Relatório Diagnóstico Laboratorial de Infecções Parasitarias

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RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS 
 
 
 
 
 
 
 
 
CURSO: Farmácia 
 
 
 
DISCIPLINA: 
 
NOME DO ALUNO: 
 
R.A: POLO: 
 
DATA: 
 
 
 
 
 
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INTRODUÇÃO: 
Em 1909, Sir Marc Armand Ruffer descreveu a presença de ovos de 
Schistosoma haematobium em cortes histológicos de tecido renal de um corpo 
mumificado, no Egito, datado de 3.200 anos a.C. (Ruffer, 1910). 
A infecção parasitária é caracterizada como uma doença onde o parasito 
passa uma de suas fases do ciclo biológico no trato gastrointestinal, ocasionando 
ou não alguma patologia. Seus agentes causadores são geralmente helmintos 
e/ou protozoários, que trazem aos seus hospedeiros sintomas de diarreia, dores 
abdominais, perda de sangue nas fezes, emagrecimento, alterações de humor, 
ansiedade, agitação e até mesmo alterações nos índices hematológicos, 
causando principalmente anemia e eosinofilia. (ANTUNES; MORAES, 2019). 
O desenvolvimento de métodos de diagnóstico para a parasitologia é de 
fundamental importância no estabelecimento da etiologia das infecções para 
correta intervenção terapêutica. 
 O diagnóstico imunológico tem sido muito empregado no laboratório 
clínico pela simplicidade, rapidez de execução e baixo custo operacional. No 
entanto, existem dificuldades para a padronização dos testes imunológicos em 
relação à memória imunológica e à semelhança entre os antígenos constituintes 
dos parasitos, restringindo seu uso no diagnóstico de algumas patologias. 
(UECKER et al., 2007). 
Helmintos são parasitos multicelulares adaptados a viver em um 
hospedeiro vertebrado ou invertebrado. Algumas espécies necessitam de um 
estágio no ciclo de vida fora deste hospedeiro; podendo ser no solo, água, ou 
hospedeiro intermediário. Portanto, a infecção por estes parasitos ocorre pela 
exposição a algum dos fatores citados acima (KING, 2019). 
Enteroparasitoses são comumente diagnosticadas, apesar das medidas 
terapêuticas e profiláticas disponíveis. Ovos de helmintos e oocistos de 
protozoários gastrintestinais são eliminados nas fezes de cães, propiciando a 
contaminação ambiental e a transmissão de parasitoses para outros hospedeiros. 
(ANDRESIUK et al., 2003; SCAINI et al., 2003). 
Os parasitos intestinais estão entre os patógenos mais frequentes do ser 
humano. Afetam principalmente crianças e pessoas jovens e tendem a 
desencadear problemas gastrintestinais, diminuição do desenvolvimento corpóreo 
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e psíquico, além de sua direta associação ao atraso escolar. Dados atuais 
mostram que mais da metade das crianças brasileiras que permanecem em 
creche são poliparasitadas. Sabendo-se que as enfermidades parasitárias 
representam um freqüente problema de saúde pública e são apontadas como 
indicadores de desenvolvimento sócio-econômico de uma população, aponta-se a 
necessidade constante de se acompanhar as instituições pré-escolares quanto à 
prevalência de doenças parasitárias.(GIGONZAC et al, 2012). 
A Técnica de Sheather também conhecida como Técnica de Flutuação em 
Solução Saturada de Açúcar consiste na flutuação de ovos, cistos ou oocistos de 
parasitas através da saturação da solução fazendo com que ocorra a flutuação. 
No exame direto, se procede a diluição e análise nas objetivas supracitadas. As 
técnicas utilizadas no presente relato seguiram as metodologias descritas por 
(MONTEIRO, 2017). 
A técnica de centrífugo-flutuação com sulfato de zinco (Técnica de Faust) 
(FAUST et al., 1938) é técnica de escolha na detecção de estruturas leves 
(DUBEY, 1993), podendo também ser usada na detecção de ovos pesados 
(CARLETON & TOLBERT, 2004), o que sugere ser uma técnica com boa 
sensibilidade diagnóstica (DRYDEN, 2005; FAUST et al., 1938). Assim, avaliou-
se a eficácia do uso da técnica de Faust no diagnóstico coproparasitológico de 
helmintíases em gatos domésticos. 
A técnica de sedimentação espontânea pelo método de Hoffmann, Pons e 
Janer foi desenvolvida para o diagnóstico das enteroparasitoses. Os principais 
objetivos das técnicas de sedimentação são o aumento da concentração de ovos 
operculados e não-operculados, larvas ou cistos e o isolamento de óleos e 
gorduras da maior parte dos detritos. Nessa técnica, os organismos são 
sedimentados por igual pela gravitação ou quando centrifugados. A sedimentação 
apresenta uma ação contrária quando comparada com a flutuação. Os cistos, 
oocistos, ovos e larvas são retidos no fundo do recipiente, enquanto os detritos 
são suspensos para a superfície,não interferindo no diagnóstico final, com ela 
podem ser encontrados ovos e larvas de helmintos,bem como cisto (DE CARLI, 
2007). 
O método de Baermann, adaptado para a extração de larvas das fezes, 
constituí atualmente o processo de maior valor para o diagnóstico da 
estrongiloidíase. As investigações levadas a efeito por COUTINHO,CAMPOS e 
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AMATO NETO (1951, 1952) atestam claramente tal afirmação. No entanto, 
infelizmente, êsse recurso Iaboratoríal não tem sido largamente utilizado em 
nosso país nem mesmo no estrangeiro, fazendo com que muitos casos da 
parasitose passem despercebidos. Por outro lado, muitas investigações 
terapêuticas relativas à parasitose levam a conclusões completamente errôneas, 
por não ser o mencionado processo, empregado a propósito dos contrôles 
parasitológicos das curas. Método de exame semelhante, porém mais 
econômico, higiênico e simples, foi preconizado por RUGAI, MATTOS e 
BRISOLA (1954), que salientaram tratar-se de técnica bastante eficiente para a 
pesquisa de larvas nas fezes. Visando a avaliar devidamente o real valor do novo 
processo, efetuamos o presente estudo, comparando tal método ao de 
Baermann, adaptado para a evídenciação de larvas nas fezes. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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Resultados e Discussão 
Aula 1 – Roteiro 1 ( Exame coproparasitológico para pesquisa de 
protozoários (Sheater ou Faust)). 
OBJETIVO: Mostrar ao aluno a técnica de exame de fezes para pesquisa de 
protozoários. 
Técnica de Sheater: Exame coproparasitológico para pesquisa de protozoários. 
Finalidade: Exame coproparasitológico qualitativo com princípio de centrífugo-
flutuação para pesquisa de cistos e oocistos de protozoários intestinais. 
Procedimento: Para a realização desse experimento, seguimos rigorosamente 
as etapas conforme descritos no roteiro de aulas práticas. 
Exame macroscópico 
Consistência das fezes Massa homogênea. 
Cor das fezes Marrom 
Presença de elementos anormais Vestígios alimentares 
 
