Relatório Prática_Bioquímica Humana

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RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS 
ENSINO DIGITAL 
	
RELATÓRIO 
01 e 02
	
	
	DATA:
______/______/______
RELATÓRIO DE PRÁTICA
Karine Tenório Carneiro Da Silva
Matrícula: 01590145
RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS: Bioquímica Humana
DADOS DO(A) ALUNO(A):
	NOME: Karine Tenório Carneiro Da Silva
	MATRÍCULA: 01590145
	CURSO: Nutrição
	POLO: Caruaru
	PROFESSOR(A) ORIENTADOR(A): Rosilma Oliveira
 
RELATÓRIO:
	ATIVIDADE CATALITICA DA AMILASE SALIVAR
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
Para a hidrólise química iniciamos separando um becker e 3 tubos de ensaio enumerados de 1 a 3, usando uma solição de amido a 1%, colocamos 30ml desta solução em um becker, em seguida colocamos 3ml de ácido clorídrico na solução de amido, misturamos para homogeneizar um pouco, em seguida, adicionamos 5ml de água nos tudos de ensaio, 5ml do nosso reagente amido + ácido clorídrico e fazemos a homogeneização, agora colocamos o tubo 1 em banho de gelo por 1 minuto, enquanto o tubo 2 colocamos 10 minutos em banho maria a 70ºC e logo após no banho de gelo e o tubo 3 colocamos 20 minutos em banho maria e logo após em banho de gelo, passados o primeiro minuto tiramos o tubo 1 do banho de gelo e vamos adicionar a solução de Lugol 2%, onde temos uma solção de iodo que reage com a composição do amido formando uma cor esverdeada-azulada, com a adição do Lugol será posível observar se o banho de gelo impediu ou não a hidrólise de acontecer, então, adicionamos 5 gotas de Lugol no tubo 1, assim que adicionamos vemos que a solução vai ficando esverdeada o que significa que não houve hidrólise, mas o amido está presente nela, após os 10 minutos passados tiramos o tubo 2 do banho maria e colocamos no banho de gelo por mais 1 minuto, passado o tempo adicionamos 5 gotas de Lugol no tubo 2 e podemos observar que a solução vai ficando azulada, o que significa que não houve degradação do amido, isso indica que a temperatura influencia na atividade química, depois do tempo de aquecimento e resfriamento do tubo 3 adicionamos as 5 gostas de Lugol e verificamos que a solução é mais densa e fica azulada.
Para a hidrólise enzimática também separamos um becker e 3 tubos de ensaio enumerados de 1 a 3, colocamos 30ml de uma solução de amido a 1% no becker e adicionamos 3ml da solução de amilase salivar, misturamos um pouco para homogeneizar, em seguida, adicionamos 5ml de água nos tubos de ensaio, 5ml do nosso reagente enzimático amido + amilase salivar e fazemos a homogeneização, agora colocamos o tubo 1 em banho de gelo por 1 minuto, enquanto o tubo 2 colocamos 10 minutos em banho maria a 70ºC e logo após no banho de gelo e o tubo 3 colocamos 20 minutos em banho maria e logo após em banho de gelo, passados o primeiro minuto tiramos o tubo 1 do banho de gelo e adicionamos 5 gostas de Lugol, assim que adicionamos vemos que a solução também vai ficando esverdeada e significa que não houve hidrólise, mas ainda temos a presença do amido, depois de 10 minutos passados, tiramos o tubo 2 do banho maria e colocamos no banho de gelo por mais 1 minuto, passado o tempo adicionamos 5 gotas de Lugol no tubo 2 e podemos observar que a solução vai ficando azulada, o que significa que não houve degradação do amido, isso indica que a temperatura influencia na atividade enzimática, depois do tempo de aquecimento e resfriamento do tubo 3 adicionamos as 5 gostas de Lugol e verificamos que a solução é mais densa e fica azulada.
Nos tubos que foram apenas para o banho de gelo a reação ficou esverdeada, depois de um tempo ela foi clareando, então está ocorrendo a degradação do amido, enquanto isso nos tubos que foram aquecidos não conseguimos perceber a mudança de coloração depois de um tempo, de fato não houve degradação do amido o que concluimos que a temperatura tem influencia na atividade química e enzimática. 
