alta sensibilidade do DPP que pode 
levar ao estado de Reagente. O melhor 
a fazer nestes casos é solicitar a soro-
logia com Diluição Total para ver até 
que ponto temos o titulo no exame de 
RIFI, caso esteja acima ou igual a 1/160 
descarte reação cruzada – este cão tem 
Leishmaniose, mesmo se o ELIsA esti-
ver indeterminado - isto vai ser possível 
pois o ELIsA está menos sensível do 
que a RIFI. siga o resultado da RIFI. 
No caso de suspeita de reação cruzada a 
primeira coisa a fazer são os testes diag-
nósticos de patologias que podem levar 
a este quadro. Pesquise a presença de 
hemoparasitas, inclusive a presença de 
Tripanossoma. Pode ser erro do labora-
tório (geralmente pessoal mal treinado 
em RIFI ou com pouca experiência ) ou 
algum problema sério na conservação 
desta amostra – por exemplo amostra 
hemolisada ou com crioaglutininas - 
repita o exame em outra amostra.
5. DEU UM RESULTADO REA-
GENTE NO RIFI E NÃO REA-
GENTE OU INDETERMINADO 
NO ELISA O QUE PODE SER?
• Pode ser Reação cruzada com 
outra patologia, pesquise as patologias que 
mais freqüentemente dão reação cruzada.
• Pode ser o início de uma soro-
conversão de animal infectado , pois com 
a RIFI mais sensível do que o ELIsA , 
nós podemos começar a ter Reagentes 
apenas no RIFI. Repita o exame após 
30 dias – neste intervalo este animal será 
considerado suspeito, use coleira com 
Deltametrina + repelentes tópicos. 
• Caso o título da RIFI seja 1/80 
solicite diluição Total ao laboratório, caso 
venha maior ou igual a 1/160, descarte 
reação cruzada e considere este animal 
como Reagente.
• Este resultado também pode 
ocorrer quando existe uma hemólise 
muito acentuada da amostra, pois a he-
mólise interfere no ELIsA. 
• Pode ser animal em tratamento 
que consegue “negativar “ o ELIsA mas 
mantém a RIFI com baixos títulos. Lem-
bre-se que existem Proprietários admi-
nistrando Alopurinol por conta própria 
e isto causa uma mudança total na inter-
pretação dos resultados dos exames. 
6. SOROLOGIA COM DILUI-
ÇÃO TOTAL, O QUE É ISTO?
O exame de Reação de ImuNOFLu-
OREsCÊNCIA INDIRETA- RIFI, é 
o exame sorológico que sai com títulos, 
é quantificável quando Reagente. Come-
çando com 1/40 - que consideramos um 
título baixo e na zona cinza da RIFI , 
e indo até títulos como 1/1280 ou mais. 
quanto maior o título da RIFI, pior o 
prognóstico, segundo a literatura cientí-
fica. Portanto, saber em qual patamar , 
com qual título está o animal que você 
encaminhou, é muito importante. No 
TECsA você pode solicitar a Diluição 
TOTAL – na rotina diluímos até 1/80, 
mas se solicitar diluição Total vamos di-
luir até o máximo. Com isto você pode 
acompanhar este animal se o mesmo for 
ser submetido a tratamento – pois sabe-
mos que muitos colegas estão optando 
pelo tratamento, ainda que ilegal pelo 
ms. Títulos maiores ou iguais a 1/160 já 
afastam a possibilidade de ser uma reação 
cruzada, as reações cruzadas são quase 
sempre com títulos de 1/40 e até 1/80.
7. OU TROS MÉTODOS 
DIAGNÓSTICOS PARA 
LEISHMANIOSE 
Não podemos esquecer que testes so-
rológicos requerem correlação clínica e 
epidemiológica e em caso de dúvida, se 
MITOS E VERDADES NO DIAGNÓSTICO LABORATORIAL DA 
LEISHMANIOSE VISCERAL CANINA
LEISHMANIOSE VISCERAL CANINA
31
faz necessário a realização de outros testes diagnósticos como: PEsquIsA DIRETA DO AGENTE através de Citologia/ Bi-
ópsia de Linfonodo, de Pele, ou ainda de Punção de medula e a ImuNO-hIsTOquímICA. Ou mais recentemente o PCR 
pelo sistema de Real Time – o mais moderno , sensível e seguro método de biologia molecular para o diagnóstico da LVC e que 
ainda serve para quantificar o agente em circulação no paciente.
