Resumo Medicina Laboratorial

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Resumo Medicina Laboratorial – Aula 1 (10/09) 
Alunos: Caio Nogueira e Leticia Santos 
 →Conteúdos Abordados: 
- Introdução a patologia clínica; 
- Importância da patologia clínica; 
- Colheita do material, condicionamento e envio ao laboratório; 
 
1. Investigação bioquímica e hematológica 
• Informações laboratoriais são adicionais as informações clínicas – Deve-se 
primordialmente existir o Interesse da clínica em desvendar diagnósticos obscuros e de 
confirmações laboratoriais; 
• Alguns laboratórios de patologia clínica possuem técnicos treinados apenas para 
humanos -> resultados sem qualquer interpretação; 
• Atualmente o clinica reconhece o laboratório como um serviço de excelência; 
• Uso bem sucedido do laboratório = dialogo entre o patologista clinica e o clinico 
veterinário, as duas coisas andam juntas para alcançar um bom diagnóstico, 
minimizando assim a ocorrência de erros. 
• Os exames de laboratório são subsidiários, ou seja, auxiliam no diagnóstico da clínica 
veterinária e também avaliam a gravidade da doença, nos prognósticos e na resposta 
do tratamento; 
• É necessário o clinico saber que exame solicitar e saber interpretar os exames solicitados 
(saber o que as alterações nos exames representam). 
 
2. SANGUE 
2.1 Parte liquida 
• Acelular (plasma) -> sobrenadante obtido quando uma amostra de sangue colhida com 
anticoagulante é centrifugada; 
• Tipos celulares: Linhagem vermelha, branca e plaquetas. 
 
3. Conceitos importantes 
• Hematologia: Estuda os elementos do sangue e fatores de coagulação associados – 
citologia de líquidos não sanguíneos (LCR). 
• Urinalise: Exame de análise urinária e seus sedimentos, com observação da ocorrência 
de alterações físicas e químicas da urina. 
• Bioquímica Clínica: Bioquímica pura, basicamente envolve a análise de fluídos 
corpóreos, principalmente plasma; 
 
4. Fatores que alteram os resultados 
 4.1 Variáveis do paciente 
Exercício – 
• Alteração nos Hematócrito (pode estar alto devido a desidratação) 
• Alteração nos leucócitos 
Estresse emocional – 
• Transporte entre ambientes 
• Presença do veterinário (Síndrome do jaleco branco) 
• Pessoas estranhas 
• Sons e odores estranhos 
Estresse emocional – 
• Leucócitos/neutrófilos/eosinófilo (principalmente em gatos) 
• Linfócitos 
Dieta – 
• Ideal jejum na noite anterior a colheita 
• Pós-alimentação: amostra lipêmica (apresentam um aumento lipídico- triglicerídeos) 
• Alta proteína -> Alto nitrogênio -> Alta ureia 
Fármacos - Importante anotar o fármaco, quanto tempo está sendo administrado e o motivo!! 
• Cefaloesporina -> altera creatinina 
• Tetraciclina -> glicose 
• Ác. Ascóbico -> hipoglicemia 
• Glicocorticoides -> Leucócitos baixos e ALT/FA Alto (cães) 
- Insulina exógena 
 -Baixa de glicose, fosfato ou potássio 
5. Preparo do paciente 
→ IDEAL: Jejum de 8h-12h 
• Animais fazendo Fluidoterapia/Medicamentos: Baixo hematócrito/glicemia 
• Impossibilidade de jejum: Avisar o laboratório 
• Avaliar glicemia jejum é indispensável 
 
• Necessidade diagnóstica não é opção do tutor, é obrigação do veterinário 
 
• Médico veterinário= Estabelecer a necessidade, escolher melhor método, orientação 
ao tutor 
 
6. Requisição de exames 
Informações mínimas necessárias: evitam atrasos, diagnósticos inadequados 
- Identificação do paciente 
- Identificação do tutor 
- Identificação do material 
- Identificação do veterinário solicitante 
6.1 Prontuário: Deve ter o nome do animal, espécie, sexo, idade, raça, número do prontuário, 
nome do tutor, suspeita clínica e história clínica, data e médico veterinário 
 
7. Identificação individual de cada amostra 
• Laboratorista: Observar coincidências de informações entre frascos e requisições 
• Amostra de boa qualidade: jejum alimentar (nem sempre possível) 
• Cultura e Antibiograma: Suspensão de medicamentos (antibiótico), ausência de 
refrigeração (fazer a análise o mais rápido possível) 
• Colheita da Urina: Agendada 
• Urocultura: Jejum alimentar 
 
