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ASSUNTOS: - Técnicas de semeadura e isolamento de microrganismos. - Meios de cultura - Coloração de GRAM - Microbiota da mão - Controle de microrganismos por agentes físicos e químicos - Teste de Difusão de Disco – Antibiograma - Colheita e identificação de estreptococos, enterococos e estafilococos. - Caracterização de enterobactérias e coprocultura - Urocultura - Infecção do trato respiratório - Infecções de pele e partes moles + tsa Técnicas de semeadura e isolamento de microrganismos Os materiais utilizados são: Erlenmeyer, ágar, fita de pH e proveta. O meio é pesado, dissolvido e hidratado. Fundido na temperatura de 85 à 95 C, até que o meio se torne límpido, deve-se ajustar o pH. Preparar a para autoclave, tampando o erlenmeyer com uma rolha de gaze e papel kraft. Posteriormente deve-se esterilizar o meio em 121 °C por 15 min. ESGOTAMENTO CONFLUÊNCIA Meios de cultura Meio Seletivo: são exemplos o Ágar Manitol Salgado e Agar SS, utilizados para selecionar as espécies que serão isoladas e impedir o crescimento de germes.Ele contém inibidores, geralmente antibióticos, que tornam inviável o crescimento de certos microrganismos, sem inibir o crescimento do microrganismo alvo. Meio Diferencial: promove uma mudança na coloração das colônias de bactérias, possibilitando a distinção de vários gêneros e espécies de microrganismos. https://www.prolab.com.br/produtos/meios-de-cultura/agar-salt-manitol ÁGAR SANGUE - diferencial/não seletivo. Indicado para microrganismos fastidiosos e com atividade hemolítica. ÁGAR CHOCOLATE- Não seletivo O Ágar Chocolate é indicado para cultivo de microrganismos fastidiosos. Sua base é rica em nutrientes, suplementado com hemácias de carneiro lisada e vitaminas do complexo B. Que proporcionam o crescimento de uma ampla variedade de microrganismos MUELLER HINTON - não seletivo e não diferencial. Usado para testes de suscetibilidade aos antimicrobianos ÁGAR NUTRIENTE - seletivo/ diferencial ÁGAR Macconkey - fracamente seletivo/diferencial Seletivo por permitir somente o crescimento de Enterobactérias e BGNNF(bacilos gram negativos não fermentadores), por conta do cristal violeta. Só cresce GRAM -!!!! Diferencial porque diferencia as bactérias lac+(colônia rosa) e lac-( colônias brancas) Não cresce gram positivo ÁGAR MANITOL SALGADO- seletivo/ diferencial Seletivo porque possui altas concentrações de sal, então é todo tipo de bactéria que consegue crescer nesse meio. No caso os Stafilococos. Diferencial porque consegue diferenciar Staphylococcus aureus das demais espécies( o meio fica um amarelo brilhoso ÁGAR Salmonella Shigella- Moderadamente Seletivo/ diferencial Seletivo porque isola Salmonella spp. e algumas espécies de Shigella Diferencial porque As bactérias fermentadoras formam colônias vermelhas e as não fermentadoras formam colônias incolores. ÁGAR CETRIMIDE- Seletivo e diferencial só nasce Pseudomonas aeroginosa Coloração de GRAM 👀: Devo circular as colônias isoladas e na parte do verso da lâmina com o lápis dermatográfico eu tenho que identificar minha lâmina (vou passar álcool se for como a caneta vai sair!!!!) - Meia gotas de salina - Alça descartável ou alça normal - Esfregaço na lâmina (circular) - Secar na chama - Marcar o lado oposto esfregaço Cristal violeta 1 min COLORAÇÃO: ● Lugol 1 min ● LAVA COM ÁGUA DESTILADA ● Álcool 10 seg ● LAVA COM ÁGUA DESTILADA ● Safranina 30 seg ● SECAR NO AR Resultados Microscópio: - ROSA OU VERMELHO: NEGATIVO - ROXO OU AZUL: POSITIVO - CACHOS: Staphylococcus - SEPARADO: Streptococcus Controle de microrganismos por agentes físicos e químicos/Teste de Difusão de Disco – Antibiograma Fazer uma suspensão bacteriana na escala de Mcfarland: Com a alça pegar colônias com a mesma morfologia, mas não pegue muitas para evitar de ultrapassar a escala de Mcfaland (isto significa que há aproximadamente 1,5 x 10 8 unidades formadoras de colônias (UFC)/mL). Sempre compare com o tubo que tem a escala de Mcfaland e com aquele papel listrado ou contra luz. Se estiver parecido pode começar. - Use o swab para fazer a confluência(meio Mueller hinton) - Aplicação dos discos - Leitura dos