8. PROTEÍNA TOTAL E FRAÇÕES – RELAÇÃO A/G.
Comprovada por diversos trabalhos científicos publicados. Nós do TECsA, relatamos esta correlação há muito tempo e 
agora diversos pesquisadores corroboram nossa experiência. solicite, sempre junto à sorologia para Leishmaniose, o exame 
Proteínas Total e Frações, que vem com a relação A/G. utiliza-se o mesmo sORO e o preço é muito acessível. Fique de olho 
na relação A/G, caso seja menordo que 0,60 a chance de ser uma infecção por Leishmania é grande, embora NãO sEJA 
PATOGNOmÔNICO. Trata-se de mais um parâmetro que pode nos auxiliar nos casos Indeterminados ou com resultados de 
RIFI com 1/40 ou 1/80 persistentes. Peça sempre junto ao exame de Leishmaniose. 
O TECsA participa da REDE de Laboratórios do Diagnóstico da Leishmaniose visceral canina do ministério da saúde 
– através do LACEN – FuNED . E com isto somos submetidos a programas de Controle de quALIDADE como o abaixo, 
que foi o último realizado, no qual atingimos nota máxima.
LEISHMANIOSE VISCERAL CANINA
32
1. INTRODUÇÃO
O exame histopatológico é conside-
rado uma “fotografia” das mudanças so-
fridas pelos tecidos como resultado da 
agressão dos diversos agentes (físicos, 
químicos ou microbiológicos). Através 
de sua experiência, o histopatologista 
procede à identificação, interpretação e 
associação das lesões com as prováveis 
causas. A identificação morfológica de 
microrganismos ou substâncias específi-
cas pode aumentar a confiabilidade do 
diagnóstico. Esta identificação baseia-se 
no uso de corantes especiais, os quais 
dependem das características químicas, 
enzimáticas ou da capacidade de ligação 
da substância de interesse ao corante.
2. TÉCNICA DE COLORAÇÃO 
DE ROTINA
É a técnica tintorial empregada para 
facilitar o estudo dos tecidos sob mi-
croscopia. A coloração é de importân-
cia fundamental em histologia, pois 
os tecidos não tratados têm pouca di-
ferenciação óptica. As colorações, de 
um modo geral, se efetuam por pro-
cessos físico-químicos ou puramente 
físicos e podem ser consideradas se-
gundo a modalidade, a ação, o caráter, 
o grau de ação, o tempo, o número de 
corantes e a cromatização. 
Para se corar adequadamente a célula, 
deve-se recorrer a um método de colora-
ção sucessiva do núcleo e do citoplasma. 
A combinação mais comum de coran-
tes usada em histologia e histopatologia 
é a hematoxilina e Eosina (hE). Nas 
células coradas com hE (coloração de 
rotina) os ácidos nucléicos presentes no 
núcleo são corados pela hematoxilina, 
dando ao núcleo um tom azul-púrpura. 
A eosina é atraída pelos elementos bási-
cos da proteína do citoplasma da célula, 
corando-o de róseo a vermelho. 
PRINCIPAIS APLICAÇÕES DAS 
COLORAÇÕES ESPECIAIS:
3. COLORAÇÕES PARA
MICROORGANISMOS 
O isolamento de microorganismos 
causadores de doença nem sempre é 
possível, quer por demora entre a morte 
do animal e a colheita das amostras, o 
que permite a contaminação de todos 
os tecidos por microorganismos prove-
nientes do intestino, quer por terem sido 
administrados aos animais agentes far-
macológicos que inibem posteriormen-
te o crescimento “in vitro” dos possíveis 
agentes patogênicos. 
Desta forma, foram desenvolvidas téc-
nicas que quando aplicadas aos cortes 
histológicos permitem a identificação 
dos microorganismos. Nestas técnicas, 
incluem-se as técnicas para as bactérias 
gram-positivas e gram-negativas, mico-
bactérias álcool-ácido-resistentes, fun-
gos e parasitas. A coloração de Gram 
permite a separação das bactérias em 
gram-positivas, que retêm os complexos 
de cristal de violeta-iodina e em gram ne-
gativas, que são descoradas pelo álcool ou 
acetona e coradas pela safranina ou fucsina 
(corantes de contraste). No final obtemos 
as bactérias gram-positivas azuis escuras e 
as gram-negativas vermelhas. 
Já o fundamento da técnica de colo-
ração de Ziehl-Neelsen baseia-se na 
capacidade que alguns microorganismos 
possuem em reter os corantes complexos 
básicos (tais como carbolfucsina) após 
forte descoloração com ácido-álcool. A 
resistência aos ácidos depende do eleva-
do conteúdo em lípidos (ácidos micóli-
cos e ácidos gordos de cadeias longas) 
das paredes celulares das micobactérias. 
