avaliação de bioquimica humana relatorio

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<p>lOMoARcPSD|43755986</p><p>RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS ENSINO DIGITAL</p><p>RELATÓRIO</p><p>01 e 02</p><p>DATA:</p><p>28/08/2024</p><p>lOMoARcPSD|43755986</p><p>RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS ENSINO DIGITAL</p><p>RELATÓRIO</p><p>01 e 02</p><p>DATA:</p><p>28/08/2024</p><p>lOMoARcPSD|43755986</p><p>RELATÓRIO DE PRÁTICA</p><p>Matricula 04166806</p><p>André Marques Pereira</p><p>RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS: Bioquímica Humana</p><p>DADOS DO(A) ALUNO(A):</p><p>NOME: André Marques Pereira</p><p>MATRÍCULA: 04166806</p><p>CURSO: Enfermagem</p><p>POLO: Unama (Macapá)</p><p>PROFESSOR(A) ORIENTADOR(A): Claudeir Dias da Silva Junior</p><p>RELATÓRIO:</p><p>ATIVIDADE CATALITICA DA AMILASE SALIVAR</p><p>1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.</p><p>Técnica química: colocando 30ml da solução de amido de milho mais 3ml de ácido clorídrico, adicionando em 3 tubos para serem analisados no banho maria e no gelo. Técnica enzimática: colocando 30ml da solução de amido de milho,3ml de amilase salivar e 5ml de água misturando até ficar uma solução homogenia foi utilizado 3 tubos para a análise.</p><p>Tubo 1: colocando os dois tubos no gelo por 1mim e adicionando 5 gotas da solução de lugol 2%, deixando reagir, foi visto que não ocorreu a hidrólise tem a presença de amido.</p><p>Tubo 2: colocando as reações no banho maria por 10mim e depois no banho de gelo por 1mim, após retirar do banho de gelo adicionando 5 gotas de lugol a 2%, não ocorreu a degradação do amido.</p><p>Tubo 3: colocando as reações no banho maria por 20 mim e depois no banho de gelo por 1 mim, logo após adicionando 5 gotas de lugol a 2%, não ocorreu degradação do amido</p><p>*Materiais utilizados:</p><p>Amilase salivar, ácido clorídrico, lugol 2%, solução de amido a 1%, água destilada, banho maria, banho de gelo, tubos de ensaios, Becker, pipetas de vidro, Pêra de borracha e EPI.</p><p>2. Responda as Perguntas:</p><p>a) Qual a composição bioquímica do amido?</p><p>O amido é um polissacarídeo encontrado em grande quantidade na natureza e éformado por cadeias de amilose e/ou amilopectina. A amilose é formada por unidades de glicose unidas por ligações glicosídicas α-1,4, e a amilopectina é formada por unidades de glicose unidas por ligações glicosídicas α1,4 e α-1,6.</p><p>b) Qual o objetivo do uso de HCl, aquecimento e resfriamento no procedimento da hidrólise química do amido?</p><p>Reduzir o pH da solução, isto é, torná-la ácida. Um ótimo exemplo de ação desse composto químico ocorre justamente no corpo humano, durante um processo do sistema digestivo. Além dessa função, esse ácido também serve para: catalisar (acelerar reações químicas) reações orgânicas de pH baixo.</p><p>c) Descreva a sequência de transformações operadas pela amilase na molécula da amilose.</p><p>O iodo reage com as moléculas de amido e quando o mesmo interage com ascadeias de amilose produz uma cor azul devido a sua estrutura helicoidal. Hidrólise nas ligações glicosídicas (α1 → 4) da amilose, resultando em Maltose, glicose e amilopectina.</p><p>d) Explique os resultados obtidos durante o ensaio bioquímico.</p><p>AA1 e AE1- que após adicionar 5 gotas de lugol percebemos que teve modificação nos tubos e ficou esverdeado. Não houve hidrolise, logo após foi colocado no banho de gelo permanecendo a presença de amido. Não houve hidrolise em ambos os tubos enzimático equímico.AA2 e AE2- Após adicionar 5 gotas de lugol, os tubos ficou na cor azul escuro, e ocorreu a interação do lugol e o amido.AA3 e AE3 - Após adicionar 5 gotas de lugol percebemos que ficou uma cor azul escura, houve a interação com o amido.