Exames Coprologicos

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@oi.cursovet 
Parasitológicos de Fezes 
Habilidades em Veterinária II 
Coleta exames parasitológicos de 
fezes: como evidenciar alguns 
patógenos que possam comprometer a 
homeostase fisiológica do paciente, no 
Sistema Digestório 
 
• Exame Macroscópico do Animal 
e das Fezes: 
- análise feita na própria clínica, fazer 
identificação, anamnese e resenha do 
animal para checar alteração fisiológica 
- tentar observar a frequência de 
defecação e ou perguntar ao tutor 
- consistência, odor, cor, presença de 
sangue (hemorragia, TGI), muco 
(ulceração), proglotes, grávidicas 
(cestodas - helmintos), parasitos 
adultos (cestodos, nematódeos, 
helmintos) ou outras condições 
anormais 
- expulsão de parasitos nas fezes 
- tentar relacionar alterações nas 
fezes com possíveis patologias 
(tenesmo: vontade mas sem execução) 
- proceder a coleta de fezes 
diretamente do reto do animal ou 
quando impossível, do solo respeitando 
o diagnóstico 
- refrigerar amostra caso análise seja 
realizada em outro local (transporte da 
amostra) 
- copos coletores com tampa 
rosqueada (coletor universal estéril) ou 
saco bem vedado para impedir 
contaminante ambiental, bolsa coletora 
em pequenos animais e contato direto 
em grandes 
- existem manuais técnicos mostrando 
que esses procedimentos devem ser 
padronizados 
# não necessita pegar todas as fezes, 
em grandes o tamanho ideal para 
análise seria uma mão cheia 
- quando já é sabido que existe no 
animal sintomas e patógenos uma 
coleta de material sintomático 
- a quantidade de 20 kg de fezes por 
animal no caso de rebanhos colher 10 
a 15 amostras de cada faixa etária 
utilizando um frasco por animal 
- em um rebanho separar grupos 
pequenos de 10 a 15 para fazer o 
procedimento de coleta 
- temperatura da amostra para 
transporte refrigerada de 2 a 8 graus 
 
• Exame Microscópico de Fezes: 
- permite a visualização de oocistos, 
cistos e trofozoítos de protozoários, 
ovos e larvas 
- como rotina: 
# exame direto para observar as 
• Técnicas Coprológicas • 
estruturas morfológicas e motilidade 
das formas imaturas dos parasitas 
# técnicas de concentração de 
parasitas, avaliar a carga e quantidade 
do parasita 
- flutuação: aplicadas para visualização 
de estruturas como ovos de helmintos 
e oocistos de protozoários, 
considerados "leves" necessária a 
adição de solução saturada (açúcar ou 
sal) 
# Willis- Mollay, Faust, MC Master 
(OPG) 
- sedimentação: aplicadas para 
visualização de estruturas como ovos 
de helmintos e oocistos e cistos de 
protozoários considerados "pesados", 
onde a solução ultilizada é apenas água 
 
# Hoffman e Lutz 
- motilidade: empregadas para análise 
de movimentação e aspectos 
morfológicos de larvas de helmintos 
 
# Roberts e O'Sullivan 
(Coprocultura) e Baermann-
Moraes 
- Exame Quantitativo: contagem de 
ovos para se avaliar a carga 
parasitária. Mais utilizado na 
Veterinária é a técnica opg (ovos por 
gamas de fezes) e Coprocultura 
(grandes animais) 
- Exame Qualitativo: demonstração das 
formas parasitárias. Mais utilizado é a 
técnica de Willis-Mollay (pequenos 
animais), opg e Coprocultura 
- Opg e Coprocultura: quali e 
quantitativo 
# OPG: 
 
- chamada também de técnica de 
Gordon e whitlock ou McMaster 
modificada 
- método se baseia no princípio de 
flutuação dos ovos de helmintos, 
oocistos e cistos de protozoários 
- é uma técnica qualitativa (ovos de 
cestódeos e trematódeos e formas de 
protozoários) e qualitativa (no caso dos 
ovos de nematoides) 
- protocolo laboral a ser usado: peso 
de duas gramas de fezes para um 
volume de 28 ml de solução saturada 
ou 4 gramas de fezes para um volume 
de 56 ml de solução saturada 
- Matérias e equipamentos: 
# fezes recém colhidas ou 
refrigeradas (tempo máximo 
refrigeração uma semana) 
# seringa adaptada balança analítica 
# béquer e bastão de vidro ou 
almofariz e pistilo 
# proveta com capacidade de 50 ou 
100ml 
# solução saturada com sal ou açúcar 
# gazes e peneira (filtração) 
# pipeta Pasteur descartável (3ml) 
# béquer ou copo coletor (plástico ou 
vidro) para deposição de mistura pós 
filtração 
# câmara de McMaster 
# microscópio (objetivas 4x, 10x, 40x) 
# EPI's 
- metodologia: 
# macerar bem as fezes dentro do 
saco 
# colher fezes com a seringa dos 2,5 
ml 
# colocar 28ml de sol saturada no 
béquer com as fezes ousaram 
almofariz e pistilo 
# misturar bem homogêneo usando 
para obter uma solução 
# filtrar ou coar esta solução na 
peneira forrada com gaze no copo 
coletor ou Becker e aguardar de 2 a 3 
minutos 
# pipetar 3 ml da área mais próxima 
da superfície sem provocar e 
preencher os dois Campos da Câmara 
de McMaster e evitar a formação de 
bolhas de ar na área a ser analisada 
# limpar e levar ao microscópio na 
objetiva de 4X / retirar as luvas!! 
# contar os ovos em cada sub Câmara 
somando todos e o valor obtido 
multiplica por 50 
- Fórmula: 
# contagem do campo mais contagem 
do campo 2, / 2 (x 100 ou seja duas 
gramas de fezes) 
- Índice de Contagem de Ovos: 
# até 500 ovos baixo 
# de 501 a 1500 ovos moderado 
# acima de 1500 ovos é alto 
# lembrando que a categoria do animal, 
filhote gestante ou etc, e a gravidade 
dos sinais clínicos é relevante 
• Técnica de Willis-Mollay: 
 