A técnica de PAS, já referida é mui-
to utilizada para evidenciar fungos, no 
entanto quando existem em pequena 
quantidade é preferível optar pelo mé-
todo de Grocott. O método de Grocott 
permite-nos evidenciar fungos e leve-
duras. O método baseia-se na redução 
da prata pelos grupos aldeídos resultan-
tes da oxidação pelo ácido crômico. No 
final, obtêm-se os fungos marcados de 
cor negra. Na demonstração de proto-
zoários a técnica mais popular é a colo-
ração de Giemsa, com este método os 
protozoários e outros microorganismos 
ficam corados de azul escuro, enquanto 
que o fundo fica rosa ou azul claro, os 
núcleos ficam azuis. há também evi-
denciação de grânulos citoplasmáticos 
em mastócitos, sendo muito aplicáveis 
na determinação de mastocitomas.
4. PIGMENTOS E MINERAIS
Nos tecidos podemos observar alguns 
pigmentos que devem ser caracteriza-
dos para assim se poder determinar a 
patologia em questão, dentre os vários 
pigmentos existentes e que tem impor-
tância na patologia animal destacamos 
a melanina, a hemossiderina, a lipofus-
cina e nos minerais o cálcio. Na reação 
de Perls para a hemossiderina, o ácido 
hidroclorídrico separa a proteína do 
ferro permitindo que o ferrocianido de 
potássio se ligue ao ferro na forma férri-
ca e que se forme o ferrocianido férrico 
(azul da Prússia). Assim os tecidos com 
hemossiderina e alguns óxidos e sais de 
ferro ficam azuis. 
NO DIAGNÓSTICO HISTOPATOLÓGICO
APLICAÇÕES DAS COLORAÇÕES ESPECIAIS
Bacilos álcool-ácido resistentes – Mycobacterium sp.
Coloração especial - Ziehl-Neelsen
Hifas ramificadas - Aspergillus sp.
Coloração especial - GROCOTT
PATOLOGIA
33
No método de Fontana–Masson 
para a melanina é utilizada uma solução 
de prata amoniacal sem banho redutor. 
Apenas as substâncias capazes de re-
duzir diretamente os sais de prata tais 
como a melanina são evidenciadas. No 
final, os grânulos argentafins e a me-
lanina ficam de cor negra enquanto os 
núcleos e o citoplasma variam de rosa 
a vermelho. 
Já as lipofuscinas são uma mistura 
heterogênea de pigmentos nos quais se 
incluem os ceróides. Existem algumas 
técnicas que nos permitem evidenciar 
de alguma forma estes pigmentos, des-
tacamos o método de Sudam negro B 
que deixa o pigmento negro e o método 
de Zielh-Neelsen modificado ficando 
as lipofuscinas de cor magenta. 
Finalmente, no método de von Kos-
sa para o cálcio formam-se sais de prata 
que são depois reduzidos para prata me-
tálica negra pelo uso de luz ou de um re-
velador fotográfico, obtendo-se no final 
os sais de cálcio de cor negra.
5. REAÇÃO DE METACROMASIA
Certos corantes reagem com os com-
ponentes do tecido e os coram com uma 
cor diferente da cor da solução corante. 
A mudança de cor do corante chama-
se metacromasia. O azul-de-metileno, o 
azul-de-toluidina e a tionina são exem-
plos de corantes simples que exibem 
metacromasia. Com os corantes azuis 
a cor muda para vermelho. A coloração 
dos mastócitos com o azul-de-metileno 
constitui um bom exemplo. Os grânu-
los do citoplasma coram-se em verme-
lho-púrpura, enquanto que o resto do 
tecido fica azul.
6. PAS (PERIODIC ACID-SCHIFF)
É uma técnica de coloração muito útil 
e esteticamente agradável, substituindo 
em alguns laboratórios a coloração de 
rotina (hE – hematoxilina e Eosina ). 
Esta técnica dá uma reação positiva com 
todos os polissacarídeos complexos, o 
que inclui o glicogênio, ácido hialurôni-
co, mucoproteínas, glicoproteínas, glico-
lípidos e fosfatídeos. Assim, serve para 
demonstrar/detectar o glicogênio, muci-
nas neutras, membranas basais e eviden-
ciar a maior parte de fungos e parasitas.
