Métodos Parasitológicos

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Daniela Luiza Dorini – Parasitologia Clínica – Farmácia 
 Métodos parasitológicos 
Método HPJ (HOFFMAN, PONS E JANER) 
FUNDAMENTO 
Sedimentação espontânea (ação da gravidade). 
INDICAÇÃO 
Detecta ovos e larvas de helmintos e cistos de protozoários. 
MÉTODO 
1. Colocar cerca de 2g de fezes em um copo descartável e adicionar cerca de 20ml de 
água destilada 
2. Homogeneizar com palito 
3. Transferir para o cálice coando com gaze ou parasitofiltro. 
4. Após coado completar o volume com água corrente. 
5. Deixar repousando de 2h a 24h. 
6. Após sedimentado pipetar com pipeta de pasteur recolhendo o sedimento do fundo 
do cálice. 
7. Colocar em uma lâmina e adicionar 1 gota de lugol cobrindo com lamínula. 
 
Método de baerman-morais 
FUNDAMENTO 
Atração de larvas pela água aquecida (termohidrotropismo positivo) 
INDICAÇÃO 
Detecção de larvas de nematelmintos especialmente Strongyloides stercoralis e 
ancilostomídeos. 
MÉTODO 
1. Colocar de 8 a 10 g de fezes sobre gaze dobrada sobre o funil. 
2. Adicionar água aquecida a aproximadamente 40ºC deixando as fezes submersas. 
Daniela Luiza Dorini – Parasitologia Clínica – Farmácia 
3. Deixar em repouso por 1h. 
4. Abrir a pinça e coletar parte do liquido em vidro relógio e examinar ao microscópio. 
Ou proceder conforme item 5. 
5. Coletar em tubo cônico de centrifuga e centrifugar, examinar o sedimento em lâmina 
e lamínula corando com lugol. 
 
OBSERVAÇÕES 
 
 
 Strongyloides stercoralis 
Método Kato-katz 
FUNDAMENTO 
Esfregaço espesso de material fecal clarificado pela solução de verde de malaquita, 
glicerina e água fenolada. 
Daniela Luiza Dorini – Parasitologia Clínica – Farmácia 
INDICAÇÃO 
Estruturas com envoltório bem marcante e regido, como ovos de Schistosoma mansoni, 
Ascaris lumbricoides, Thichuris trichuria e outros. 
MÉTODO 
1. Colocar a amostra fecal sobre o papel absorvente. 
2. Comprimir a tela metálica ou de nylon sobre as fezes, fazendo com que parte passe 
através das malhas. 
3. Remover as fezes que passaram e transferi-las para o orifício do cartão colocado 
sobre a lâmina. 
4. Remover o cartão deixando as fezes sobre a lâmina. 
5. Cobrir as fezes com a lamínula de celofane (previamente embebida em solução de 
verde malaquita), e pressionar distribuindo as fezes na lâmina. 
6. Deixar em repouso durante 30 minutos a cerca de 35ºC ou a temperatura ambiente 
por 1-2 horas. 
7. Examinar ao microscópio. 
8. Pode ser feito o cálculo do numero de ovos no material fecal: após a observação e 
contagem o numero de ovos encontrados é multiplicado por 23 (fator), o valor 
encontrado será de ovos/g de fezes. 
 
OBSERVAÇÕES 
 
 
 Ovo de Schistossoma mansoni Ovo de Ascaris lumbricoides 
Daniela Luiza Dorini – Parasitologia Clínica – Farmácia 
Método de willis 
FUNDAMENTO 
Flutuação de estruturas em solução saturada de cloreto de sódio com base na 
densidade e propriedade de adesão ao vidro. 
INDICAÇÃO 
Ovos leves como de Ancilostomídeos, Trichuris trichuria, Ascaris lumbricoides, 
Enterobius vermicularis. 
* os cistos de protozoários são leves e flutuam, porém, são deformados pela 
osmolaridade da solução, não podendo ser observados. 
MÉTODO 
1. Em um frasco colocar cerca de 1g de fezes e misturá-la gradativamente com uma 
solução saturada de cloreto de sódio. 
2. Após homogeneização, transferir a suspensão para um frasco com 
aproximadamente 3cm de diâmetro coando o material através de peneira, coador ou 
gaze. 
3. Completar o volume com a solução de cloreto de sódio saturada até formar menisco 
positivo 
4. Colocar lâminula sobre a borda do frasco de modo que fique em contato com o 
liquido. 
5. Aguardar de 15 a 30 minutos e retirar a lâminuna de forma rápida da superfície do 
frasco 
6. Colocar a lâminula sobre a lâmina corando com lugol e observar ao microscópio. 
 
OBSERVAÇÕES 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Ovo de ancilostomídeo Ovo de Trichuris trichiuria’ 
Daniela Luiza Dorini – Parasitologia Clínica – Farmácia 
Método de Faust 
FUNDAMENTO 
Centrifugo-flutuação em solução de sulfato de zinco. 
INDICAÇÃO 
Eficiente para detecção de estruturas mais leves, em particular cistos de protozoários. 
Útil também na demonstração de ovos e larvas de helmintos. 
MÉTODO 
1. Coletar pequena amostra de fezes adicionar 10ml de água e homogeneizar. 
2. Filtrar em gaze dobrada sobre tubo de centrifugação, completar volume do tubo com 
água 
3. Centrifugar por 1 minuto a 250rpm. 
4. Descartar sobrenadante 
5. Acrescentar água e ressuspender o sedimento. 
6. Centrifugar novamente. 
7. Observar o sobrenadante, se houver sedimentos repetir o processo. 
8. Caso o sobrenadante esteja limpo, completar com solução de sulfato de zinco a 33%. 
9. Centrifugar a 2500 rpm por 1 minuto, 
10. Colher alíquota do sobrenadante, dispor em uma lâmina acrescentar lugol, adicionar 
lamínula sobre e observar ao microscópio. 
 
 
ADICIONA-SE SOLUÇÃO DE 
SULFATO DE ZINCO 33%