</p><p>REAÇÃO DE SELIWANOFF (REAÇÃO PARA DISTINÇÃO ENTRE ALDOSES E CETOSES)</p><p>1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quaismateriais utilizados.</p><p>2. Responda as Perguntas:</p><p>a) Qual o princípio da técnica de Seliwanoff?</p><p>A técnica de Seliwanoff um teste químico que distingue entre os açúcares aldose ecetose. O seu nome em homenagem a Theodor Seliwanoff, o químico que imaginou o teste.</p><p>b) Qual o objetivo de utilizar um tubo apenas com água destilada.</p><p>A água destilada deve ser utilizada no laboratório para deixar as vidrariascompletamente limpas, pois a água destilada é pura, então vai evitar que as análises sofram algum tipo de interferência.</p><p>c) Porque é necessário aplicar fervura e ácido clorídrico (HCl) durante o teste de Seliwanoff?</p><p>A função do HCL no teste de seliwanoff é a de desidratar os carboidratos, para queesse processo ocorra é preciso que haja energia no meio e essa energia vem da fervura. Ao desidratar os carboidratos, o HCL forma furfural e assume a coloração vermelha</p><p>d) Explique os resultados obtidos durante o ensaio bioquímico quanto a presença de aldose e cetoses.</p><p>Durante o ensaio bioquímico confirmamos que a frutose é uma cetose. Na reação ocorre a produção do furfural e tem a reação com o resorcenol dentro do reativo de seliwanoff e podemos visualizar pela coloração vermelho no tubo da frutose.</p><p>PRECIPITAÇÃO POR ÁCIDOS FORTES E METAIS PESADOS</p><p>1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quaismateriais utilizados.</p><p>Para a preparação vai utilizar ácido tricloroacético 20%, acetato de chumbo 10%, e albumina a 10%. colocar 10ml de ovo albumina em cada tubo. Na reação com o ácido tricloroacético: colocar 1ml de ácido tricloroacético e colocar 2ml albumina a precipitação é imediata formando um líquido leitoso formando uns grânulos onde ocorreu a precipitação da proteína com o ácido. Reação com o acetato de chumbo: colocar 5 gotas de chumbo 10%, adicionando2ml de ovo albumina e homogeneizar ocorreu a precipitação só que no tubo ácido forte tem a capacidade de quebrar as ligações peptídicas da proteína mais do que o chumbo.</p><p>Materiais utilizados: pepita, becker e pêra de borracha</p><p>2. Responda as Perguntas:</p><p>a) Por que a ovoalbunina precipita na presença de ácidos fortes e metais pesados? Por que o ácido forte tem a capacidade de quebrar as ligações peptídicas da proteína sua precipitação é mais intensa do que do chumbo</p><p>b) Explique por que a ovoalbumina torna-se insolúvel após a precipitação.</p><p>Por que ocorreu a ruptura das ligações originais, ocorrendo a precipitação.</p><p>c) Explique os resultados encontrados no experimento.</p><p>Durante o experimento consegui visualizar que no tubo ácido a precipitação foi mais intensa, o ácido com sua capacidade de quebrar as ligações peptídicas da proteína mais do que do chumbo.</p><p>PRECIPITAÇÃO FRACIONADA POR SOLUÇÕES SALINAS CONCENTRADAS</p><p>1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.</p><p>As proteínas são classificadas de acordo com o seu elétron de acordo com o ambiente onde sendo colocada interage de forma iónica com alguns compostos. Para o experimento foi utilizado ovo albumina a 10%, sulfato de amónio concentrado, a concentração salina que vai ocorre a precipitação e a água para utilizar como padrão negativo. Tubo A- adicionando 2ml de albumina, adicionar mais 2ml da concentração salina, observar e aguardar a reação que foi imediata a mesma ficou esbranquiçado. Tubo B- adicionando 2ml de albumina, sulfato de amónio e água, a água influência na questão iónica das cargas e nesta reação não conseguimos ver a precipitação. Materiais utilizados: pera de borracha, pipeta e becker</p><p>2. Responda as Perguntas:</p><p>a) Explique os conceitos de “Salting out”, “Salting in” e camada de solvatação? Salting out: é um processo pelo qual substâncias solúveis em água são excluídas da fase aquosa pela adição de sais.