7. COLORAÇÃO DAS FIBRAS DO 
TECIDO CONJUNTIvO
Existem algumas colorações para de-
monstração dos tecidos conjuntivos, a 
maioria cai na categoria das colorações 
tricrômicas. O termo coloração tricrô-
mica é o nome geral para técnicas que 
evidenciam o músculo, fibras de coláge-
no, fibrina e eritrócitos. Como o nome 
indica, são utilizados três corantes um 
dos quais é usado como corante nuclear. 
uma das colorações mais antigas é o 
método de van Gieson, com a qual os 
núcleos ficam de azuis escuros a pretos, 
cartilagem azulada, o colágeno vermelho 
(fibras de colágeno e membranas basais) 
e os outros tecidos amarelos (fibraselás-
ticas, citoplasma das células epiteliais e 
musculares). Outra coloração tricrômica 
muito utiliza é a de Masson, com esta 
técnica pode-se observar os núcleos 
azuis escuros ou pretos, o músculo, os 
eritrócitos e o citoplasma das células 
vermelhos e o colágeno azul.
8. COLORAÇÃO DA SUBSTÂN-
CIA AMILÓIDE
A coloração com vermelho do Con-
go seguida pela observação com luz 
standart ou polarizada é a técnica mais 
prática para detectar a substância amiló-
ide. A coloração não tem nenhuma es-
pecificidade química, sendo dependen-
te da disposição das moléculas. Nesta 
técnica, a substância amilóide, o tecido 
elástico e os grânulos eosinofilicos ficam 
vermelhos enquanto que os núcleos fi-
cam azuis. 
9. COLORAÇÃO DE GORDURAS
As técnicas que permitem a detecção 
de gorduras estão muito limitadas visto 
não poderem ser aplicadas em material 
em parafina, devido ao fato das gordu-
ras se dissolverem no xilol ou nos outros 
materiais usados para esclarecimento. 
Fica, portanto, limitada a sua aplicação 
aos cortes de congelação. A técnica de 
Sudan negro B cora os ésteres de coles-
terol e os triglicerídeos de azul muito es-
curo e alguns fosfolipídeos de cinzento.
10. AvALIAÇÃO DA PROLIFERA-
ÇÃO CELULAR
Avaliação quantitativa de AgNOR 
permite, mais do que o índice mitóti-
co, a correlação entre grau histológico e 
prognóstico, já que essa contagem revela 
o estágio do ciclo celular. um aumento 
no número de AgNOR seria resultado 
de proliferação celular com aumento 
na transcrição e aumento do conteúdo 
celular de DNA, o que ocorre em cé-
lulas que proliferam mais ativamente, 
auxiliando desta forma na avaliação do 
comportamento neoplásico ou hiper-
plásico. A técnica de AgNOR é útil para 
marcar o DNA ribossomal e seus níveis 
de transcrição, permitindo visualizar o 
nucléolo e estudar a variação do tama-
nho do nucléolo e o número de pontos 
corados pela prata em tecidos.
11. COLORAÇÕES ARGENTA-
FINS E ARGIROFILICAS
A reação argentafim depende da pre-
sença no tecido de substâncias do grupo 
fenólico (tais como catecolaminas ou 
indolaminas), que reduzem os sais de 
prata e outros metais – Fontana-Mas-
son. Nos dois tipos de colorações ob-
têm-se grânulos castanhos escuros ou 
negros. Estas colorações utilizam-se 
para detectar células neuroendócrinas 
e melanina.
12. APOIO DIAGNÓSTICO
LABORATORIAL
Além do exame histopatológico de 
rotina (hE) ou com uso de colorações 
especiais, o TECsA Laboratórios ofe-
rece aos médicos Veterinários uma 
grande variedade de exames para au-
xiliar no diagnóstico de diversas outras 
patologias, seguindo todos os padrões 
IsO de qualidade nas principais áreas:
PATOLOGIA
34
COD/EXAME
86- Histopatologia
648 - Imuno-histoquímica
89 - Necropsia
644 - Margens cirúrgicas
650 - Histopatologia com coloração 
especial
87 - Citologia
658 - Imuno-histoquímica de neoplasias
Biópsia incisional/excisional, peça cirúrgica e fragmentos de necropsia.
PAS, GROCOTT, Giemsa, Ziehl-Nielseen, Shorr, Masson, Good Pasture (Gram), Vermelho Congo, Alcien Blue, Warthinc, Azul da 
Prússia, Von Kossa e Impregnação pela prata.
Punção aspirativa por agulha fina, citologia vaginal, pesquisa de Leishmania sp., citologia de líquido cavitário, pesquisa de 
Malassezia sp. 
Leishmania sp.
Necropsia de animais domésticos e exóticos de grande e pequeno porte.