Materiais utilizados:
Pêra de borracha
6 Tubos de ensaio
Pipeta de 5ml
Cronômetro
Erlenmeyer
Proveta
Banho Maria
Banho de gelo
Becker
Solução de Amido à 1%
Solução de ácido clorídrico (HCl) 
Lugol 
2. Responda as Perguntas:
a) Qual a composição bioquímica do amido?
O amido é um polissacarídeo encontrado em grande quantidade na natureza e é formado por cadeias de amilose e/ou amilopectina. A amilose é formada por unidades de glicose unidas por ligações glicosídicas α-1,4, e a amilopectina é formada por unidades de glicose unidas por ligações glicosídicas α-1,4 e α-1,6. Assim sendo, podemos dizer, de maneira resumida, que o amido nada mais é do que uma molécula complexa formada por várias moléculas de glicose.
b) Qual o objetivo do uso de HCl, aquecimento e resfriamento no procedimento da hidrólise química do amido?
A reação com aplicação de ácido clorídrico favorece a hidrólise do amido. Dessa maneira, mistrurar este composto numa reação, tem-se glicose como produto final.
c) Descreva a sequência de transformações operadas pela amilase na molécula da amilose.
Com a mastigação há liberação da enzima α-amilase, presente na saliva. Ela catalisará a hidrólise nas ligações glicosídicas (α1 → 4) da amilose, resultando em maltose, glicose e amilopectina; e das ligações (α1 → 4) da amilopectina, resultando em dextrina, mistura de polissacarídeos.
d) Explique os resultados obtidos durante o ensaio bioquímico.
Quando acrescentado o Lugol nos tubos 1, não houve hidrólise, a soloção foi ficando esverdeada, pois, o amido ainda estava presente, depois de um tempo foi ficando mais clara o que indicou que houve a degradação do amido. Nos tubos 2, após adicionarmos o Lugol a solução ficou azulada, ou seja, não houve hidrólise, nos tubos 3 a solução ficou um pouco mais densa e um azulado mais escuro, quase preto, observamos que também não houve hidrólise, mas que o amido estava presente na solução o que indica que as alterações de temperatura como o aquecimento não ajudam na hidrólise.. 
	REAÇÃO DE SELIWANOFF (REAÇÃO PARA DISTINÇÃO ENTRE ALDOSES E CETOSES)
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
As aldoses são grupos de carboidratos simples, enquanto as cetoses são monossacarídeos que contém grupo cetona. A reação de Seliwanoff se dá porque as cetoses reagem com ácidos fortes, para a nossa prática iremos utilizar o ácido clorídrico e ao reagir com ácidos fortes ele produz um composto chamado de furfural, este composto reage com o resorcinol, que é um composto derivado da ureia, que está presente no reativo de Seliwanoff.
Começamos identificando os tubos de ensaio, como 1 tubo para glicose, 1 tubo para frutose e 1 tubo para água que vai servir de controle mega ativo, feito isso, colocamos 1ml de glicose, frutose e água em seus respectivos tubos, em seguida colocamos 1,5ml de HCL em cada tubo, que vai servir de ácido forte para fazer a reação com a cetose e a aldose, fazemos uma leve homogeneização, adicionamos agora 0,5ml do reativo de Seliwanoff em cada um dos tubos, levamos os tubos para o banho maria a 70ºC e visulizaremos a nossa reação, o produto que formado na reação entre o furfural e o resorcinol tem a coloração vermelha, após aproximadamente 2 minutos tiramos os tubos do banho maria, o tubo da glicose permaneceu inalterado, isso confirma que ela não é uma cetose e não tem produção de furfural e reação com o resorcinol, o tubo da frutose tivemos alteção de cor, a solução está com a coloração vermelha, o que indica que houve uma reação do resorcinol com o furfural e no tubo da água não tivemos alteração.
Confirmamos que nas cetoses temos produção de furfural e temos a reação com o resorcinol, conseguimos identificar a diferenciação das cetoses e das aldoses.
Materiais utlilizados:
Solução de Seliwanoff 0,5ml
Ácido Clorídrico (HCL) 1,5ml
Solução de Glicose 1ml
Solução de Frutose 1ml
Água Destilada 1ml
3 Tubos de Ensaio
Becker
Pipeta de 5ml
Banho Maria
2. Responda as Perguntas:
a) Qual o princípio da técnica de Seliwanoff?
Este teste baseia-se no princípio deque, quando aquecidas, as cetoses sofrem
desidratação muito mais rapidamente que as aldoses. Este teste fora proposto por Theodor Seliwanoff, daí ser assim designado.
b) Qual o objetivo de utiliza um tubo apenas com água destilada.