</p><p>Salting in: refere-se ao efeito em que o aumento da força iônica de uma solução aumenta a solubilidade de um soluto, como uma proteína. Este efeito tende a ser observado em forças iônicas mais baixas.</p><p>Camada de solvatação: Entende-se pelo fenômeno que ocorre quando um composto iônico ou polar se dissolve em uma substância polar, sem formar uma nova substância. As moléculas do soluto são rodeadas pelo solvente. A solvatação acontece tanto em soluções iônicas quanto moleculares.</p><p>b) Qual o princípio bioquímico do experimento?</p><p>As proteínas são classificadas de acordo</p><p>com o seu ponto isoelétrico e dependendo do ambiente onde ela está colocada interage de forma iônica com alguns compostos e podemos mudar essa concentração iônica de acordo como adicionamento de sais. Esse adicionamento de sais a consegue fazer com que mude a concentração do ambiente onde está a proteína e consiga dissociar as proteínas de forma a precipitá-las. Esse é o intuito da prática onde consiga em uma concentração onde temos vários tipos de proteínas fazer uma separação</p><p>c) Explique os resultados encontrados durante o experimento.</p><p>No tubo A houve precipitação da proteína em concentração salina formando um liquido leitoso esbranquiçado. Já no tubo B com sulfato de amônio não houve a formação da precipitação de proteína. A água interfere na questão iônica das cargas.</p><p>REAÇÃO DE BENEDICT (IDENTIFICAÇÃO DE AÇÚCARES REDUTORES)</p><p>1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas equais materiais utilizados.</p><p>Os açucares redutores são alguns carboidratos que apresenta estrutura de hidroxila, ela consegue reagi com vários íons que é a carbonila ela vai se ligar a um reativo Benedict esse reativo ele contém íons cúpricos, o reagente tem a cor azul, a junção da carbonila e o íon cuproso, formam a cor vermelho tijolo. Para essa reação foi utilizado a glicose 1%, sacarose 1%, água e o reativo de Benedict qualitativo. Tubo da glicose: adicionando 5ml de Benedict, mais 5ml de glicose e homogeneizar, não ocorreu reação. Para obter a reação positiva ou não precisa levar a reação no banho maria a 70 graus por 5 minutos, logo após retirar a solução percebemos alteração da cor de azul para esverdeado esta cor esverdeada significa que teve a diminuição dos íons tubo de água: adicionando 5ml de Benedict e acrescentando água e homogeneizar não teve reação. Para obter a reação precisa levar no banho maria a 70 graus por 5 minutos, logo após retirar não teve nenhuma alteração na cor. Tubo de sacarose: adicionando 5ml de Benedict e acrescentando 5ml de sacarose e fazendo a homogeneização aspirando e liberando o reativo, não teve reação. foi colocado a reação no banho maria a 70 graus por 5 minutos e não teve reação a sacarose não é um carboidrato redutor não tem a hidroxila.</p><p>Materiais utilizados: 3 tubos de experimento, becker, pêra de borracha</p><p>2. Responda as Perguntas:</p><p>a) Explique o princípio da técnica bioquímica do experimento.</p><p>É usado para detectar a presença de certos tipos de carboidratos conhecidos como açúcares redutores. Estas substâncias podem ser submetidos a reações químicas em que se dão electrões para outros compostos, o que resulta na produção de novas substâncias, e eles reagir desta maneira com reagente de Benedict para produzir um composto insolúvel, de cor avermelhada</p><p>b) Qual o conceito de “açúcares redutores”?