Avaliação das margens de segurança da excisão tumoral através de marcação com tinta nanquim.
Painel geral da neoplasia. Um marcador para determinação da origem (se epitelial, mesenquimal ou de células redondas), 
prognóstico e produtos de síntese de células neoplásicas.
PRAZO
4 dias
7 dias
3 dias
14 dias
4 dias
2 dias
4 dias
PARÂMETROS
PATOLOGIA
35
ACNE FELINA
Acne Felina
tecsa@tecsa.com.br
MV, Mestre em Medicina Veterinária UFMG
CRMV-SP 5540 V
CRMV-MG 3708
DICAS DO LABORATÓRIO DR. LUIZ EDUARDO RISTOW
A acne felina é uma dermatose co-
mum em felinos, de origem idiopática,
sem predisposição sexual ou racial. Tra-
ta-se de um distúrbio de queratinização
folicular e hiperplasia glandular que
pode ser complicada por infecções se-
cundárias, sejam elas de causa bacte-
riana, fúngica ou parasitária.
Clinicamente acomete a porção do
queixo e inicia-se com a formação de
comedos, podendo infeccionar-se e
evoluir para foliculite ou furunculose.
Geralmente ocorre em gatos adultos ou
geriátricos, sendo incomum em jovens,
sendo esta uma diferença notável en-
tre a acne felina e as acnes canina e
humana, uma vez que estas duas últi-
mas tendem a se confinar à adolescên-
cia, podendo ter correlação com a di-
nâmica de hormônios.
Sua etiopatogenia ainda não é bem
elucidada, havendo causa e predispo-
sição multifatorial: alteração do ciclo de
crescimento do pêlo, hábito pobre de
higienização (grooming), estresse, pre-
disposição seborréica, produção sebá-
cea anormal, imunossupressão e infec-
ção viral crônica concorrente.
A acne felina está associada aos cui-
dados inadequados (ou à falta de cui-
dado) do felino, mas pode também ser
secundária a demodicose, dermatofito-
se (Microsporum canis) ou infecção por
Malassezia spp.
A natureza cíclica da doença pode
estar associada à inabilidade do novo
pêlo anágeno de expulsar os plugues
queratosebáceos. Infecções bacteria-
nas quando presentes ocorrem secun-
dariamente e associada à ruptura foli-
cular. Uma variedade de bactérias pode
estar envolvida como: Streptococcus
spp., Pasteurella multocida, Staphylo-
coccus spp. coagulase-positivo, Micro-
coccus spp., Escherichia coli e Bacillus
cereus. Leveduras como Malassezia
spp também são comuns. Alguns rela-
tos estão associados à esporotricose.
Também podem estar relacionadas com
a acne felina a demodicose, dermatofi-
tose e granuloma eosinofílico. Pesqui-
sadores citam também o envolvimento
de dermatite de contato com a acne fe-
lina, além de aparecimento inexplicável
de acne felina contagiosa em animais
de criatórios.
O diagnóstico é baseado nos sinais
clínicos e na exclusão de outras cau-
sas como demodicose, malassesiose e
dermatofitose. O diagnóstico diferenci-
al deve também envolver atopia (aler-
gia) e, laboratorialmente, a análise his-
topatológica que é uma ferramenta de
grande auxílio na caracterização micros-
cópica da lesão.
Por se tratar de uma afecção muito
comum e de etiopatogenia não muito
bem esclarecida, os diagnósticos defi-
nitivo e diferencial, além da conduta te-
rapêutica, devem ser baseados em exa-
mes laboratoriais. Para isso o TECSA
Laboratórios disponibiliza várias análi-
ses citadas no quadro abaixo, além do
Kit VetCheck para isolamento e identifi-
cação de dermatoses fúngicas.
Bibliografia:
Texto adaptado de ANJOS, T. M. Acne
felina: Revisão de literatura.
“O que você quer na próxima DICA?
Responda ao e-mail tecsa@tecsa.com.br
e nos dê a sua sugestão, opinião ou dúvi-
da. Teremos o maior prazer em ouvi-lo.”
Figura 1: Felino com dermatose na região do
queixo (antes e após limpeza da área aco-
metida)
FO
N
TE
: 
A
N
JO
S
, 
T.
M
.
