Diagnóstico Parasitológico das Enteroparasitoses - EPF

Prévia do material em texto

Exame parasitológico de fezes 
 
 
 
Ainda que em inúmeras investigações se tenha 
tentado explorar recursos imunológicos, com resultados 
ora satisfatórios, ora discutíveis, não há a menor dúvida 
 
de que, no estágio atual do nosso conhecimento, é o 
exame parasitológico das fezes, geralmente, o melhor 
recurso para o diagnóstico das enteroparasitoses. 
Assim sendo, o seu uso é de acentuada importância 
na clínica, como também no controle do tratamento e da 
cura. Desnecessário é comentar o seu extraordinário 
valor nos estudos epidemiológicos referentes às 
endemias parasitárias. 
 
FINALIDADE 
► Detectar e identificar os parasitos intestinais 
● PROTOZOÁRIOS (trofozoitos, cistos, oocistos) 
● HELMINTOS (ovos, larvas, adultos) 
 
 
FEZES EMITIDAS ESPONTANEAMENTE 
 A detecção e a identificação dos parasitos intestinais estão em 
relação direta com a amostra entregue no laboratório. 
EPF 
Coleta e 
preservação da 
amostra fecal 
Exame macroscópico e 
microscópico da amostra 
fecal fresca e preservada 
Expressão dos 
resultados 
no EPF 
COMPOSIÇÃO 
 
 Identificação segura e correta de um parasito depende de critérios 
morfológicos, os quais estão sujeitos: 
◦ Coleta bem feita 
◦ Boa preservação dos espécimes fecais 
NA COLETA DA AMOSTRA VÁRIOS FATORES DEVEM SER 
CONSIDERADOS 
 Tipo do recipiente 
 Volume 
 Idade da amostra 
 Drogas e compostos químicos 
 
➢ Intermitência da passagem de certos parasitos 
➢ Distribuição não uniforme dos ovos dos helmintos 
➢ Distribuição não uniforme dos estágios dos protozoários 
➢ Limitações das técnicas de diagnóstico 
Amostra única são revelados de um terço a metade das 
espécies presentes na massa fecal 
AMOSTRA 
◦ Nome do paciente 
◦ Número de identificação 
◦ Nome do médico 
◦ Data e hora da colheita 
◦ Quantidade mínima: 20g a 30g 
 RECIPIENTE 
◦ Limpo e seco 
◦ Com boca larga 
◦ Capacidade: 250ml 
◦ Vedação hermética 
 
Materiais fecais não preservadas 
 Consistência 
 Odor 
 Cor 
 Presença ou a ausência de 
sangue, muco 
 Vermes adultos 
 Proglotes 
O exame macroscópico deve 
sempre anteceder o exame 
microscópico 
 Ovos , larvas e pequenos 
adultos de helmintos intestinais; 
 Trofozoitos , cistos , oocistos e 
esporos de protozoários intestinais ; 
 Hemácias; 
 Leucócitos; 
 Cristais; 
 Células epiteliais; 
 Fungos; 
 Células vegetais; 
 Grãos de pólen; 
 Fibras vegetais; 
 Filamentos de raízes; 
 Pelos de animais; 
 Ovos de artrópodes 
 
 
➢ Para trabalhos de diagnóstico ou programas de controle 1º) Grau 
de confiança 
2º) Critérios de exatidão e precisão 
3°) Suspeita Clínica 
O técnico deve estar familiarizado com vários métodos e 
técnicas, além de conhecer suas vantagens e 
desvantagens 
➢ Técnicas de concentração 
➢ Técnicas de flutuação 
 
 
 
 
● Cada grama (g) de fezes de uma pessoa saudável – carrega cerca de 100 
bilhões de bactérias, contém aproximadamente 100 milhões de vírus e archaea (um 
tipo de organismo unicelular que antes eram classificadas como bactérias). ● 1g de 
fezes - cerca de um milhão de colonócitos (céls. epiteliais humanas que ajudam a 
proteger o cólon), cerca de um milhão de leveduras e outro fungos unicelulares. 
Juntos, todos esses microcomponentes biológicos compõem a matéria fecal, que 
ainda contém cerca de 75% de água e 5% sólida. 
 
● Segundo Bordenstein: é pouco provável que as bactérias por si só sejam 
responsáveis pelo sucesso dos transplantes de fezes. Os vírus, as archaeas e 
outros elementos também tem um papel renovador na microbiota do intestino 
doente. Mas ele esclarece “As pesquisas estão apenas começando” 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Fezes líquidas 
Fezes em tirinhas finas 
 
 
 
PRINCÍPIOS: 
➢ Sedimentação espontânea: Permite o encontro de ovos e larvas 
de helmintos, cistos , protozoários e alguns oocistos que possuem o 
tamanho maior. Ex: Método de Hoffman; 
➢ Sedimentação por centrifugação: Utilizam a centrifugação para 
concentrar as formas parasitárias. Ex: Método de Blagg e Ritchie; 
➢ Flutuação espontânea: Indicado para a pesquisa de ovos leves, 
principalmente ovos de ancilostomídeos. Ex: Método de Willis; 
➢ Centrífugo-flutuação; 
➢ Hidrotermotropismo 
 
➢ Concentração de ovos através das fezes por tela metálica ou de 
náilon 
 
 
Objetivos: 
 Aumentar o numero de cistos, oocistos, ovos ou larvas na 
preparação; 
 Eliminar a maioria de detritos fecais; 
 Apresentar os organismos em um estado inalterado facilitando sua 
identificação; 
 Indicadas para separar os cistos e oocistos de protozoários e ovos de 
helmintos dos detritos fecais através de diferenças específicas de 
densidade 
◦ Flutuação – Flutuação simples e Centrífugo - flutuação 
◦ Sedimentação – Sedimentação simples e Centrífugo - sedimentação 
 