</p><p>É um Açúcar que, em solução básica, apresenta um grupo carboxílico livre aldeído. Sua capacidade de redução se dá pela presença de um grupo aldeído ou cetona livre. Todo monossacarídeo, alguns dissacarídeos e oligossacarídeos</p><p>c) Explique os resultados encontrados no experimento.</p><p>Tubo de glicose: Com a solução em banho maria a 70 graus, após 5 minutos houve uma modificação, porém não é uma reação de coloração vermelho tijolo, mas a modificação de cor esverdeada indica que houve uma redução dos íons, uma reação do cobre. E nesse caso não há formação do ácido cuproso, já foi reduzido ao máximo o cobre. É perceptível a diferença entre a sacarose e a glicose, isso significa que a aldose é um agente redutor (monossacarídeo) e aa sacarose não é redutora. Tubo da sacarose: Com a solução em banho maria a 70 graus, após 5 minutos não houve uma reação entre os íons. Significa que a sacarose não é um carboidrato redutor, ou seja, ele não tem a hidroxila, a carbonila que faz areação com os íons cúpricos. Tubo da água: Com a solução em banho maria a 70 graus, após 5 minutos não houve uma reação. A cor que está no tubo é do reativo de Benedict (azul). Não houve mudança de cor.</p><p>Explique como o experimento pode ser aplicado nas atividades na área clínica.A presença de glicose na urina pode ser um sinal de diabetes. Testar uma amostra de urina com o reagente de Benedict é uma maneira simples de verificar a presença de glicose em pessoas suspeitas de terem esta doença. No entanto, não é um teste definitivo, pois outros açúcares redutores produzirão a mesma reação. Se a urina for positiva, outros testes terão que ser realizados para confirmar a condição. As mulheres grávidas podem ser testadas desta forma a intervalos regulares para detectar diabetes gestacional, que pode aparecer durante a gravidez em mulheres sem histórico prévio da doença</p><p>REAÇÃO DE BIURETO</p><p>1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.</p><p>Reativo de biureto ele é um composto derivado da ureia ele reage com algumas conformações que a gente tem na proteína que são grupos de carbonilas COHNH, dando uma coloração violeta.</p><p>No tubo 1: 1ml de água destilada, acrescentando o biureto e homogeneizar. Não teve reação.</p><p>No tubo 2: colocando o ovo albumina e o biureto, homogeneizar, percebemos a mudança de cor na reação para uma cor violeta indicando a presença de proteína, indicativo desses agrupamentos que interage com o biureto</p><p>Materiais utilizados: água destilada, ovo albumina, biureto, becker, pêra de borracha 2 tubos de ensaio 2. Responda as Perguntas:</p><p>a) Explique o princípio bioquímico da Reação de Biureto.</p><p>O Teste do Biureto é um teste geral para proteínas e peptídeos com mais de dois aminoácidos. A reação do Biureto é o resultado da formação de um complexo entre Cu2+ e as proteínas ou peptídeos com mais de dois aminoácidos.</p><p>b) Qual o tipo de ligação que ocorre entre o Biureto e as moléculas identificadas?As ligações peptídicas são ligações amida, e o par de elétrons dos átomos de nitrogênio das amidas encontram-se disponíveis, podendo servir de ligante para o</p><p>átomo de cobre II. O sulfato de cobre II em meio alcalino apresenta coloração azul clara, na presença de proteínas ou peptídeos forma produto violeta caracterizando a formação do complexo de coordenação entre o cobre e os átomos de nitrogênio das ligações peptídicas adjacentes, agindo comum ligante bi dentado. Os peptídeos dão reação negativa por apresentarem apenas uma ligação peptídica. Os aminoácidos também dão reação negativa por não apresentarem ligação peptídica. Os grupos amino livres não coordenam com o cobre, pois em pH 7,0 encontram-se protonados na forma de -NH3+, não tendo elétrons disponíveis para doar</p><p>c) Explique os resultados encontrados no experimento.