Resumo Exames

Prévia do material em texto

PARASITOLOGIA – CAFAR
MÉTODOS QUALITATIVOS:
· SEDIMENTAÇÃO ESPONTÂNEA (MÉTODO DE HOFFMAN, PONS E JANER ou LUTZ) – Em água.
· SEDIMENTAÇÃO POR CENTRIFUGAÇÃO (MÉTODO DE MIFC ou DE BLAGG) – Em éter-sulfúrico
Agitar vigorosamente, para desengordurar o material
Centrifugação 1500 rpm/min 
Para análise de Cryptospopridium o tempo de dentrifugação deve ser aumentado para 10 min.
*MÉTODO DE RITCHIE ou “Formol-éter” tem o mesmo princípio, sendo a técnica basicamente a mesma. A principl diferença é que neste as fezes são colhidas em formol 10%
· CENTRIFUGO-FLUTUAÇÃO (MÉTODO DE FAUST) – Em sulfato de zinco 33%
Tubo de Wasserman (tubo de hemólise)
Centrifugação 2500 rpm/min.
Examinado imediatamente, pois o sulfato de zinco pode deformar as formas parasitárias
Ovos leves
· FLUTUAÇÃO ESPONTÂNEA (MÉTODO DE WILLIS)
Diluir as fezes em solução saturada de açúcar ou sal
Indicado principalmente para Ancilostomídeos (ovos leves)
· CONCENTRAÇÃO DE LARVAS DE HELMINTOS POR MIGRAÇÃO ATIVA, DEVIDO A HIDROTROPISMO E TERMOTROPISMO POSITIVOS (MÉTODO DE BAERMANM-MORAIS E MÉTODO DE RUGAI)
Indicados para pesquisa de Strongyloides stercoralis
Água aquecida a 45ºC – Centrifugar 1000 rpm/min
A refrigeração diminui a viabilidade das larvas
MÉTODOS QUANTITATIVOS
· MÉTODO STOLL-HAUSHEER – Em solução de NaOH 0,1N
Pérolas de vidro para obter suspensão homogênea
· MÉTODO DE KATO-KATZ – Papel celofane e Verde malaquita 3%
Indicado para S.mansoni, A.lumbricoides, T.trichura e ancylostomideo
Não é possível a execução com fezes diarréicas
OUTROS MÉTODOS
· FLUTUAÇÃO NO AÇUCAR (MÉTODO DE SHEATHER)
· FITA DUREX (MÉTODO DE GRAHAM )
Essa técnica deve ser feita ao amanhecer, antes do paciente fazer a higiene e repetida, em dias sucessivos, caso negativo.
Caso a lâmina não possa ser examinada no mesmo dia, deve ser embalada em papel alumínio e conservada em geladeira.
COLORAÇÃO PARASITOLÓGICO
· COLORAÇÃO POR HEMATOXILINA FÉRRICA – LÍQUIDO DE SCHAUDINN
Essa técnica é utilizada para coloração de trofozoítos e cistos de amebas e Giardia
· MÉTODO DE HENRIKSEN E POHLENZ (DERIVADO DE ZIEHL-NEELSEN)¹
Coloração de oocistos de coccídeos intestinais como Cryptosporidium parvum, Isospora belli e Cyclospora cayetanensis.
As fezes (frescas, preservadas em formol 10% ou em SAF) deverão ser previamente concentradas pelo método de MIFC, aumentando o tempo de centrifugação ou pelo método de Sheather.
Fezes preservadas em álcool polivinilico (PVA) não apresentam bons resultados.
*Segundo De Carli, os oocistos de Cryptosporidium parvum se apresentam com coloração vermelha intensa e brilhante ou rosa, sobre um fundo azul-esverdeado. A parede e o citoplasma é finamente granulado, com sua zona central clara. Os corpos residuais e os esporozoítos são castanhos. Leveduras e bactérias se apresentam uniformente coradas em azul-esverdeado.
· MÉTODO DA SAFRANINA MODIFICADA¹
· COLORAÇÃO PELA AURANINA¹
· COLORAÇÃO PELA FUCSINA CARBOLICA
¹ Métodos para coloração de oocistos Cryptosporidium parvum, Isospora belli e Cyclospora cayetanensis.
MEIOS DE CULTURA
· MEIO DE DIAMOND (TYM – Trypticase-Yeast-Maltose) para cultura exênica de tricomonadídeos.
· MEIO DE STUART para TRANSPORTE (conservação temporária) de tricomonadideos
· MEIO NNN isolamento e manutenção de espécies do gênero Leishmania e Trypanosoma cruzi – Ágar, NaCl e H²O destilada
· MEIO DE LIT (LIVER INFUSINON TRIPTOSE) - NNN isolamento e manutenção de espécies do gênero Leishmania e Trypanosoma cruzi
COPROCULTURA
· MÉTODO DE LOOS
· MÉTODO DE BRUMPT
· MÉTODO DE HARADA E MORI
*Métodos utilizados para realizar cultura de fezes para pesquisa de larvas de helmintos, principamente Ancylostomatidae ou S. stercoralis.
EXAME DE VETORES
· MOLUSCOS (Biophalaria) – S.mansoni
· FLEBÓTOMOS (Lutzomyia) – Leishimaniose
· MOSQUITOS (Anopheles) – Malária
	(Culex quinquefasciatus) – Wuchereria bancrofti
	(Culex e Aedes) – Dirofilaria immites
 (Aede aegypti ou albopictus) – Vírus do Dengue ou da Febre Amarela
 (Sabethini) – Arbovírus
· PULGAS (Xenopsylla ou Polygenis) – Peste Bubônica (Yersinia)
· BARBEIRO (T.cruzi) – Triatomideos
· MOSCAS (Musca domestica – Chrysomya) – Diversos patógenos