 
 
 Desvantagem 
 Alta densidade dos reagentes: 
◦ alteração das parede dos ovos e dos cistos tornando os parasitas 
com aparência distorcidas, dificultando a identificação 
◦ Material examinado entre 10 a 20 minutos 
 Soluções usadas 
◦ Solução saturada de cloreto de sódio 
◦ Sacarose 
◦ Sulfato de zinco 
◦ Sulfato de magnésio 
 
1. Método de Ritchie (1948) 
➢ Fundamento: centrífugo-sedimentação em um sistema formol-éter 
2. Método de Faust (1939) 
➢ Fundamento: centrífugo-flutuação em uma solução de sulfato de zinco 
de densidade 1.182 
3. Método de sedimentação (Lutz, 1919) 
➢ Fundamento: sedimentação espontânea das fezes em água. 
4. Método de Baermann (1917). Modificado por Moraes (1948) 
➢ Fundamento: termo-hidrotropismo das larvas de nematódeos 
encontradas nas fezes associado à ação da gravidade. 
5. Método de Willis (1921) 
 
➢ Fundamento: Flutuação dos ovos de helmintos em uma solução 
saturada de cloreto de sódio em água (densidade: 1.200) 
 Procedimento simples e eficiente permitindo observar trofozoítos vivos 
de protozoários 
 Requer mínimo de material: 2mg 
 Esfregaços com fezes frescas preparadas com as soluções salina a 
0,85% e iodo: 
● Colocar de 2 a 3 gotas de salina a 0,85% em uma lâmina de microscopia; 
● Tocar a ponta de um palito em vários pontos das fezes, transferindo uma 
pequena porção destas para a lâmina; 
● Espalhar as fezes fazendo um esfregaço e examinar com as objetivas de 10x 
e/ou 40x. A espessura do esfregaço não deve impedir a passagem de luz. 
Fezes preservadas 
◦ A formalina atua como diluente (não é necessário adicionar salina) 
 
LUGOL - (solução de iodo) 
 Auxilia na localização e identificação de protozoários 
 Desnecessário para pesquisa de ovos e larvas de helmintos* 
● Para a identificação dos parasitas utiliza-se o lugol e o uso de lamínula 
é facultatico 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
A.Cálice contendo água morna;B.Aparelho já 
montado, com as fezes sobre a gaze, em 
contato com a água morna. 
 
 
Método de Rugai. Fezes dentro da água em 
contato com água morna contida no cálice 
de sedimentação 
 
 
Cropotest 
 
 
 
 
 Demonstração e quantificação de ovos nas fezes; 
 Determinação da intensidade do parasitismo em um indivíduo ou 
grupo populacional; 
 O conhecimento da carga parasitária é útil para: 
◦ Determinar a intensidade da infecção 
◦ Decidir pela medicação 
◦ Avaliar a eficácia dos medicamentos administrados 
1. Método de Stoll 
➢ Fundamento: suspensão titulada de fezes em NaOH 
2. Método de Kato-Katz 
➢ Utiliza: 
● tela que concentra o material a ser examinado 
● lamínulas de papel celofane semipermeável mergulhados na 
solução de verde malaquita por pelo menos 24 horas 
 
➢ Indicação geral: detectar ovos de helmintos, principalmente: 
Schistosoma mansoni, Ascaris lumbricoides e Truchuris trichiura. 
 Objetivo: 
1. Fornecer informações úteis ao diagnóstico 
2. Servir como guia para o tratamento 
3. Acompanhar e determinar a eficiência do tratamento4. Trazer informações de valor para estudos epidemiológicos 
5. Fornecer os elementos básicos para corrigir as deficiências nos 
programas de profilaxia do meio ambiente 
 Todos os parasitos patogênicos ou não-patogênicos deverão ser 
reportados nos seus nomes científicos, dando ênfase ao estágio 
de diagnóstico identificados 
◦ Nomes científicos obedecem às regras de nomenclatura binária 
(nome genérico e nome específico) 
◦ Nomes científicos: grifados, ou escritos em itálico ou em negrito 
Exemplos: 
 
Ovos de Ascaris lumbricoides 
Cisto de Giardia lamblia 
Larvas de Strongyloides stercoralis 
 Método executado 
 Consistência das fezes 
 Número de amostras colhidas 
Nome do paciente: ________________ Nome do paciente: 
___________________ 
Idade: _____________ Sexo: ________ 
Nome do médico: _________________ 
Data: ___________________________ 
EXAME PARASITOLÓGICO DE FEZES 
Consistência das fezes: dado não 
disponível (fezes no conservador) 
Método empregado: MIFC 
Resultado: Não foram encontrados ovos ou 
larvas de helmintos, nem cistos ou 
trofozoítos de protozoários no material 
examinado. 
Observação: coleta de três amostras em dias 
alternados 
 
Idade: ______________ Sexo: 
_________ Nome do médico: 
____________________ 
Data:___________________________
___ 
EXAME PARASITOLÓGICO DE FEZES 
Consistência das fezes: pastosas 
Método empregado: Hoffman, Pons e 
Janer 
Resultado: 
Ovos de Ascaris lumbricoides 
Larvas de Strongyloides stercoralis 
Cistos de Giardia lamblia 
 
 
 
 
Ovo fértil Ovo infértil