</p><p>Foi utilizado 2 tubos para o experimento um com água destilada e o biureto, não teve reação. O outro tudo foi ovo albumina e o biureto que ocorreu a reação teve uma mudança na cor para o violeta indicando a presença de proteína no experimento.</p><p>REAÇÃO DO LUGOL (IDENTIFICAÇÃO DE POLISSACARÍDEOS)</p><p>1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quaismateriais utilizados.</p><p>Os carboidratos são compostos que geralmente encontramos na natureza, os polissacarídeos são compostos por macromoléculas.</p><p>Tubo1: utilizando a pipeta colocando 1ml de amido 1% em um tubo, acrescentando o lugol 2%, homogeneizar, observando a reação percebemos a mudança da coloração ficou esverdeado e azulado indicando a presença de amido.</p><p>Tubo 2: adicionando 1ml de água destilada e 5 gotas de lugol 2%, homogeneizar, observando a reação ficou na cor marrom, não tem a presença do amido</p><p>Materiais utilizados: becker, pipeta, pêra de borracha, lugol 2%, água destilada, amido 1%</p><p>2. Responda as Perguntas:</p><p>a) Explique o princípio bioquímico da utilização do lugol na identificação depolissacarídeos.</p><p>O lugol é uma solução de iodo que reage com as ligações amilopectina e amilose no carboidrato quando ele reage com o amido dando uma coloração azul, dependendo da quantidade de amido essa cor podendo ser mais intensa</p><p>b) Explique para quais situações essa técnica</p><p>pode ser utilizada.</p><p>Essa técnica pode ser utilizada em várias situações dentre elas a colposcopia, A solução de Lugol é aplicada na vagina e no colo do útero. O tecido vaginal normal fica marrom devido ao seu alto conteúdo de glicogênio, enquanto o tecido suspeito de câncer não se mancha e, portanto, parece pálido em comparação com o tecido circundante. A biópsia de tecido suspeito pode então ser realizada. Isso é chamado de teste de Schiller. A solução de Lugol também pode ser usada para visualizar melhor a junção mucogengival na boca. Semelhante ao método de coloração mencionado acima em relação a colposcopia, a mucosa alveolar tem um alto conteúdo de glicogênio que dá uma reação de iodo positiva contra a gengiva queratinizada</p><p>c) Explique os resultados encontrados no experimento.</p><p>Foi utilizado 2 tubos para experimento um com: lugol 2% e o amido 1%, obteve areação na coloração esverdeado ou azul, indicando a presença do amido. E no outro tubo foi com água destilada e 5 gotas de lugol obteve uma coloração marrom indicando ausência de amido na reação.</p><p>REAÇÃO DE SAPONIFICAÇÃO</p><p>1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quaismateriais utilizados.</p><p>Foi utilizado o óleo de milho, água destilada e hidróxido de potássio.</p><p>Tubo 1: Colocar a solução etonolica de 5ml, adicionando 2 ml de óleo, homogeneizar, observando a reação fica perceptível a presença de duas fases, a fase aquosa e a do óleo por ele ser mais denso fica precipitando no fundo do tubo, colocando este tubo no banho maria por 5 minutos, após a retirado do banho maria podemos observar que não tem mais a separação ficou de forma homogenia formando o sabão, visualizamos que ocorreu a hidrolise.</p><p>Tubo 2: adicionando água mais 2ml de sabão e homogeneizar, conseguimos visualizar a formação de sabão e espuma, ocorreu a hidrolise. adicionando a solução de hidrolise (sabão) no tubo e adicionando 5 gotas de cloreto de cálcio e homogeneizar, não teve a formação de espuma.