halos após incubação. Não coloque o meio na superfície do fundo escuro sempre segure, para luz passar e você conseguir fazer uma boa leitura. Quando for identificar a placa sempre lembre de escrever no cantinho, para não atrapalhar a leitura depois. A área em volta de um disco antibiótico que não tem crescimento é chamada de zona de inibição. Esta zona é medida em milímetros (mm) e comparada a um gráfico de interpretação padrão usado para categorizar a amostra como sensível, intermediária ou resistente. Se a zona de inibição observada é maior ou igual ao tamanho da zona padrão, o microrganismo é considerado sensível ao antibiótico. Por outro lado, se a zona de inibição observada é menor, o microrganismo é considerado resistente. Colheita e identificação de estreptococos, enterococos e estafilococos. ESTAFILOCOCOS - Secreção nasal e orofaringe. Materiais: Ágar sangue + Meio Stuart → orofaringe Ágar sangue + manitol hipertônico → fossas nasais Depois de inoculadas nos meios por esgotamento e incubadas, vão ser o obtidos os seguintes resultados bactérias gram positivas Teste da Catalase A presença da catalase permite separar os estreptococos catalase negativa de outros cocos Gram-positivos produtores de catalase, por exemplo, estafilococos. A enzima catalase converte o peróxido de hidrogênio em oxigênio e água. A liberação do oxigênio se observa pela formação de bolhas. - Controle positivo de Staphylococcus aureus; - Leitura: Não havendo formação de bolhas, o teste é negativo e indicativo de Streptococcus. - 👀: Atenção: reações falso-positivas podem ocorrer se o teste for realizado em meio de cultura contendo sangue, pois este possui a enzima catalase. Teste da Coagulase em lâmina - Colocar 2 gotas de salina em uma lâmina; - Emulsionar uma colônia isolada a ser testada; - Colocar uma gota de plasma 1:5 e misturar. 👀: Lembrar de não colocar muita colônia, a mesma quantidade que eu tiver no controle eu tenho que ter no teste. Leitura: Formação de coágulo ou grumos, identifica Staphylococcus aureus; Não há formação de coágulo ou grumos, identifica Staphylococcus coagulase negativa. Teste da Coagulase em tubo Adicionar uma alçada de colônia diretamente no plasma 1:5 de coelho com EDTA; no tubo teste e controle com Staphylococcus aureus Leitura:Formação de coágulo observada pela inclinação suave. Formação de coágulo inteira ou parcial, identifica Staphylococcus aureus; Não há formação de coágulo, identifica Staphylococcus coagulase negativa. ESTREPTOCOCOS E ENTEROCOCOS Para identificar deve-se verificar a coloração, formato e arranjo(cocos alinhados em cordões) Teste da catalase Teste da bacitracina e Camp test Em um lado do agar sangue deve-se colocar salina, depois pegar colônia, realizar o esgotamento e colocar o disco de bacitracina. Leitura: pode ser beta-hemolítico do grupo A: Streptococcus pyogenes Do outro lado deve realizar o Camp test, o teste visa a identificação de cepas de S. agalactiae (grupo B). Estas cepas produzem o fator CAMP (Christie, Atkins e Munch-Petersen) que atua sinergicamente com a β-hemolisina produzida pelo Staphylococcus aureus em ágar sangue. - Leitura: se formar seta dos dois lados: positivo - Seta de um lado só: negativo Prova da Optoquina: ● A optoquina (etil-hidrocupreína hidroclorídrica) é uma droga solúvel em água que se difunde rapidamente em meio de cultura sólido. Para este teste, em geral, utiliza-se o disco de optoquina de 6 mm contendo 5 µg da droga. ● Procedimento: Preparar uma suspensão do isolado correspondente a 0,5 da escala de McFarland; Semear a suspensão em uma placa de ágar sangue de carneiro 5% de forma a obter crescimento confluente; Após a absorção da suspensão pelo meio de cultura, colocar um disco de optoquina na superfície do meio semeado, com o auxílio de uma pinça; Incubar. ● Resultado: Formação de halo,que deve ser medido; Presença de halo ≥ 14 mm indica que a cultura é sensível à optoquina, sendo identificado para Streptococcus pneumoniae Teste PYR O teste de PYR determina a atividade da enzima pyrrolidonil arilamidase produzida pelo S. pyogenes, mas não pelos demais estreptococos β-hemolíticos. ● Com auxílio de uma pinça, retirar um