ARQ_05357005397_FLUCOP_2020712231443

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CENTRO UNIVERSITÁRIO REGIONAL DO BRASIL 
 
CURSO: Biomedicina DISCIPLINA: Análises de Líquidos Corporais 
ALUNO (A): Lydia Alves Lima Santos DATA: 12/07/2020 SEMESTRE: 8º 
 
AVALIAÇÃO AV2 
Resumo sobre o artigo Assessment of cytological and biochemical parameters stability 
in cerebrospinal fluid – Avaliação da estabilidade de parâmetros citológicos e 
bioquímicos do liquor. 
 
Erros na fase pré-analítica podem explicar os resultados que levam a testes 
clinicolaboratoriais desnecessários, induzindo decisões clínicas inadequadas, trazendo 
danos aos pacientes e aumentando os custos. Isso justifica uma maior conscientização 
sobre a importância e a necessidade de um gerenciamento mais preciso nesta etapa do 
ciclo de testes laboratoriais. A sistematização e o monitoramento dessas variáveis 
caracterizam laboratórios organizados e eficientes, que primam pela qualidade dos 
serviços e se esforçam por melhorar a segurança dos seus pacientes. 
Na prática, o uso de laboratórios de referência tornou-se rotina para exames 
especializados e de baixa demanda, realizados em diversos materiais, como o líquido 
cefalorraquidiano (LCR). O transporte para essa finalidade depende de vários tipos de 
logística e segue parâmetros bem definidos para acondicionamento das amostras. Esse 
cuidado visa assegurar que os resultados obtidos nessas amostras sejam comparáveis com 
aqueles resultantes de dosagens efetuadas imediatamente após a coleta, sem que haja 
comprometimento de sua qualidade. 
O líquido cefalorraquidiano (LCR) é um fluido corporal dinâmico que é 
amplamente utilizado no diagnóstico de muitas doenças tumorais ou inflamatórias, 
infecciosas, vasculares e degenerativas. Vários parâmetros do LCR, como proteínas, 
glicose, lactato, glóbulos brancos e vermelhos, entre outros, são medidos rotineiramente 
e seus padrões podem sugerir a presença de um processo patológico específico. 
O objetivo deste estúdio é avaliar a estabilidade, em 12 horas, dos parâmetros 
citológicos e bioquímicos do líquido cefalorraquídeo (LCR). 
O LCR é geralmente obtido por punção lombar (LP), coletada em tubos 
apropriados. Após a coleta do LCR, os tubos são transportados para o laboratório e há um 
período de tempo variável para a análise do LCR. Esse período de tempo é determinado 
por fatores, como a distância entre o hospital e o laboratório de análise. Também é 
possível que as amostras sejam coletadas em locais onde não há laboratório especializado, 
e as amostras precisam ser enviadas para um laboratório. Considerando o período de 
tempo entre a coleta e a análise do LCR, é importante conhecer a estabilidade dos 
componentes do LCR para entender como isso afeta a interpretação clínica dos resultados 
do LCR. 
 
MÉTODOS 
 
Foi realizada buscas referente no artigo disponibilizado para discente para fins de 
busca sobre os principais pontos abordados dentro dele. Foi vista também e citado no 
texto que todas as amostras de LCR incluídas no presente estudo foram obtidas para fins 
clínicos. Os médicos do Senne Liquor Diagnóstico realizaram as punções lombares. O 
tempo entre a retirada do LCR e a análise inicial levou até 2 horas. As amostras de LCR 
foram armazenadas em temperatura ambiente a 17ºC durante as análises. Realiza a análise 
de variância (ANOVA) dos resultados e a comparação da interpretação clínica nos 
diferentes tempos. 
 
Análises de glóbulos brancos e vermelhos 
 
Quinze amostras de LCR coletadas submetidos à LP foram utilizadas para análise 
de estabilidade de glóbulos brancos e vermelhos. Todas essas amostras de LCR foram 
enviadas para a unidade principal do Laboratório Senne Liquor Diagnóstico. Essas 
amostras foram divididas em alíquotas em cinco tubos diferentes que foram analisados 
em cinco tempos de espera diferentes: T0, T1 (2 horas), T2 (4 horas), T3 (6 horas) e T4 
(12 horas). Todos os tubos foram armazenados à temperatura ambiente. Todas essas 
amostras apresentaram inicialmente, no mínimo, 20 leucócitos / mm 3. O total de 
leucócitos e glóbulos vermelhos foi contado em uma câmara de contagem de Fuchs-
Rosenthal e a contagem diferencial de células foi realizada após sedimentação e 
coloração( 7 ) . As amostras de menos do que 100 leucócitos / mm 3 foram centrifugados 
a 1000 rpm durante 5 minutos. O mesmo procedimento foi realizado em todas as cinco 
alíquotas. Analisamos a variação do total de leucócitos, neutrófilos, linfócitos e contagem 
de glóbulos vermelhos, bem como a proporção de neutrófilos / linfócitos. A pleocitose no 
LCR foi classificada como leve (20-50 células / mm 3 ), moderada (50-200 / mm 3 ) ou 
marcada (> 200 / mm 3 ). O padrão de pleocitose, bem como a predominância de 
polimorfonucleares (PMN) ou linfomononucleares (LMN) foi registrado e uma 
comparação entre os cinco períodos de tempo de cada amostra de LCR. 
 
Análises de glicose, proteína e lactato 
 
Para análise bioquímica da estabilidade, avaliamos 20 amostras de LCR coletadas 
submetidos à LP. Essas amostras do LCR foram enviadas à unidade principal do 
Laboratório Senne Liquor Diagnóstico, de acordo com a RDC 20/2014 da Anvisa. As 
concentrações de glicose, proteína e lactato foram determinadas por colorimetia. Todas 
as amostras do LCR foram divididas em alíquotas em cinco tubos diferentes. Cada uma 
dessas alíquotas foi analisada em cinco períodos diferentes: T0, T2-2 horas, T3-3 horas, 
T4-4 horas, T12-12 horas. 
 