A água destilada deve ser utilizada no laboratório para deixar as vidrarias completamente
limpas, pois a água destilada é pura, então vai evitar que as análises sofram algum tipo de
interferência, a água destilada proporciona menos interrupções por conta de outras substâncias presentes na água, ou seja foi usada como controle negativo.
c) Porque é necessário aplicar fervura e ácido clorídrico (HCl) durante o teste de Seliwanoff?
A plicamos o HCL no teste de Seliwanoff para desidratar os carboidratos ali presentes, e
para que esse processo ocorra é preciso que haja energia no meio e essa energia vem da fervura. Ao desidratar os carboidratos, o HCL forma furfurais e assume a coloração vermelha.
d) Explique os resultados obtidos durante o ensaio bioquímico quanto a presença de aldose e cetoses.
Vimos que na frutose teve produção de furfural e a reação com o reagente de Seliwanoff, deixando a solução avermelhada concluindo que é uma cetose, já na solução de água e na glicose que é uma aldose não ocorre a produção de furfural com o reagente, permanecendo assim com a colocaração inalterada, dessa maneira podemos identificar as aldoses e as cetoses.
	PRECIPITAÇÃO POR ÁCIDOS FORTES E METAIS PESADOS
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
As principais fontes de precipitação de proteínas são os ácidos fortes, para a nossa prática utilizamos o ácido Tricloroacético à 20%, Acetato de Chumbo e a Ovoalbumina à 10% como matéria prima, utilizamos um tubo com 1ml de ácido tricloroacético e um tubo com 5 gotas de acetato de chumbo, em seguida, colocamos 2ml de ovoalbumina em cada tubo, observamos que a precipitação é imediata, no tubo com o ácido formou um líquido leitoso, isso indica que houve a precipitação da proteína pelo ácido, no tubo com o metal pesado também conseguimos verificar uma precipitação, dessa vez mais tímida, poque o ácido forte tem a capacidade de quebrar as ligações pepitídicas da proteína, por isso temos uma solução mais leitosa, mas entendemos que com o metal pesado também visualizamos a precipitação, só que menos intensa. 
Materiais utilizados:
Ácido Tricloroacético à 20% 1ml
Acetato de Chumbo 5 gotas
Ovoalbumina à 10% 4ml
2 Tubos de Ensaio
Pipeta de 5ml
2. Responda as Perguntas:
a) Por que a ovoalbunina precipita na presença de ácidos fortes e metais pesados?
Isso ocorre poque os ácidos fortes e os metais pesados podem alterar a estrutura das proteínas e afetar as forças das ligações entre as moléculas de proteína, o que resulta na perda de sua forma nativa, como na experiência com o ácido forte que formou um líquido leitoso e alguns aglomerados de proteínas.
b) Explique por que a ovoalbumina torna-se insolúvel após a precipitação.
As proteínas podem ser desnaturadas de acordo com as condições de pH e temperatura, quando essas variações se alteram demais, que foi o caso da ovoalbumina quando ela precipitou, a proteína perde a sua conformação e a sua função.
c) Explique os resultados encontrados no experimento.
Concluimos que em pH situado do lado alcalino do seu ponto isoelétrico, algumas proteínas combinam-se com cátions de metais pesados formando proteinatos insolúveis. Os sais de metais pesados reagem com seu cátion com o ânion da proteína (COO-) formando proteinatos, no caso de mercúrio de prata e de cobre, estes proteinatos são insolúveis e por isso precipitam. Os ácidos fortes desnaturam (precipitam) as proteínas, transformando-as em meta proteínas que são solúveis.
	PRECIPITAÇÃO FRACIONADA POR SOLUÇÕES SALINAS CONCENTRADAS
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
As proteínas são classificadas de acordo com o seu ponto isoelétrico e dependendo do ambiente em que ela está colocada ela interage de forma iônica com alguns compostos, podemos mudar essa concentração iônica de acordo a adição de sais, com essa adição podemos mudar a concentração do ambiente em que se encontra a proteína, conseguindo dissociar a proteína de forma a precipitá-las. Iniciamos a prática identificando os tubos como A e B, no tubo A colocamos 2ml da solução de ovoalbumina e 2ml da concentração salina, no tubo B adicionamos 2ml da solução de ovoalbumina, 2ml da concentração salina e 2ml da água destilada, percebemos que no tubo A a solução ficou leitosa, então, houve uma precipitação, já no tubo B não houve precipitação, pois a água interfere na iônização das cargas. A prática demonstra a importância do ponto isoelétrico das proteínas, bem como o meio em que se encontra, dependendo da carga iônica que a proteína for submetida é possível ser separada através de uma concentração salina, que proporciona a separação das proteínas, que é de importantíssima utilização clínica e biológica.