Exames do Tecsa Laboratórios (Laboratório de referência nacional) que
auxiliam no diagnóstico das principais Dermatopatias de Felinos
Exames / Produtos Prazo dias
Cód 684 - Teste Alérgico a Picada de Pulga (Saliva) 7
Cód 683 - Teste Alérgico Triagem 7
Cód 686 - Teste Alérgico Painel 24 Alérgenos 7
Cód 685 - Teste Alérgico Painel 36 Alérgenos 7
Cód 688 - Teste Alérgico Alergia a Malassezia 7
Cód 355 - Pesquisa de Sarna e Fungos 1
Cód 373 - Perfil de Hipertireoidismo:
TGP (Alt), Creatinina, TSH, Hemograma completo, T4 Livre
3
Cód 086 - Exame Histopatológico 5
Cód 650 - Histopatológico com Coloração especial 7
Cód 051 - Cultura / Antibiograma 5
Cód 255 - Cultura para Fungos / Cód 625 - Antifungiograma 15
Cód 760 - Identificação Fúngica + Antifungiograma
(pré-requisito: envio do VetCheck Dermatófitos com cultivo prévio)
10
Kit VetCheck Dermatófitos com 4 testes 3
FO
N
TE
: 
A
N
JO
S
, 
T.
M
.
2
4
10
12
6
MEDICINA LABORATORIAL DE FELINOS
36
1. INTRODUÇÃO
A criação de gatos como animais de estimação vem crescendocada vez mais no Brasil. Os gatos possuem algumas particularida-
des da espécie como a coleta de sangue que requer alguns cuidados especiais para que se possa enviar ao laboratório amostras de boa 
qualidade e que irão fornecer resultados mais confiáveis. sendo assim, essas particularidades serão citadas para auxiliar ao médico 
veterinário para que este sempre envie ao laboratório materiais de ótima qualidade que não comprometerão os resultados finais.
2. PREPARO DO PACIENTE E ENvIO DE AMOSTRAS
Algumas recomendações são feitas antes de coletar o sangue do paciente em questão (felino). Inicialmente, o ideal é que o 
paciente esteja em jejum de 8-12 horas, para evitar que as amostras apresentem lipemia. A lipemia pode causar hemólise e alterar 
os resultados dos exames. Outra observação que deve ser feita diz respeito ao estresse provocado nos gatos no momento da coleta. 
O gato, diferentemente do cão, no momento da coleta apresenta sinais de medo e excitação mais intensos com a consequente 
liberação de adrenalina que em concentrações elevadas pode alterar o resultado de alguns exames (hemograma e glicemia). Assim, 
o ideal é deixar o animal o mais calmo e relaxado possível para iniciar a coleta.
Deve-se respeitar o volume de sangue recomendado, pois se a quantidade de sangue colocada for maior do que a indicada no 
frasco o sangue poderá coagular e se a amostra for em menor quantidade poderá causar diluição da amostra, causando assim 
alterações. A homogeneização deve ser de forma correta e não se deve agitar excessivamente o tubo. O sangue coletado não deve 
permanecer em temperatura ambiente por muito tempo ou em altas temperaturas e nem mesmo ser congelado. É recomendado 
que permaneça sob refrigeração entre 2 e 8 °C até chegar ao laboratório no qual será processada.
Após coletado o sangue não deve esquecer-se de identificar cada amostra com os dados do paciente, sempre acompanhada da 
requisição do exame para agilizar todo o processo laboratorial.
3. COLETA DE SANGUE
Nos felinos, os locais de preferência e indicados para a coleta de sangue são: veias radial, jugular, cefálica, tibial e safena lateral ou 
medial. No entanto, alguns cuidados devem ser tomados como:
• observar o calibre da agulha a ser utilizada com o calibre do vaso a ser puncionado.
• retirar a pressão da seringa antes da colheita, para evitar colabamento das paredes do vaso a ser puncionado.
• realizar a tricotomia e assepsia locais com álcool iodado a 70%.
• introduzir a agulha, já acoplada à seringa, com o bisel voltado para cima, num ângulo de aproximadamente 30°.
• evitar garroteamento prolongado e bombeamento do sangue.
• deixar o sangue fluir com o mínimo de vácuo; caso o sangue não flua, rotacionar a agulha com a seringa delicada-
mente, procurando melhor posicionamento.
uma alternativa interessante é utilizar o anticoagulante diretamente na seringa que coletará o sangue. Tal procedimento é reco-
mendado para coletas prolongadas em animais de pequeno porte (principalmente gatos que relutam muito no momento da cole-
ta), hipotensos e desidratados, pois impede a formação de coágulos e consequentemente a perda da amostra coletada. Para tanto, 
basta aspirar o anticoagulante na seringa com a agulha acoplada, fazendo com que o ponto morto da seringa fique preenchido 
com a solução. Assim, ao começar a fluir, o sangue imediatamente entrará em contato com o anticoagulante. Após o término da 
coleta, puxe delicadamente o embolo da seringa, deixando um espaço vazio de aproximadamente 1 cm entre o final do embolo e 
a superfície do sangue, e homogeneíze por inversão.