Análise estatística 
 
A análise de variância do total de leucócitos, neutrófilos, linfócitos, proporção de 
neutrófilos / linfócitos e concentrações de glóbulos vermelhos, glicose, proteína e lactato 
nos diferentes períodos de tempo foi realizada com a análise de variância unidirecional 
(ANOVA). O teste de comparação múltipla de Tukey foi usado para determinar quais 
médias entre elas diferem das demais. O nível de significância foi estabelecido em p 
<0,05. O software GraphPad Prism 5.0 (GraphPad Software, San Diego, CA, EUA) foi 
utilizado para todas as análises estatísticas. 
 
RESULTADOS 
 
Glóbulos brancos e vermelhos 
A contagem total de leucócitos no LCR representa o mais sensível parâmetro para 
caracterização de uma doença inflamatória do sistema nervoso central (SNC). Identificar 
o tipo ou tipos de células presentes no LCR é uma ajuda valiosa de diagnóstico, pois, 
conforme a linhagem celular predominante nessa contagem, é possível se estabelecer uma 
conduta terapêutica adequada de acordo com o significado clínico desse resultado. 
Em um LCR de um adulto normal, há uma predominância de linfócitos (60%-
70%), seguido de monócitos (30%-50%), e, em menor quantidade, de neutrófilos (1%-
3%). Em crianças há uma maior proporção de monócitos, nos quais até 80% podem ser 
observados em um LCR normal. Ocasionalmente, pode-se observar isoladamente 
eosinófilo ou neutrófilo no LCR normal. 
Os valores totais médios de leucócitos, neutrófilos, linfócitos, razão neutrófilos-
tolinócitos e glóbulos vermelhos são apresentados no artigo na tabela 2. Não foi 
encontrada variância significativa para leucócitos totais ( p = 0,15), neutrófilos ( p = 0,27), 
linfócitos ( p = 0,15), razão neutrófilos / linfócitos ( p = 0,11) e glóbulos vermelhos ( p = 
0,39). O teste de comparação múltipla de Tukey não mostrou diferenças significativas 
entre T0, T1, T2, T3 e T4 para nenhuma dessas variáveis. 
Não houve redução significativa no número de leucócitos e eritrócitos pela análise 
de variância (ANOVA). A interpretação clínica da citologia não resultou em resultados 
diferentes em nenhum dos tempos avaliados. Não houve variação significativa nos 
parâmetros bioquímicos. 
 
DISCUSSÃO 
 
Não encontramos uma diminuição estatística significante na contagem de 
leucócitos e glóbulos vermelhos por análise de variância ao longo de 12 horas em 
amostras de LCR armazenadas à temperatura ambiente. Além disso, nenhuma das 
análises citológicas resultou em diferentes interpretaçõesclínicas durante 12 horas de 
armazenamento do LCR à temperatura ambiente. Até onde sabemos, nenhum estudo 
anterior avaliou a variação citológica ao longo de 12 horas em amostras de LCR 
armazenadas à temperatura ambiente. Uma recomendação da Classe IV para avaliação 
citológica em duas horas foi dada devido ao potencial lise nos glóbulos brancos e 
vermelhos. Os achados sugerem que a diminuição na contagem de leucócitos não afeta 
significativamente a interpretação clínica de amostras de LCR de pelo menos 20 
leucócitos / mm 3 armazenados à temperatura ambiente. Na prática clínica, muitas vezes 
é difícil realizar análises do LCR logo após a coleta do LCR. Muitos hospitais e clínicas 
não têm serviço de LCR e precisam enviar as amostras de LCR. Nossos resultados 
sugerem que isso pode não interferir significativamente no resultado final da análise do 
LCR. Mais pesquisas são necessárias para avaliar a estabilidade de proteínas específicas, 
como albumina e imunoglobulina. 
O exame do LCR fornece informações importantes em relação ao diagnóstico 
etiológico e acompanhamento de processos inflamatórios, infecciosos ou neoplásicos dos 
órgãos que são envolvidos por esse líquido. Esse exame compreende a análise dos 
aspectos físicos, bioquímicos e citológicos do LCR. A definição dos intervalos de valores 
de referência é uma tarefa desafiadora para todos os laboratórios clínicos, sendo 
fundamental para que os laboratórios forneçam informações fidedignas e que os clínicos 
possam interpretar corretamente os resultados e optar pelas melhores condutas diante da 
população assistida. 
 
CONCLUSÃO 
 
Em conclusão, mostramos que os parâmetros do LCR permanecem relativamente 
estáveis, não afetando significativamente a interpretação clínica nas primeiras 12 horas 
de armazenamento à temperatura ambiente, sugerindo que as amostras de LCR podem 
ser submetidas com segurança a um serviço especializado de LCR dentro desse período. 
Os estudos abordados nesta revisão mostraram que ainda não existe uma 
padronização dos valores de referência para o exame de LCR. Apesar disso, os trabalhos 
não apresentaram uma ampla variância nesses valores. Apesar da escassez de trabalhos 
sobre o assunto, esta revisão contribui para a ampliação dos conhecimentos no exame do 
LCR. A escassez de estudos no LCR se deve à carência de profissionais especializados 
nesse tipo de análise e a menor demanda do exame em relação a outros fluidos, o que 
acarreta maior custo na implantação de procedimentos de qualidade. Estudos futuros 
ainda são necessários para avaliar o comportamento desses parâmetros em amostras de 
contagens de células mais próximas dos valores limite.