8. TUBOS: 
 
• Roxo: Hemograma, preserva volume/morfologia celular, Bactériostático, possui EDTA 
(respeitar o volume de sangue na marcação para melhores resultados) 
• Azul: Usado para provas de coagulação (respeitar exatamente a marcação de volume 
no tubo) 
• Vermelho: Ausência de interferência de anticoagulantes d=nas reações bioquímicas, 
manter refrigerado, cuidado para perfil hepático 
• Amarelo: Possui ativador de coagulo, quando não tem centrífuga 
• Cinza: possui Floreto, preserva glicose, inibe consumo por parte das hemácias, resultado 
fidedigno da glicemia 
• Verde: Heparina (anticoagulante), não preserva morfologia celular, análises bioquímicas 
 7.1 Métodos pós-colheita 
• Exames fecais: Frescas, refrigeradas (sem congelar) – 4h 
• Hemograma (EDTA): Refrigeradas máx – 24h 
• Urinálise: Refrigerada – 1h/ Temperatura ambiente – 2h (Nunca congelar) 
 
→ OBSERVAR: 
• Utilizar um frasco por amostra 
• Observar quantidade e tipo de anticoagulante 
• Transferência de material da seringa pro tubo (Apertar o êmbolo na ponta do túbulo 
com cuidado e homogeneizar de 10-12 vezes e observar coágulos e fibrina – caso tenha 
precisa colher de novo) 
• Volume sanguíneo no tubo: Maior – coagulação / Menos – Alteração citológica 
 
8. CENTRIFUGAÇÃO: 
• Caso não seja possível a centrifugação material, a amostra deve ser reenviada ao lab até 
1h 
• Coagulo retraído – 2500 RPM por 5 minutos 
• Separar amostra: Micropipeta (pipeta pasteur) 
Melhores resultados não possuem contaminação sanguínea, coágulos ou fibrina 
 
• Líquidos em geral: Análise bioquímica, colher em tubos secos ou com EDTA -> devem 
ser enviados imediatamente, se necessário deixar na geladeira. Cerca de 5-10mL são 
suficientes 
• Lâminas com sangue fresco é o ideal e secar ao ambiente, para preservação da 
morfologia 
• Contagem plaquetária: tubo plástico ou siliconizado / Vidro: Agregação plaquetária 
9. CITOLOGIA 
9.1 PUNÇÃO DO LIQUIDO 
• Colheita: agulha + seringa → lâminas → esfregaço; 
• Conservação: secar bem → álcool absoluto/ 1 min; 
• Envio ao laboratório: cuidado com o esfregaço, palitos de fosforo na extremidade da 
lâmina → esfregaços externos → porção interna → passar esparadrapo na altura dos 
palitos. 
 
9.2 Punção de massas ou nódulos 
 
• Colheita: evitar locais flutuantes, sem excesso de sangue 
• Leve pressão em Lâmina 
• Agulha 25 x 6 em seringa de 5 a 10 mL; 
• Movimento em leque 
• Conservação e envio: idem á punção de líquidos. 
Colocar outra lâmina sobre o material, de forma perpendicular e realizar o esfregaço. 
9.3 LAVADO TRAQUEAL 
Colheita: material claro → tubo e centrifugar 
• Desprezar o sobrenadante 
• Diluir o precipitado 
• Seringa → lâmina → esfregaço 
Conservação e envio: enviar ficha completa e descrição da lesão 
 
 
 
 
 
9.4 SWAB AURICULAR 
Colheita: Assepsia rigorosa da face interna da orelha e meato 
acústico. 
• Algodão com dakin → retirada dos pelos; 
• Não pode ocorrer a contaminação do swab; 
• Microbiota agregada ao exsudato; 
• Introdução no conduto; 
• Movimentos rotatórios; 
• Tubo estéril → refrigeração 
• Envio ao laboratório: dia seguinte → meio de Stuart; 
• Otite bilateral: 1 swab para cada conduto. 
 
 
9.5 PELE 
• Piodermatites: 
- Tricotomia e assepsia; 
- Gaze e solução fisiológica; 
- Swab 
 
• DERMATOMICOSES 
- Raspado superficial, escamas de pele e pelos 
- Periferia da lesão 
- Lâminas ou frasco coletor. 
 
• ABCESSOS 
- Tricotomia e assepsia com álcool iodado ou líquido de Dakin; 
- Punção com seringa ou swab. 
 
 
 
9.6 ANALISE DE FLUIDOS ORGÂNICOS 
• Tricotomia da área a ser puncionada 
• Álcool 70% 
• Assepsia rigorosa → iodo → 1-2 min 
• Puncionar 
• Álcool 70 % 
 
10. Locais de coleta 
 
 
11. COLHEITA DE URINA 
• Até 10mL de urina recente; 
• Colheita → maneira asséptica; 
• Cistocentese → mais recomendado; 
• Sondagem → efeitos colaterais;• Micção voluntária: menos recomendado. 
 
 
12. COLHEITA DE FEZES 
• Diretamente do reto → 10 a 20g; 
• Defecção voluntária recente; 
• Porção sem contato com o chão; 
• Recipiente apropriado: sem refrigeração; tempo inferior a 12h.