Materiais Utilizados: 
Solução de Ovoalbumina à 10%
Solução de Sulfato de Amônia Concentrada
Água Destilada
2 tubos de ensaio
Pipeta de 5ml
2. Responda as Perguntas:
a) Explique os conceitos de “Salting out”, “Salting in” e camada de solvatação?
Salting-out - é um processo pelo qual substâncias solúveis em água são excluídas da
fase aquosa pela adição de sais.
Salting in - refere-se ao efeito em que o aumento da força iônica de uma solução aumenta a solubilidade de um soluto, como uma proteína. Este efeito tende a ser observado em forças iônicas mais baixas.
Camada de solvatação - entende-se pelo fenômeno que ocorre quando um composto iônico ou polar se dissolve em uma substância polar, sem formar uma nova substância. As moléculas do soluto são rodeadas pelo solvente. A solvatação acontece tanto em soluções iônicas quanto moleculares.
b) Qual o princípio bioquímico do experimento?
Quando adicionamos sais neutros a uma solução, ocorre um aumento da força iônica
(aumento da concentração de íons) do sistema. Assim, quando adicionamos pequenas
quantidades de sal a uma solução que contém proteínas, as cargas provenientes da
dissociação do sal passam a interagir com as moléculas proteicas, o que diminue a interação entre elas.
c) Explique os resultados encontrados durante o experimento.
Observamos a importância das proteínas bem como o ambiente, dependendo da carga iônica na qual a proteína é submetida ela pode ser separada através de uma concentração salínica, que ira proporcionar a separação das proteínas que é de suma importância na utilização clinica e biológica onde o objetivo seja isolar determinada proteína.
	REAÇÃO DE BENEDICT (IDENTIFICAÇÃO DE AÇÚCARES REDUTORES)
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
Os açúcares redutores são alguns carboidratos que apresentam uma estrutura hidroxila -OH em um dos carbonos C1, essa hidroxila consegue reagir com diversos íons, principalmente íons metálicos, a reação se baseia nessa ligação, onde a carbonila vai se ligar a um reativo, chamado de reativo de Benedict, esse reativo contém íons cúpricos que ao reagir com a carbonila, forma um composto chamado de óxido cuproso que podemos observar através da coloração vermelho tijolo. Iniciamos nossa prática separando um tubo para a Glicose, um tubo para a Sacarose e tubo para água, colocaremos 5ml do reativo de Benedict em cada um dos tubos e porteriormente 5ml de cada uma das soluções em seus respectivos tubos. A reação não ocorre instantaneamente, precisamos coloca-las no banho-maria à 70ºC por 5 minutos, passados os minutos já conseguimos visualizar as reações, no tubo da água não tivemos nenhuma reação, no tubo da sacarose também não houve reação, o que significa que a sacarose não é um carboidrato redutor, ele não tem hidroxila, já no tubo da glicose percebemos que houve reação, não obtivemos uma coloração avermelhada, conseguimos uma colocaraçãoesverdeada significando também que houve redução de íons, houve uma reação do cobre, nessa caso não há formação do óxido cuproso, mas houve a redução. Essa prática é importantíssima a fim de várias outras reações que ocorrem em relação aos caboidratos redutores e são utilizados em diversas reações na indústria e em outros seguimentos.
Materiais utilizados:
Solução de Glicose à 1%
Solução de Sacarose à 1%
Reativo de Benedict
3 Tubos de Ensaio
Água Destilada
Pipeta de 5ml
Banho-maria
Cronômetro
															
2. Responda as Perguntas:
a) Explique o princípio da técnica bioquímica do experimento.
Os açucares redutores reduzem sais cúpricos, caso do reativo de Benedict, em soluções quentes, mudando a coloração dos mesmos.
b) Qual o conceito de “açúcares redutores”?
Os açúcares redutores são carboidratos monossacarídeos, capazes reduzir os sais de cobre, prata e bromo em soluções alcalinas, pois possuem grupos aldeídos ou cetonas livres.
c) Explique os resultados encontrados no experimento.