COLETA DE SANGUE PARA ANÁLISES
LABORATORIAIS EM FELINOS
Figura 1: Coleta de sangue da veia jugular de um gato: 
Fonte: (1)
Bibliografia
• 1. Animal Medical Center (AMC). The Donation Process. AMC. [Online] NH Website Design. [Citado 
em: 16 de Julho de 2014.] http://www.amcne.com/services/blood-bank/about-the-donation-process/.
MEDICINA LABORATORIAL DE FELINOS
37
COLETA DE AMOSTRAS EM AVES SILVESTRES
DICAS E ORIENTAÇÕES
1. INTRODUÇÃO
A criação de aves silvestres ocorre por 
todo Brasil, tanto na forma amadorista 
(por hobie) quanto na forma comercial 
(preservação de espécies e venda de fi-
lhotes). No entanto, o criador tem que 
ser autorizado pelo IBAmA para que 
não possa ser acusado de cometer cri-
mes ambientais.
Dentre as aves mais apreciadas pe-
los criadores estão os pássaros canoros 
como o trinca ferro, curió, azulão, caná-
rio da terra e vários outros. há também, 
as aves da família dos psitacídeos como 
o papagaio, a arara e as maritacas. sendo 
assim, é comum chegar à clínica veteri-
nária, um cliente portando uma destas 
aves solicitando atendimento e, como 
a maioria das doenças que afetam as 
aves silvestres são de origem infecciosa, 
é de extrema importância identificar o 
causador da doença para, a partir daí, 
o médico veterinário tomar as medidas 
cabíveis para combater e prevenir a do-
ença. Dentre os principais agentes que 
causam doenças nas aves, estão as bacté-
rias, fungos e parasitos (endo e ectopa-
rasitos). A coleta das amostras de forma 
correta é de fundamental importância 
para realização dos exames laboratoriais 
e conclusão do diagnóstico.
3. COLETA DAS FEZES
A análise das fezes é de grande uti-
lidade para a identificação do agente 
e com ela, pode-se realizar os exames 
parasitológico, esfregaço, PCR- RT ou 
pesquisa direta para Chlamydia e co-
procultura. A melhor maneira de coletar 
estas fezes é colocar um pedaço de pa-
pel, plástico ou papel alumínio (limpos) 
abaixo dos poleiros de forma a coletar 
fezes frescas (recém liberadas). No caso 
de recintos coletivos, pode-se fazer um 
“pool” das fezes coletadas para enviar ao 
laboratório para serem analisadas.
fecções. É importante imaginar a unha 
dividida em 3 partes e o corte deve ser 
realizado na porção mais distal do corpo 
da ave por onde sairão gotas de sangue e 
caso seja necessário, pode-se cauterizar 
para interromper o sangramento. Caso 
o sangue não esteja saindo, verifique se 
a pata não está sendo comprimida im-
pedindo esta saída. No caso de ser ne-
cessário um volume maior de sangue, 
este pode ser retirado por punção da 
veia metatársica ou braquial. Para isso, 
deve-se fazer uma assepsia do local com 
algodão embebido em álcool, puncione 
a veia retirando a quantidade necessária 
de sangue e, após a retirada, pressione o 
local por 1 minuto para reduzir a inci-
dência de hematoma. O sangue colhido 
deve ser colocado no tubo adequado, ser 
identificado e mantido sob refrigeração. 
5. COLETA DE MATERIAL PARA 
SEXAGEM AvIÁRIA
A necessidade de saber o sexo das aves 
com precisão é de grande utilidade para 
os criadores de aves silvetres e com o in-
tuito de auxiliá-los, o TECsA oferece 
4. COLETA DE SANGUE
No caso da coleta de sangue para a 
realização de hemogramas, citologias, 
esfregaço, pesquisa de hemoparasitas 
entre outras análises, o sangue pode ser 
retirado a partir de um corte na unha. 
Para isso, inicialmente, deve-se realizar 
uma limpeza do pé e da unha a ser cor-
tada e o material deve estar devidamen-
te esterelizado para evitar possíveis in-
2. CONTENÇÃO
Para uma boa coleta de material, é es-
sencial que se domine as técnicas de con-
tenção para as diversas espécie de aves, 
tanto as de grande como as de pequeno 
porte. Além disso, pode-se minimizar o 
estresse da ave como também garantir a 
segurança de quem vai coletar a amostra.
