BRONQUITE INFECCIOSA DAS GALINHAS UNIP 2017

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BRONQUITE 
INFECCIOSA DAS 
GALINHAS
JOELMA MOURA ALVAREZ
TRANSMISSÃO
18-96 h
2-5 dias
2-5 dias
INTRODUÇÃO
• Doença aguda e altamente contagiosa;
• Afeta trato respiratório e genito-urinário das aves 
• Baixa mortalidade;
Importância econômica: 
• redução eficiência alimentar, ganho de peso e 
aproveitamento de ovos (comprometimento de qualidade 
de casca e albúmen);
• **Normalmente ocorre associação de infecções 
bacterianas secundárias → mais perdas → condenações, 
mortalidade;
• Pode aparecer a doença em plantéis vacinados.
Porcine Epidemic Diarrhea 
Virus
PEDV
Porcine Respiratory 
Coronavirus
PRCoV
Human Coronavirus 229-EHCoV-229 E
Canine CoronavirusCCoV
Feline CoronavirusFCoV
Feline Infectious 
Peritonitis
FIPV
Porcine Transmissible 
Gastroenteritis Virus
TGEV
GRUPO I GRUPO II
Turkey CoronavirusTCoV
Infectious Bronchitis
Virus
IBV
GRUPO III
Sialodacryoadenitis virusSDAV
Rat coronavirusRtCoV
Murine Hepatitis VirusMHV
Porcine Hemmaglutinating 
Encephalomyelitis Virus
HEV
Human Coronavirus OC-43HCoV-
OC43
Bovine CoronavirusBCoV
GRUPO IV
SARS
• Família Coronaviridae
ETIOLOGIA
• Pleomórficos, envelopados, fita simples, 60-220nm de 
diâmetro
S→ indução de Ac, adsorção e
capacidade hemaglutinante
SOROTIPOS
• Mutação e recombinação →Proteína S
• Pressão de seleção vacinal (uso de vacinas vivas →
recombinação do virus → novos sorotipos 
(recombinantes)
• Massachusetts, Connecticut (Florida, Clark 333 e 
Arkansas 99), Georgia (SE17), Delaware, Iowa 97, Iowa 
609, New Hampshire EF, Australia T, Holte, 
4/91 e QX → importância mundial 
Arkansas, DE078
SOROTIPOS
• Diversos sorotipos circulantes no Brasil → vacina 
autorizada pelo MAPA → contra o sorotipo 
Massachusetts;
• Villarreal et al, 2006, detectaram um VBIG em galos 
apresentando problemas de fertilidade e, após a análise 
molecular, foi evidente que o vírus não pertencia ao 
sorotipo Massachusetts, comumente usado para 
vacinação no Brasil, e que pelo contrário, este vírus ficou 
próximo aos sorotipos D274 e Arkansas;
• Chacón et al. 2008: Ausência de imunidade cruzada dos 
diferentes sorotipos circulantes com a vacinação utilizada 
no país.
SOROTIPOS 
Ciência Rural, Santa Maria, v.39, n.8, p. 2559-2566
PATOGENIA
• Replicação: Trato respiratório (traquéia), intestinal, rins, oviduto → destruição 
ciliar→ acumulo do muco
Porta de entrada: trato respiratório
Eliminação: aerossóis e fezes 
(direto ou indireto)
SINAIS CLÍNICOS –Aves jovens (f.corte)
• Infecção inicial trato respiratório
• Sinais respiratórios: Descarga nasal e lacrimejamento, 
espirros, cabeça inchada, sinusite, conjuntivite
• Muco traqueal → ronqueira
• Baixa mortalidade
• Infecções secundárias→ uso de ATB e alta mortalidade
LESÕES MACROSCÓPICAS
Aerossaculite (infecções secundárias –
Ex. E.coli)
Muco traqueal
Infecções secundárias: pericardite e 
hepatite
SINAIS CLÍNICOS – Poedeiras
• Sinais respiratórios: Discretos
• Sinais reprodutivos: 
• Infecção inicial (primeiros 10 dias de vida): Falsas 
poedeiras: → não apresentam sinais clínicos → no 
momento de postura elas não botam ovo
• Infecção posterior: Redução na postura (20%) mas 
durante muito tempo → período de incubação longo 
(meses)
• Aves em produção: Vírus no ovário → regressão dos 
folículos e oviduto → áreas císticas (RI), não passa o 
folículo
LESÕES MACROSCÓPICAS
• Preenchimento do oviduto com conteúdo líquido (aquoso) 
→ áreas císticas (variante QX)
Queda na produção de ovos:
• Ovos: casca fina e 
porosa
Albumina: Aquosa e de 
baixa viscosidade
NEFROTÓXICAS
• Nefrotóxicas: alta mortalidade 
• Rins aumentados de volume (duas a três vezes)
• Rins de consistência friável ao corte
• Rins repletos de uratos
• Túbulos e ureteres distendidos e repletos de uratos 
(entupimento)
Síndrome Nefrite-Nefrose
ENTEROTRÓPICA
• Sorotipo responsável por diarréia intensa em frangos e 
galinhas
• Detectado em aves acometidas pela síndrome da má-
absorção e nanismo.
MATERIAL A SER COLETADO PARA DIAGNOSTICO
• Soro
• Traqueia
• Pulmão
• Rins
• Conteúdo intestinal
• Trato reprodutivo
DIAGNOSTICO
DIAGNOSTICO CLINICO: Sinais clínicos e lesões macroscópicas 
(necropsia)
DIAGNOSTICO LABORATORIAL:
• RT-PCR e Sequenciamento
• Isolamento do agente: Inoculação em ovo embrionado e cultivo em 
células
• Cultura de anéis traqueais
• Soroneutralização
• AGP
• Inibição da hemaglutinação
• ELISA 
INOCULAÇÃO EM OVOS EMBRIONADOS
• Inoculação em ovos de galinha(cavidade alantóide) 
• 9-11 dias
INOCULAÇÃO EM OVOS EMBRIONADOS
• 5-6 dias de 
incubação →
algumas 
passagens para 
observar sinais
• Necropsia: 
Enrolamento, 
nanismo, petéquias
e hemorragias no 
embrião
RT-PCR e SEQUENCIAMENTO
• Detecção de porção específica única dos coronavírus →
sequenciamento demonstra variabilidade genética 
(genotipagem);
• A sorotipagem é que informa se um vírus variante pode 
causar doença em aves vacinadas (avaliação de 
proteção cruzada).
DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL
• BIG: disseminação muito rápida de sinais respiratórios;
• Newcastle → quadros neurológicos (forma de 
disseminação rápida);
• Laringotraqueíte: disseminação mais lenta no plantel;
• Coriza infecciosa (A. paragallinarum): Edema facial e 
descarga nasal serosa;
• EDS (Adenovirus): Queda da postura e alterações na 
casca dos ovos, mas sem alteração na albumina;
• Distúrbios ambientais e nutricionais. 
VACINAS
• Vacinas vivas atenuadas (IM, SC, spray):
Frango de corte;
Poedeiras: priming (primeira vacinação no início da vida);
• Vacinas inativadas (só efetivas com o priming) - ocular ou 
água de bebida
• (BR→ Massachusetts, EUA → Arkansas)
• Inativadas polivalentes → NC e Gumboro
VACINAÇÃO (esquema)
CONTROLE
Biosseguridade + Vacinação
www.bronquite-infecciosa.com