No tubo com água destilada que foi nosso controle negativo, após o aquecimento, como esperado, não obteve nenhuma reação, uma vez que a água não é um açúcar redutor, percebemos que a cor da solução permaneceu inalterada, que era a cor do reativo de Benedict, portanto não houve mudança de cor.
No tubo da sacarose, após o aquecimento, percebemos que também não houve redução e nem reação entre os íons, a sacarose não é um carboidrato redutor, não tem a hidroxila que é a carbonila que faz com que aconteça a reação com os íons cúpricos.
No tubo da glicose após o aquecimento, percebemos que houve uma modificação na cor, que de azul passou para uma cor esverdeada indicando que houve redução dos íons, reação do cobre, neste caso, não há formação do óxido cuproso mas, percebemos uma diferença entre a sacarose e a glicose ou seja, a glicose é um agente reduto
d) Explique como o experimento pode ser aplicado nas atividades na área clínica.
A presença de glicose na urina pode ser um sinal de diabetes. Testar uma amostra de urina com o reagente de Benedict é uma maneira simples de verificar a presença de glicose em pessoas suspeitas de terem esta doença. No entanto, não é um teste definitivo, pois outros açúcares redutores produzirão a mesma reação. Se a urina for positiva, outros testes terão que ser realizados para confirmar a condição. As mulheres grávidas podem ser testadas desta forma a intervalos regulares para detectar diabetes gestacional, que pode aparecer durante a gravidez em mulheres sem histórico prévio da doença. O teste de reagente de Benedict pode ser usado para testar a presença de glicose na urina, mas este teste não é recomendado ou usado para o diagnóstico de diabetes mellitus.
	REAÇÃO DE BIURETO
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
O Reativo de Biureto é um composto derivado da ureia, este composto reage com algumas conformações que temos nas proteínas, os grupos cabonilas, ele reage com essa conformação dando uma coloração violeta. Para a prática colocamos em um tubo 1ml de água e adicionamos 1ml do reativo do biureto, logo vemos que não obteve nenhuma alteração de cor, em outro tubo colocamos 1ml de ovoalbumina e 1ml do reativo e neste sim, obtemos a coloração violeta.
Materiais utilizados:
Reativo de Biureto
Solução de Ovoalbumina à 1%
Água Destilada 
2 Tubos de Ensaio
Pipeta volumétrica
2. Responda as Perguntas:
a) Explique o princípio bioquímico da Reação de Biureto.
A reação de Biureto é um teste químico utilizado para detectar a presença de proteínas em uma solução, ele baseia-se no princípio bioquímico que envolve a formação de um complexo entre íons de cobre e ligações peptídicas presentes nas proteínas.
b) Qual o tipo de ligação que ocorre entre o Biureto e as moléculas identificadas?
Os que são compostos com duas ou mais ligações peptídicas atigem uma coloração violeta submetidos a uma solução diluída de sulfato de cobre em meio alcalino. O reagente biureto é uma solução de sulfato de cobre (CuSO 4) e bitartarato de sódio e potássio (KNaC4H4O6) são formados quando reagem com íons de cobre, produto violeta. A reação do biureto é positiva para proteína (peptídeo com três ou mais resíduos de aminoácidos). A reação também é muito positiva para aqueles que contêm dois grupos carbonil diretamente conectados (-CONH2) ou através de um único átomo carbono ou nitrogênio.
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
A reação do biureto é positiva para proteínas e peptídeos com três ou mais resíduos de aminoácidos. Dependendo da complexidade da proteína ou de peptídio em questão, a cor do produto da reação (presença do biureto) varia substancialmente. Proteínas, normalmente, geram coloração violeta, peptídeos dão coloração rosa.
	REAÇÃO DO LUGOL (IDENTIFICAÇÃO DE POLISSACARÍDEOS)
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
Dentre os polissacarídeos mais comuns que encontramos na natureza, principalmente no âmbito vegetal, temos o amido, que faz parte da nossa alimentação e o encontramos em diversos alimentos. Para a prática colocamos 1ml da solução de amido no Tubo 1, adicionamos mais 5 gotas da solução de lugol, logo percebe-se a mudança de cor, conseguimos uma coloração esverdeada-azulada o que indica a presença do amido, em seguida colocamos 1ml de água no Tubo 2 e adicionamos 5 gotas da solução e não obtivemos nenhuma alteração, como esperado.