Fig. 1 – Trinca ferro. Fonte:fazendavisconde.com.br
Fig. 2 – Contenção de um pássaro. Fonte: Imagem 
cedida pelo M.V. Daniel Vilela-IBAMA/BH
Fig. 4 - Orientação de onde cortar a unha. Fonte: 
Imagem cedida pelo M.V. Daniel Vilela-IBAMA/BH
Fig. 5 – Coleta de sangue em pássaros. Fonte: Ima-
gem cedida pelo M.V. Daniel Vilela-IBAMA/BH
Fig. 3 -Coleta das fezes em jornal. Fonte: Imagem 
cedida pelo M.V. Daniel Vilela-IBAMA/BH
MEDICINA LABORATORIAL DE SILVESTRES
39
a sexagem aviária que pode ser realizada pelo sangue ou penas das aves. No caso do 
envio de sangue, este deve ser coletadoem papel fi ltro de sangue proveniente prefe-
rencialmente da unha (2 manchas de 2 mm cada). Já no caso de serem enviadas penas, 
estas, devem ser provenientes da região peitoral ou abdominal da ave e estas penas 
devem conter o bulbo (raiz) e não devem conter sangue sendo armazenadas em um 
recipiente limpo e seco.
6. COLETA DE SECREÇÕES COM SWAB
Para coletar amostras da região cloacal com swab, alguns procedimentos devem ser 
adotados. Primeiro, deve-se afastar as penas da região da cloaca e introduzir o swab 
o qual deve ser proporcional ao tamanho da ave. movimentos rotatórios devem ser 
realizados com delicadeza na parede da cloaca para a coleta ser adequada. O swab 
cloacal é importante no diagnóstico de doenças como a Clamidofi lose, salmonelose, 
Newcastle, doença de Pacheco, dentre outras.
7. NECRÓPSIA E
HISTOPATOLÓGICO
A realização da necrópsia informa ao 
médico veterinário, possíveis lesões in-
ternas que não são visíveis durante o exa-
me clínico as quais na maioria das vezes 
são patognomônicas da suspeita clínica.
Para isto, deve-se enviar ovos, fi lhotes, 
aves inteiras ou órgãos devidamente ar-
mazenados sob refrigeração e em reci-
pientes adequados (caixa de isopor lacra-
da e identifi cada).
Já no caso do exame histopatológico 
(visa pesquisar alterações nos tecidos), 
deve-se enviar fragmentos de cerca de 3 
cm imersos em solução de formol a 10%.
8. APOIO DIAGNÓSTICO TECSA 
LABORATÓRIOS
O TECsA Laboratórios oferece inúmeros exames para o diagnóstico de doenças das aves silvestres. Os seguintes exames são 
oferecidos com os respectivos prazos de entrega:
Fig. 6 - Swab cloacal. Fonte: Imagem cedida pelo M.V. 
Daniel Vilela-IBAMA/BH
Fig. 7 – Papagaio em necropsia. Fonte: Imagem cedida pelo M.V. Daniel Vilela-IBAMA/BH
MATERIAL PRAZO DIAS
10 DIAS
2 DIAS
1 DIA
2 DIAS
2 DIAS
5 DIAS
4 DIAS
5 DIAS
12 DIAS
7 DIAS
3 DIAS
EXAMES
369 / SEXAGEM AVIÁRIA
62 / EXAME PARASITOLOGICO DE FEZES - AVES 
355 / PESQUISA DE SARNA E FUNGOS 
143 /HEMOGRAMA COMPLETO - AVES
301 / NECROPSIA AVES - PEQUENO PORTE 
446 / PACOTE DIAGNOSTICO POS-MORTEM - AVES SILVESTRES 
86 / HISTOPATOLÓGICO
51 / CULTURA BACTERIANA + ANTIBIOGRAMA
255 / CULTURA PARA FUNGOS
729 / PCR – RT CHLAMYDOPHILA PSITTACI
523 / PESQUISA DIRETA PARA CHLAMYDIA SP. 
Sangue em papel filtro ou 6 penas arrancadas do peito
Fezes frescas em frasco adequado
Raspado de pele
Sangue em EDTA ou Heparina
Ave que veio a óbito recente mantida sob refrigeração
Ave que veio a óbito recente mantida sob refrigeração
Fragmentos em solução formol a 10%
Swab com meio de cultura
Raspados, secreções ou swab com meio de cultura
Sangue em EDTA ou swab de secreções
Esfregaço de fezes/secreções
EXAMES REALIZADOS NO TECSA LABORATÓRIOS
MEDICINA LABORATORIAL DE SILVESTRES
40