Logo Passei Direto
Buscar
Material
páginas com resultados encontrados.
páginas com resultados encontrados.

Prévia do material em texto

Rua Ary Coelho, 829, Vila Birigui – CEP: 78.705-050 - Rondonópolis MT 
Fone: (66) 3411-3900 
 
FACULDADE ANHANGUERA DE RONDONÓPOLIS 
Portaria de Recredenciamento nº 706 de 28/08/2020 
Portaria unificação de mantidas nº 114 de 15 de abril de 2020 
 
‘ 
Público 
Relatório de Aula Prática – Parasitologia Veterinária 
Disciplina: Helmintologia - Parasitologia Veterinária Aplicada 
Professor(a): Paula Maria F. de Vasconcelos 
Aluno(a):__________________________________________ 
Curso: Medicina Veterinária 
Data: 27/08/2026 
Tema: Introdução à microscopia, exame direto de fezes e método de Willis-Mollay 
1. INTRODUÇÃO 
A Parasitologia Veterinária estuda os organismos que vivem em associação com os animais, incluindo 
aspectos relacionados à sua morfologia, ciclo biológico, transmissão, diagnóstico, prevenção e 
controle. Entre os principais grupos de interesse veterinário estão os helmintos, representados 
principalmente por nematódeos, cestódeos e trematódeos, de modo que o exame parasitológico de 
fezes é uma importante ferramenta para a pesquisa de estrutura desses parasitárias eliminados. Nesta 
aula prática, realizamos o exame direto de amostras frescas de fezes e o método de Willis-Mollay, 
além de conhecermos diferentes tipos de microscópios e as principais funções do microscópio óptico. 
2. OBJETIVOS 
2.1 Objetivo geral 
Realizar técnicas básicas de exame parasitológico de fezes para pesquisa de helmintos e aprender a 
utilizar o microscópio óptico. 
2.2 Objetivos específicos 
• Conhecer e executar o método de Willis-Mollay; 
• Observar e reconhecer possíveis estruturas parasitárias presentes nas amostras; 
 
 
 
Rua Ary Coelho, 829, Vila Birigui – CEP: 78.705-050 - Rondonópolis MT 
Fone: (66) 3411-3900 
 
FACULDADE ANHANGUERA DE RONDONÓPOLIS 
Portaria de Recredenciamento nº 706 de 28/08/2020 
Portaria unificação de mantidas nº 114 de 15 de abril de 2020 
 
‘ 
Público 
• Conhecer diferentes tipos de microscópios utilizados em laboratório; 
• Identificar as principais partes do microscópio óptico; 
• Compreender a função de cada componente do microscópio; 
• Aprender os procedimentos básicos de focalização e utilização das objetivas; 
• Desenvolver cuidados de biossegurança durante a manipulação de amostras biológicas. 
3. MATERIAIS 
Para a realização da aula prática, utilizamos os seguintes materiais: 
• Microscópio óptico; 
• Lâminas de vidro; 
• Lamínulas; 
• Bastões ou palitos descartáveis; 
• Solução hipersaturada de cloreto de sódio (NaCl); 
• Copo de Borrel com a amostra de fezes; 
• Bastão de vidro; 
• Tubo de ensaio (Recipiente apropriado para a realização da técnica de flutuação) 
• Luvas descartáveis; 
• Jaleco; 
• Material para higienização e desinfecção da bancada. 
Os materiais e procedimentos são utilizados de acordo com as orientações fornecidas pelo professor 
durante a aula prática. 
4. PROCEDIMENTOS 
4.1 Microscopia 
 
 
 
Rua Ary Coelho, 829, Vila Birigui – CEP: 78.705-050 - Rondonópolis MT 
Fone: (66) 3411-3900 
 
FACULDADE ANHANGUERA DE RONDONÓPOLIS 
Portaria de Recredenciamento nº 706 de 28/08/2020 
Portaria unificação de mantidas nº 114 de 15 de abril de 2020 
 
‘ 
Público 
Inicialmente, conhecemos diferentes tipos de microscópios, com destaque para o microscópio óptico, 
estereoscópico e eletrônico. O microscópio óptico é utilizado para ampliar estruturas microscópicas 
por meio de luz e lentes. 
Durante a atividade, identificamos as principais partes do microscópio óptico: ocular, objetivas, 
revólver, platina, condensador, diafragma, fonte de luz, parafusos macrométrico e micrométrico, braço 
e base. Aprendemos que a observação deve ser iniciada, preferencialmente, com a objetiva de menor 
aumento. Após localizar o material, realizamos a focalização e utilizamos objetivas de maior aumento 
quando necessário. 
4.2 Exame direto de fezes 
Para o exame direto, utilizamos uma pequena quantidade de amostra fresca de fezes para preparar a 
lâmina, conforme a orientação do professor. A preparação é colocada no microscópio e inicialmente 
observada em menor aumento. Durante a análise, procuramos identificar estruturas que possam ser 
compatíveis com ovos, larvas ou outras formas parasitárias. A técnica apresenta como vantagens a 
simplicidade e a rapidez, porém a quantidade de material analisada é pequena, podendo limitar a 
detecção de parasitos. 
4.3 Método de Willis-Mollay 
O método de Willis-Mollay é uma técnica coproparasitológica baseada no princípio da flutuação. 
Utilizamos uma solução com densidade adequada para favorecer a concentração de determinados ovos 
de helmintos na superfície. 
Após a preparação da amostra conforme o protocolo apresentado pelo professor, realizamos a coleta 
do material da superfície e sua colocação em uma lâmina. Em seguida, observamos a preparação ao 
microscópio óptico, procurando identificar possíveis estruturas parasitárias. 
5. RESULTADOS 
 
 
 
Rua Ary Coelho, 829, Vila Birigui – CEP: 78.705-050 - Rondonópolis MT 
Fone: (66) 3411-3900 
 
FACULDADE ANHANGUERA DE RONDONÓPOLIS 
Portaria de Recredenciamento nº 706 de 28/08/2020 
Portaria unificação de mantidas nº 114 de 15 de abril de 2020 
 
‘ 
Público 
Os resultados devem ser preenchidos de acordo com as estruturas realmente observadas durante a aula. 
Caso sejam identificados ovos de helmintos, devem ser descritas suas principais características 
morfológicas. 
5.1 Resultados do exame direto 
Estruturas observadas: ___________________________________ 
Aumento utilizado: _______________________________________ 
Resultado: 
 
 
 
 
5.2 Resultados do método de Willis-Mollay 
Estruturas observadas: ___________________________________ 
Aumento utilizado: _______________________________________ 
Resultado:

Mais conteúdos dessa disciplina