Materiais utilizados:
Solução de amido à 1%
Solução de Lugol à 2%
Água Destilada
Pipeta de 1ml
2 Tubos de ensaio
2. Responda as Perguntas:
a) Explique o princípio bioquímico da utilização do lugol na identificação de polissacarídeos.
Quanto mais escura e intensa for a cor significa que há maior quantidade do polissacarídeo, no caso, o amido.
b) Explique para quais situações essa técnica pode ser utilizada. 
Essa técnica é utilizada para a verificação do amido.
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
d) Foi observado que no tubo onde havia sido colocado a água ficou com uma cor amarelada meio 
e) amarronzado e no outro tubo onde havia o amido ficou com uma cor esverdeada e isso indica a 
f) presença do amido. 
Foi observado que no tubo onde havia sido colocado a água ficou com uma cor amarelada meio 
amarronzado e no outro tubo onde havia o amido ficou com uma cor esverdeada e isso indica a 
presença do amido. 
Foi observado que no tubo onde havia sido colocado a água ficou com uma cor amarelada meio 
amarronzado e no outro tubo onde havia o amido ficou com uma cor esverdeada e isso indica a 
presença do amido. 
Foi observado que no tubo onde havia sido colocado a água ficou com uma cor amarelada meio 
amarronzado e no outro tubo onde havia o amido ficou com uma cor esverdeada e isso indica a 
presença do amido. 
Foi observado que no tubo onde havia sido colocado a água ficou com uma cor amarelada meio amarronzado que é a cor da solução de lugol, como esperado e no outro tubo onde havia o amido ficou com uma cor esverdeada-azulada isso indica há presença do amido. 
	REAÇÃO DE SAPONIFICAÇÃO
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
A Reação de Saponificação ocorre através de uma hidrólise alcalina, utilizando um sal alcalino, faz a quebra do triglicerídeo em glicerina e ácido graxo, o ácido graxo é o composto que faz a saponificação, esse composto que faz a produção de espuma. Inicialmente colocamos 5ml da solução etanólica e 2ml do óleo no tubo 1, logo vemos que eles não se misturam é nessecário o banho-maria para que ocorra a reação, então, colocamos em banho-maria por 5 minutos, após o tempo percebemos que de fato ocorreu a hidrólise, uma vez que podemos visualizar que as soluções se homogeneizaram, indicando que houve a saponificação, no tubo 2 colocamos 1ml de água + 2ml da solução de saponificação que obtivemos, é necessário a homogeneização para vermos que a formação a espuma, concluindo que a hidrólisefoi efetiva, no tubo 3 adicionamos 2ml da solução de saponificação e 5 gotas da solução de água dura (cloreto de cálcio), homegenizamos e percebemos que não há formação de espuma, pois a água está cheia de sais o que dificulta a formação do sabão. A saponificação é algo industrial e também caseiro, de grande utilidade porque é o sabão que faz a parte do desgorduramento, a limpeza e axepicia de diversos ambientes, seja hospitalar ou residencial.
Materiais utilizados:
Óleo vegetal
Água destilada
Solução de Hidróxido de Potássio
Solução de Água dura (Cloreto de Cálcio)
3 Tubos de ensaio
Pipeta volumétrica
Banho-maria
Cronômetro
2. Responda as Perguntas:
a) Explique bioquimicamente o que são ácidos graxos e triglicerídeos.
Os ácidos graxos são um tipo de lipídio ou gordura que é formada por cadeias de carbono e um grupamento carboxila ( —COOH) nas extremidades. Esse nutriente é utilizado como combustível pelas células e se constitui como uma das principais fontes de energia juntamente com as proteínas e a glicose.
Os triglicerídeos são óleos e gorduras de origem animal e vegetal formados pela reação entre três ácidos graxos e uma molécula de glicerina.
b) Explique a fundamentação teórica da técnica de saponificação. 
A reação de saponificação ocorre quando um éster em solução aquosa de base orgânica origina um sal orgânico e álcool. A Reação de saponificação também é conhecida como hidrólise alcalina, através dela é que se torna possível a formação do sabão.
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
No tubo 2 é identificada a formação de sabão, com textura tátil que o sabão tem de escorregadio, a que seria de um sabonete líquido, consegue sentir o líquido viscoso e a formação de espuma, mudou totalmente de cor, ocorreu a hidrólise. Já no tubo 3 temos a percepção visual de que é diferente da nossa amostra com a água. Não há formação da espuma tão vigorosa como vimos no outro tubo, percebe-se cristais, pequenas precipitações que são do cálcio, é o que acontece com a água, grande quantidade desses íons dos sais(cálcio e magnésio) ela interfere com a reação da produção de sabão.