Exame microscópico: 
 
 
Figura 1 - Trofozoíto de Giardia spp. 
 
CONCLUSÃO: 
Presença de cistos de Giardia Lamblia. 
Giardíase é uma infecção no intestino delgado causada pelo protozoário Giardia 
lamblia. A infecção ocorre principalmente quando a pessoa ingere cistos do 
protozoário (forma que o parasita adquire para resistir a condições ambientais 
desfavoráveis até conseguir um hospedeiro) presentes em alimentos 
contaminados por fezes e água sem tratamento. 
Como uma das formas de se executar o diagnóstico da giardíase, o teste 
coproparasitológico é bastante indicado devido a sua eficácia no reconhecimento 
dos cistos. Essa técnica é realizada a partir da forma de flutuação fecal com a 
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utilização do sulfato de zinco. A eliminação das fezes pode ocorrer de forma 
intermitente e, por isso, os exames fecais devem ser feitos em intervalos de 4 a 5 
dias. 
Metodo de Faust 
Concluimos que o método de Faust consiste em preparar amostras para 
análises microscópicas que possam ser analisadas com mais precisão sem 
muitas distrações que possam levar a observações ou interpretações errôneas. 
Observamos a presença de cistos de Giardia lamblia nas amostras de fezes. 
 
Aula 1 – Roteiro 2 (Identificação de lâminas de protozoários, helmintos e 
artrópodes emLâminas (microscópio)) 
OBJETIVO: Mostrar ao aluno a identificação dos protozoários em lâminas 
prontas. 
Procedimento: Para a realização desse experimento, seguimos rigorosamente 
os procedimentos conforme descritos no roteiro de aulas práticas. 
Exame macroscópico 
Consistência das fezes Massa homogênea. 
Cor das fezes Marrom 
Presença de elementos anormais Vestígios alimentares 
 
Exame microscópio 
 
Figura 2 - Fonte Própria 
CONCLUSÃO: 
Conseguimos observar nas lâminas, diversos tipos parasitas em variadas 
formas como ovos de Ancilostomídeo e Enterobius vermicularis. Conforme 
previmos o objetivo da aula foi alcançado com muito e proveito de modo muito 
satisfatório, pois conseguimos identificar os elementos ali propostos. 
 
