6. Coloracao de Ziehl

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Coloração diferencial
Coloração de Ziehl – Neelsen
BAAR
Coloração de Ziehl Neelsen
• Técnica de coloração realizada a quente,
com a finalidade de evidenciar a presença
de bacilos álcool - ácido resistentes
• Bactérias com material céreo (ácido
micólico) em suas paredes celulares
– Dificulta a penetração de diversos corantes
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Micro-organismos
• Mycobacterium tuberculosis
• Mycobacterium leprae
• Mycobacterium bovis
• Nocardia spp.
Esfregaço
• Pegar a porção mais purulenta da amostra
e espalhar em ¾ da lâmina.
• Deixar secar 30 min. dentro da cabine de
segurança e fixar no calor antes de corar.
3
Procedimento
• http://www.youtube.com/watch?v=qR6Udn
bX9Oc
4
Procedimento
• Cobrir o esfregaço com a fucsina de Ziehl
• Aquecer a parte inferior da lâmina com a chama do bico
de Bunsen até observar a emissão de vapores e deixar 5
minutos (o aquecimento deve ser intermitente e o corante
sobre a lâmina não deve ferver nem secar)
• Lavar com água fria
• Cobrir o esfregaço com álcool-ácido e deixar por 1
minuto
• Lavar com água corrente
• Cobrir o esfregaço com azul de metileno e deixar por 30
segundos
• Lavar com água corrente e deixar secar.
Exame direto
• Pesquisa em amostra de escarro
− Coloração de Ziehl – Neelsen
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• Escala semi-quantitativa
Leitura das lâminas
Exame direto
• Como reportar o resultado
– (-) Não foram encontrados bacilos em 100 campos
observados.
– (relatar o número) Presença de 1 a 9 BAAR em 100
campos observados.
– (+) Presença de menos de 1 BAAR por campo em
100 campos observados.
– (++) Presença de 1 a 10 BAAR por campo em 50
campos observados.
– (+++) Presença de mais de 10 BAAR por campo em
20 campos observados.