- Material: 
# fezes recém colhidas ou 
refrigeradas 
# o resto é igual 
# tubo de ensaio de capacidade de 5ml 
para deposição após filtração 
# lâmina e lamínula 
- Metodologia: 
# tudo igual 
# encher um tubo de ensaio e com 
uma pipeta Pasteur até formar um 
menisco 
# colocar a lamínula sobre o menisco e 
aguardar no mínimo 10 minutos para 
evitar um espaço com ar entre 
amostra e a lamínula 
# após esse tempo colocar a lamínula 
sobre uma lâmina 
# leva ao microscópio na objetiva de 
4x podendo acrescentar lugol 
 
• Coprocultura 
 
 
 
 
 
- também chamada de Robert e 
O'Sullivan 
- mimetizam o ciclo do parasita no 
ambiente 
- técnica qualitativa e quantitativa 
usada sempre complementar ao OPG 
- medição da cauda da região posterior 
e aspectos morfológicos da parte 
anterior das larvas de terceiro estádio 
de forma infectante sendo capaz de 
determinar quais gêneros de 
nematoides e o mitos e estimar a 
frequência e percentagem 
- fezes recém colhidas ou 
refrigeradas 
- béquer bastão de vidro almofariz e 
pistilo 
- acrescentar pequenas quantidades 
de água 
- copo de vidro para de posição da 
mistura identificada com os dados da 
amostra 
- para cobrir o copo com as fezes 
usar: 
# placa de Petri com diâmetro 
suficiente para comportar o diâmetro 
do copo e ter uma sobra de espaço, e 
barbante 
# plástico filme com pequenos furos 
- colocar a água que será Para onde as 
larvas irão migrar 
- pipeta Pasteur descartável de 3 ml 
- lâmina com área delimitada 
- microscópio e EPI's 
- metodologia: 
# colocar as fezes no copo 20 a 30 
misturadas e não compactar 
# tampar o copo deixar espaço entre 
a placa e o copo com barbante ou 
fazer pequenos furos se usar o 
plástico e esperar por 7 dias 
# adicionar a água no copo até cobrir 
a amostra em seguida virar o copo 
com a placa de Petri cuidado!!!! 
# colocar água no espaço entre o 
copo e a placa de Petri 
# esperar 15 minutos para as larvas 
migrarem 
# retirar a pipeta Pasteur e colocar 
no tubo de ensaio 
# esperar 30 minutos ou centrifugar 
# coletar no fundo do tubo com pipeta 
Pasteur 
# colocar em lâmina lamínula e lugol e 
analisar com microscópio 
 
• Em Carnívoros: 
- Principais Cistos, Trofozóitos e 
Oocistos (Willis-Mollay) de protozoários: 
# Giardia (cisto e trofozoítos) 
# Isospora (oocistos) 
- Ovos (Willis-Mollay) e larvas 
(Coprocultura) de nematodas 
(helmintos): 
# Ancylostoma sp. (Ovo e larva) 
# Toxocara sp. (Ovo e larva) 
# Trichuris sp. (Ovo e larva) 
- Principais Cestodas (helmintos) ovos por 
Willis-Mollay e necropsia/fezes (adultos): 
# Dipylidium caninum (ovo e parasito adulto, 
se aloja no Intestino delgado) 
# Echinococus sp. (ovo e parasito 
adulto, se aloja no Intestino delgado) 
# Taenia sp. (ovo e parasito adulto, se 
aloja no Intestinodelgado) 
 
 
• Em Equinos, Ruminantes, 
Mamíferos e Suínos: 
- Principais nematódeos (helmintos) por 
OPG: 
# estruturas de ovo e larvas 
(específicos) 
- Principais nematodas (helmintos) por 
OPG encontrados em Equinos: 
# Parascaris sp. (Ovo e larva) 
# Oxyuris equi (ovo e larva) 
- Principal ovo de trematoda 
(helmintos) por Hoffmann- Moraes 
encontradas em mamíferos: 
# Fasciola sp. (Ovo e adulto, 
encontrado em ductos hepáticos) 
- Principais nematodas (helmintos) por 
OPG encontrados em suínos: 
# Ascaris suum (ovo) 
# Trichuris suis (ovo)