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Aula 2 – Roteiro 1 (Exame coproparasitológico para pesquisa de helmintos 
(Willis)). 
OBJETIVO: Mostrar ao aluno a técnica de exame de fezes para a pesquisa de 
ovos de helmintos. Técnica de Willis Moolay: Exame coproparasitológico para 
pesquisa de ovos de helmintos. 
Finalidade: Exame coproparasitológico qualitativo com princípio de flutuação 
para pesquisa de ovos de helmintos. 
Procedimento: Para a realização desse experimento, seguimos rigorosamente 
os procedimentos conforme descritos no roteiro de aulas práticas. 
Exame macroscópico 
Consistência das fezes Massa homogênea. 
Cor das fezes Marrom 
Presença de elementos anormais Vestígios alimentares 
 
 
Exame microscópio 
 
Figura 3 - Fonte Própria 
CONCLUSÃO: 
Essa técnica se baseia na propriedade que alguns ovos de helmintos 
apresentam de flutuarem em uma superfície de uma soluça de densidade 
elevada e de aderirem ao vidro. Este procedimento é especifico para a pesquisa 
de ovos de Ancilostomideos. 
O método Willis Molay é tradicionalmente utilizado para ovos pesados e 
leves, sendo a técnica relatada por diversos autores por apresentar ótimos 
resultados em pesquisas de ovos, cistos e oocistos. 
 
Aula 3 – Roteiro 1 (Exame coproparasitológico direto a fresco) 
OBJETIVO: Mostrar ao aluno a identificação de trofozoítos, cistos e oocistos de 
protozoários e de ovos e larvas de helmintos. 
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Procedimento: Para a realização desse experimento, seguimos rigorosamente 
os procedimentos conforme descritos no roteiro de aulas práticas. 
Exame macroscópico 
Coloração das fezes Amarelas 
Consistência das fezes Sólida 
Presença de elementos anormais Resíduos alimentares 
 
Exame microscópio 
 
Figura 4 - Fonte Própria 
 
RESULTADO: 
Analisamos a presença de resíduos vegetais, fibras vegetais, gotículas de 
gordura também foram identificadas. Sem presença de sangue ou muco. Porem 
encontrou presença de larvas de strongyloides conforme mostra a imagem 
registrada na análise. 
 
 
Aula 3 – Roteiro 2 (Exame coproparasitológico para pesquisa de helmintos 
(Hoffman)). 
OBJETIVO: Proporcionar a realização da técnica de exame de fezes para 
pesquisa de ovos “pesados” de helmintos, em especial da classe Cestoda e 
Trematoda. 
Técnica de Hoffman: Exame coproparasitológico para pesquisa de ovos 
“pesados” de helmintos. 
Finalidade: Exame coproparasitológico qualitativo com princípio de 
sedimentação para pesquisa de ovos de helmintos 
Procedimento: Para a realização desse experimento, seguimos rigorosamente 
os procedimentos conforme descritos no roteiro de aulas práticas. 
Exame Microscópio 
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Coloração das fezes Marrom escuro 
Consistência das fezes Sólida 
Presença de elementos anormais Resíduos alimentares 
 
Exame Microscópio 
 
Figura 5 - Fonte Própria 
CONCLUSÃO: 
Observamos que a parasitologia é o estudo dos parasitas ou de doenças 
parasitárias humanas, bem como seus métodos de controle e diagnóstico. 
Através da aula prática podemos aprender a realizar exames de fezes como o 
exame direto e exame de Hoffman. E olhar na microscopia e analisar os 
resultados. 
Na amostra que utilizamos não foram vistos ovos de Ascaris Lumbricoides, 
Ancylostomatida, ovos de Schistosoma mansoni e cistos de parasitas. Porém 
analisamos outra amostra de fezes e nela conseguimos verificar a presença de 
larvas de strongyloides e ovos de helmintos alarvados. 
 
Aula 4- Roteiro 1 (Exame coproparasitológico para pesquisa de larvas.) 
OBJETIVO: Mostrar ao aluno a identificação de larvas de parasitas intestinais 
utilizando a técnica de Rugai. 
Procedimento: Para a realização desse experimento, seguimos rigorosamente 
os procedimentos conforme descritos no roteiro de aulas práticas. 
Exame macroscópico 
Consistência das fezes Massa homogênea. 
Cor das fezes Marrom 
Presença de elementos anormais Vestígios alimentares 
 
Exame microscópio 
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Figura 6 - Fonte Própria 
CONCLUSÃO: 
A identificação de alguns tipos de parasitas intestinais e de suas formas 
evolutivas é necessária o emprego de técnicas especiais específicas, já que os 
métodos de rotina empregados pelos laboratórios clínicos podem não ser 
capazes de recuperá-los satisfatoriamente. 
O método de Rugai se mostrou eficiente na pesquisa de larvas, 
observamos microscopicamente larvas de strongyloides na amostra de fezes 
analisada. Este método demonstrou ser econômico eficiente e de simples 
execução. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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Referências Bibliográficas 
 
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