AULA N.2 PARASITOLOGIA CLÍNICA 2018

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FACEMG
FARMÁCIA
3º e 4º PERÍODO
2018
AULA 2
PARASITOLOGIA
 CLÍNICA
Prof. Edina da Conceição Rodrigues Pires
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Coleta de Exame Parasitológico de Fezes
  
 
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Antes da coleta 
➢ Antes de coletar as fezes, se necessário, urinar no vaso sanitário para evitar a contaminação do material. 
➢ Defecar em vasilhame limpo e seco. 
➢ Usar laxativos somente quando houver orientação médica. 
➢ Evitar o uso de antiácidos e de contraste oral (utilizado em exames radiológicos) no mínimo 72 horas antes da coleta das fezes ou conforme orientação médica. 
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Após a coleta 
➢Defecar em vasilhame limpo e seco. 
➢ Retirar frações de fezes em diferentes partes do bolo fecal (início, meio e fim), e colocar em frasco contendo o conservante líquido (MIF - Glicerina, Iodo e Formol). 
➢ Dissolver e homogeneizar (misturar bem) as fezes coletadas no líquido conservante. 
➢ O número de amostras de fezes a serem coletadas e a periodicidade depende da orientação médica. 
Se não houver orientação médica, coletar pelo menos 03 amostras de fezes recentemente emitidas em dias diferentes (consecutivos ou alternados). 
➢ Colocar todas as amostras de fezes dentro do mesmo frasco contendo MIF. 
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Após a coleta 
Sempre que houver muco (catarro), pus ou sangue, colher esta porção para que seja analisada, informando a presença dessas substâncias ao entregar o material. 
Caso seja visualizado algum parasita, coletá-lo informando o achado ao atendente no momento da entrega do material para o adequado processamento da amostra. 
Identificar o frasco com o nome completo. 
Não é necessário colocar na geladeira, pois o liquido é conservante. 
É aconselhável encaminhar o material ao Laboratório logo após o fim da coleta. 
No MIF, as amostras são conservadas por até 30 dias à temperatura ambiente.
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Métodos de Exame Parasitológico de Fezes (EPF)
  
 
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 Exame macroscópico - verificar a consistência, odor, presença de elementos anormais ( muco ou sangue) e de vermes adultos ou parte deles. 
Fezes moles ou líquidas sugerem a possível presença de trofozoítos de protozoários intestinais. Cistos de protozoários são encontrados com mais frequência em fezes formadas. Ovos e larvas de helmintos podem ser encontrados tanto em fezes líquidas quanto em fezes formadas. 
 Exame microscópico - pesquisar e visualizar as formas parasitárias 
Permite a visualização de trofozoítos, cistos e oocistos de protozoários e de ovos e larvas de helmintos
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Fezes líquidas devem ser examinadas dentro de 30 minutos; 
semi-sólidas dentro de 1 hora e
formadas dentro de 24 horas. 
Se o exame for realizado depois de 24 horas a amostra deve ser mantida em conservadores tais como: Formol a 10%; Álcool polivinílico (PVA); MIF e SAF 
A proporção utilizada é de três partes de qualquer um dos conservadores para uma parte de fezes. Essa mistura deve ser bem homogeneizada. 
Exame Parasitológico de Fezes 
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O exame pode ser quantitativo ou qualitativo.
Os métodos quantitativos são aqueles nos quais se faz contagem de ovos para avaliação da carga parasitária. • 
O mais empregado atualmente é o de Kato-Katz. • 
Os métodos qualitativos são os mais utilizados para a demonstração da presença das formas parasitárias. 
Frequentemente o número das formas parasitárias é pequeno, assim é necessário recorrer a processos de enriquecimento dessas formas para concentrá-las.
Exame Parasitológico de Fezes 
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Como não existe um método capaz de diagnosticar, ao mesmo tempo, todas as formas parasitárias 
o que se faz de rotina 
um método geral como de Hoffmann, Pons e Janer (de fácil execução e pouco dispendioso), 
Um método específico para cistos de protozoários 
Um método para a pesquisa de larvas de helmintos.
Exame Parasitológico de Fezes
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PRINCIPAIS INDICAÇÕES CLÍNICAS PARA EPF
Dor abdominal (epigástrica, periumbilical, hipogástrica)- 
Diarréia- 
Náuseas e vômitos- 
Prurido anal- 
Urticária- 
“Ranger de dentes”, geofilia- 
Perda ponderal- 
Esteatorréia- 
Hepatoesplenomegalia-Dermatite- 
Eosinofilia- 
Anemia (microcítica- hipocrômica)- 
Controle de cura após de parasitose 
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DETRITOS
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Ovo de Ascaris
Ovo de Schistosoma
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MÉTODO DIRETO
1- Colocar uma gota de salina no centro da metade esquerda da lâmina e uma gota de lugol na metade direita da lâmina;
2- Com o auxílio de um palito, pegar pequena porção da amostra e misturar com a gota de solução salina; 
3- Da mesma forma, misturar uma porção de fezes com a solução de lugol;
4- Colocar uma lamínula sobre cada uma das gotas, cuidado para não formar bolhas de ar;
 5- Percorrer todos os campos da lâmina. 
EXAMES PARASITOLÓGICOS DE FEZES
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MÉTODO DIRETO
Este método é indicado principalmente para a pesquisa de trofozoítos de protozoários em fezes diarreicas recém emitidas; para a identificação de cistos de protozoários e larvas de helmintos 
EXAMES PARASITOLÓGICOS DE FEZES
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SEDIMENTAÇÃO ESPONTÂNEA - Método de Hoffman, Pons e Janer ( Método de Lutz) - ovos, larvas e cistos, alguns oocistos.
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MÉTODO DE HOFFMANN
 ( Sedimentação espontânea)
MATERIAL NECESSÁRIO
Cálice de decantação
Peneira
Gaze dobrada em 4
Água corrente ou destilada
Espátula de madeira (tipo abaixador de língua)
Lâmina e lamínula
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Tomar cerca de 4 g de fezes recém emitidas;
Dissolvê-las no próprio recipiente de coleta (frasco padrão para coleta de amostra) utilizando um pouco de água;
Transferir o material dissolvido para um cálice de decantação fazendo filtrar em peneira contendo gaze em 4. 
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Completar até ¾ do volume de água;
Deixar repousar em superfície firme e livre de vibrações por no mínimo 2 h;
Retirar o sedimento com pipeta;
Transferir para lâmina de vidro adicionando 2 gotas de solução de Lugol e cobrindo com lamínula. 
Observar ao microscópio em objetiva de 10x.
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SEDIMENTAÇÃO POR CENTRIFUGAÇÃO - Métodos de Blagg (MIF), Ritchie, Coprotest - ovos, larvas, cistos e oocistos. 
     