	SOLUBILIDADE DOS LIPÍDIOS
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
Os lipídios tem uma característica peculiar, eles são hidrofóbicos (não solúvel em água). Inicialmente enumeramos os tubos, tubo 1 para a água, tubo 2 para o HCL, tubo 3 para o N2OH, o tubo 4 para o Etanol e o tubo 5 para o Éter. Começamos colocando 3ml de cada solução em seu respectivo tubo, em seguida adicionamos 1ml de óleo em cada um dos tubos, no tubo da água, não houve dissolução, como esperado, uma vez que água e óleo não se misturam, no tubo do ácido também não conseguimos solubilidade do lipídio, no tubo da nossa solução alcalina o N2OH mais uma vez não conseguimos solubilidade, temos a reação de hidrólise, ou seja a saponificação, mas não temos homogeneização, não conseguimos misturar em uma solução alcalina, no tubo do etanol conseguimos visualizar algumas bolhas, pormenoridades da molécula do lipídeo, o álcool etílico consegue fazer um pouco essa solubilidade, no tubo do éter é nítido que conseguimos nossa melhor solubilidade, o éter é um solvente que consegue fazer essa compartimização do lipídeo, foi o único que conseguiu a solubilização.
Materiais utilizados:
Óleo vegetal
Água destilada
Solução de Ácido Clorídrico (HCL)
Solução de Hidróxido de Sódio (N2OH)
Solvete de Éter Etílico
Solvete de Álcool Etílico ou Etanol
5 Tubos de ensaio
Pipeta volumétrica
2. Responda as Perguntas:
a) Explique a estrutura bioquímica dos lipídios correlacionado com sua característica de insolubilidade em soluções aquosas. 
Entre as principais funções biológicas dos lípidos está o armazenamento de energia, o fato de se tratar de moléculas estruturais nas membranas e de intervir na sinalização celular. O termo lípidos se utilizar por vezes como sinónimo de gordura, na realidade possui um significado mais amplo, uma vez que as gorduras constituiriam apenas os triacilglicerídios. Muitos lipídios contêm ácidos gordos como componente principal (triglicerídios, fosfolípidos). Em virtude de sua insolubilidade em soluções aquosas, os lipídeos corporais são geralmente compartimentalizados, exemplo: gotículas de triglicerídeos (triacilgliceróis) nos adipócitos ou transportados no plasma em associação com proteínas (lipoproteínas). Uma vez que uma característica do lipídio é ser hidrofóbico. Não dissolve em água. O lipídio para estar sendo introduzido em meio líquido ele precisa ser carreado principalmente por proteínas. Uma característica do lipídio é ser hidrofóbico. Não dissolve em água. O lipídeo para estar sendo introduzido em meio líquido ele precisa ser carreado principalmente por proteínas.
b) Explique a fundamentação teórica da técnica de solubilidade dos lipídios. 
Devido à natureza apolar, os lipídios apresentam baixa solubilidade em água e boa solubilidade em solventes orgânicos. Sabendo que os lipídios são moléculas apolares e conhecendo o princípio da solubilidade que "semelhante dissolve semelhante", certamente as amostras que contêm lipídios formarão soluções de apenas uma fase com as substâncias apolares, e com as substâncias polares formam soluções onde são observadas mais de uma fase.
c) Explique os resultados encontrados no experimento.
Notamos que no tubo 1, onde colocamos água destilada, as substancias não
se misturam, uma ves que os lipídeos são hidrofóbicos. No tubo 2, colocamos acido clorídrico, que também não se mistura também. No tubo 3, colocamos hidróxido de sódio, formou-se sabão. No tubo 4, colocamos etanol e houve uma moderada mistura, mas obteve-se uma dissolução. No tubo 5, colocamos éter etílico e dissolveu totalmente, confirmando sua solubilidade.
REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS: https://mundoeducacao.uol.com.br/biologia/amido.htm#:~:text=O%20amido%20%C3%A9%20um%20polissacar%C3%ADdeo%20encontrado%20em%20grande%20quantidade%20na,e%20%CE%B1%2D1%2C6 https://cesad.ufs.br/ORBI/public/uploadCatalago/12175010072012Quimica_Biomoleculas_aula_2.pdf 
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