</p><p>2. Responda as Perguntas:</p><p>a) Explique bioquimicamente o que são ácidos graxos e triglicerídeos.Triglicerídeos, também denominados triglicérides ou triésteres, são assim chamados, pois possuem em sua fórmula estrutural três grupos da função orgânica éster (R_COO_R).Ele é um material graxo, que no cotidiano corresponde a óleos ou gorduras indispensáveis a nossa alimentação, de origem vegetal (óleo de dendê, de caroço de algodão, de amendoim, de oliva, de milho, de soja, de girassol, gordura de coco e manteiga de cacau) ou animal(sebo bovino, fígado de bacalhau, manteiga feita do leite, banha suína e óleo extraído da gordura de capivaras)"</p><p>b) Explique a fundamentação teórica da técnica de saponificação.</p><p>A saponificação nada mais é do que uma reação que cria um sal orgânico e um álcool por meio de um éster de base inorgânica em uma solução aquosa. Em outras palavras, a mistura do éster, uma substância resultante da reação entre um álcool e um ácido, com uma base resulta em um sal orgânico, também chamado de sabão</p><p>c) Explique os resultados encontrados no experimento.</p><p>No primeiro tubo conseguimos perceber de fato a formação de sabão, mudou totalmente de cor. Temos a sensação tátil da formação do sabão. De fato, ocorreu a hidrólise. Já no segundo tubo temos a percepção visual de que é diferente da nossa amostra com a água. Não há formação da espuma tão vigorosa como vimos no outro tubo. Percebemos que tem uns cristais, pequenas precipitações. Isso acontece quando a água apresenta muita quantidade desses íons, ela interfere com a reação da produção de sabão, e não teve a formação de espuma.</p><p>SOLUBILIDADE DOS LIPÍDIOS</p><p>1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.</p><p>Tubo 1: colocando no tubo 3ml de água adicionando 1ml de óleo, tentativa de homogeneizar mais não se misturam, não teve a solubilidade.</p><p>Tubo 2: colocando no tubo 3 ml de ácido clorídrico adicionando 1ml de óleo, não teve homogeneização, não tem solubilidade.</p><p>Tubo 3: colocando no tubo 3ml de hidróxido de sódio adicionando 1ml de óleo, não teve solubilidade.</p><p>Tubo 4:colocando no tubo 3ml de etanol adicionando 1 ml de óleo, conseguimos visualizar um pouco de solubilidade.</p><p>Tubo 5: adicionando 3 ml de éter mais 1ml de óleo, homogeneizar, conseguimos visualizar a solubilidade, houve reação.</p><p>Materiais utilizados: pêra de borracha, becker, pepita, éter, etanol, óleo, HCL, hidróxido de sódio e água</p><p>2. Responda as Perguntas:</p><p>a) Explique a estrutura bioquímica dos lipídios correlacionado com suacaracterística de insolubilidade em soluções aquosas.</p><p>Os lipídios são moléculas com amplo grupo, os lipídios mais básicos são constituídos predominantemente por carbono, hidrogênio e oxigênio, embora existam outros com nitrogênio, fósforo ou magnésio em sua cadeia. Formam também longas cadeias carbônicas (por isso sua a polaridade) e, quando ligados a ácidos carboxílicos (COOH), formam os ácidos graxos.</p><p>b) Explique a fundamentação teórica da técnica de solubilidade dos lipídios.</p><p>A principal característica dos lipídios é sua insolubilidade em água como são compostos apolares, a água, sendo polar, não exerce influência na sua estrutura.</p><p>Por outro lado, são solúveis em solventes orgânicos como álcoois, éteres e cetonas.</p><p>c) Explique os resultados encontrados no experimento.</p><p>Com essa prática conseguimos visualizar o comportamento dos lipídeos relação a solubilidade. São alguns solventes que conseguimos a solubilização. Eles são hidrofóbicos. Quanto maior a concentração de água em determinado solvente a gente vai ter menor solubilidade, conseguimos visualizar um pouco de solubilidade com o etanol e o éter obteve a homogeneização.</p><p>image1.png</p><p>image2.jpg</p>