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1. Dissolver cerca de 5g de fezes em 10ml de água e filtrar em gaze dobrada em quatro. 
2. Depositar o material em tubo cônico de centrífuga e centrifugar a 1500 rpm por 2 minutos. 
3. Desprezar o sobrenadante e ressuspender novamente em 10 ml de água. 
4. Repetir os passos 2 e 3 até que o sobrenadante apresente-se claro.
5. Adicionar cerca de 10 ml de formol a 10%, homogenizar, descansar por 10 a 20 minutos. 
6. Adicionar cerca de 2 ml de éter, agitar vigorosamente e centrifugar a 1500 rpm por 2 minutos. 
7. Desprezar o sobrenadante e examinar o depósito ao microscópio adicionando uma gota da solução de lugol.
Método de Ritchie
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Método de Ritchie
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1- Diluir 10g de fezes em 20 ml de água 
2- Homogeneizar bem. 
3- Filtrar em gaze dobrada em quatro, num copo plástico, e transferir para um tubo 
4- Centrifugar por um minuto a 2.500 rpm. 
5- Desprezar o líquido sobrenadante e ressuspender o sedimento em água.
6- Repetir as operações 4 e 5 até que o sobrenadante fique claro. 
7- Desprezar o sobrenadante claro e ressuspender o sedimento com uma solução de sulfato de zinco a 33%, densidade de 1,18 g/ml. 
8- Centrifugar novamente por um minuto a 2.500 rpm. 
9- Os cistos e os ovos leves presentes estarão na película superficial; a mesma é recolhida com alça de platina, colocada numa lâmina junto com uma gota de Lugol e coberta com lamínula. 
 Método Centrífugo-flutuação
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CENTRÍFUGO-FLUTUAÇÃO - Método de Faust - cistos, oocistos e ovos leves.
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MIGRAÇÃO ATIVA DE LARVAS - hidro e termotropismos positivos - Métodos de Baermann-Moraes (A e B) e de Rugai (C) - larvas. 
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CONCENTRAÇÃO DE OVOS ATRAVÉS DE FILTRAÇÃO DAS FEZES EM TELA METÁLICA OU DE NÁILON - Método de Kato-Katz - ovos de alguns helmintos
O número de ovos encontrados, na preparação fecal, multiplicado por 24, corresponderáao nº de ovos por grama de fezes.
Orifício=42mg
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Ovo de Ancylostomidae
Ovo de Ancylostomidae (larvado)
Ovo de Trichuris trichiura
Ovos de Ascaris lumbricoides
Ovo de Enterobius vermicularis
Ovo de Taenia sp.
Ovo de Hymenolepis sp.
Larva rabditóide L1 ou L2
Larva filarióide L3
Giardia lamblia e Entamoeba histolytica
DIAGNÓSTICO PARASITOLÓGICO DE FEZES
PRANCHA: OVOS, LARVAS E CISTOS 
Ovo de Schistosoma mansoni
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