disco de PYR do frasco e colocá-lo sobre uma lâmina ou placa de Petri vazia; ● Pingar uma gota de água destilada estéril (não utilizar salina, pois torna a reação mais lenta e menos intensa); ● Realizar um esfregaço com a bactéria a ser testada, recém-isolada, sobre o disco de PYR umidecido; ● Aguardar alguns minutos e colocar uma gota do reagente PYR. A reação ocorrerá em até 1 minuto. Leitura:Teste de PYR positivo apresenta o desenvolvimento de cor vermelha; O aparecimento de coloração amarela ou alaranjada indica resultado negativo; ● Bile esculina: + PRETO - AMARELO ● NaCl: + AMARELO - ROXO Caracterização de enterobactérias e coprocultura - O aluno deverá observar o aspecto e coloração das colônias nos meios de cultura. Após, deverá coletar uma colônia isolada que seja suspeita de patógeno (DEC, Shigella ou Salmonella) e inocular com agulha nos tubos da série bioquímica na ordem observada no esquema abaixo. Os microrganismos utilizam diferentes vias metabólicas para obtenção de energia e diferentes enzimas para degradar substratos, essa classificação se baseia exatamente nisso, em como cada bactéria se comporta frente a determinado teste, levando em consideração essas características metabólicas. ➔ Procedimento: Com auxílio da alça descartável (parte mais fina), coletar colônia suspeita (sem brilho); inocular a colônia em cada tubo da série bioquímica; - LAC + : as colônias ficam rosadas - LAC - : ágar fica alaranjado SÉRIE BIOQUÍMICA Legenda: Vm = Caldo Vermelho De Metila teste para identificar espécies bacterianas fortes fermentadoras, a partir da glicose. O meio tem a cor inicial amarelo, se a bactéria for uma forte produtora de ácidos ficará vermelho, em função da presença do indicador de pH vermelho de metila. O ponto de viragem deste meio é o pH 4,4. Resultados: VM: pingar de 3 a 5 gotas de vermelho de metila no tubo, e analisar os seguintes resultados - avermelhado +: fermentação ácida mista - amarelado - : Ureia = Caldo Ureia (Teste Da Urease ou Caldo Ureia de Stuart): esse meio é utilizado para avaliar se a bactéria é produtora da enzima urease. A ureia presente no meio é degradada pela enzima urease em duas moléculas de amônia. A amônia formada alcaliniza o meio e o indicador de pH, vermelho de fenol, presente no meio, se torna rosa. Originalmente o meio tem a cor âmbar e após a alcalinização se torna rosa. ● Ureia: - positivo: rosado - negativo: continua o mesmo aspecto Mili = Motilidade, (Produção De) Indol, Lisina Descarboxilase ★ Determinar se o microrganismo é móvel ou imóvel ★ Auxilia na diferenciação entre gêneros ▻ Ex: Klebsiella e Enterobacter ★ Inocular até 2/3 do meio ★ ▻ Meio semi-sólido: 0,3-0,5% de ágar 👀 NÃO VIRE O TUBO NA HORIZONTAL!!! Visualizar os tubos sempre na vertical ★ Resultados: ★ pingar de 3 a 5 gotas do reagente Kovac’s - motilidade + : tubo turvo - motilidade - : tudo com uma ‘'espécie’' de furo - descarboxilação da lisina +: continua roxo - descarboxilação da lisina - : fundo amarelado - produção de indol + : possui a presença de um anel avermelhado em cima do tubo - produção de indol - : anel amarronzado/ amarelo Fenilalanina = Ágar Fenilalanina (Teste Da Fenilalanina Desaminase) ★ Meio utilizado para diferenciação de bacilos entéricos quanto à capacidade de produzir ácido fenilpirúvico a partir da desaminação da fenilalanina por ação enzimática. ★ O meio é incolor e se os bacilos entéricos forem FA positivos, o meio apresentará uma coloração esverdeada na superfície após a adição do cloreto férrico. ★ Pingar de 3 a 5 gotas de cloreto férrico ★ Resultado +: o tubo ficar verde ★ Resultado - : não muda de coloração ↓ Tsi = Ágar Triple Iron Sugar (Tríplice Açúcar Ferro) ★ Determinar a capacidade de um microrganismos de metabolizar carboidrato no meio, com ou sem produção de gás, e produção de H2S; ★ Resultado: Leitura: produção de gás +: bolhas de ar com o ágar podendo subir no tubo produção de gás - : sem bolhas de ar - fermentação + : meio amarelado - fermentação - : meio avermelhado - produção de H2S + : meio fica preto - produção de H2S - : meio continua da mesma coloração Citrato = Ágar Citrato De Simmons ★ Meio utilizado para identificação de bactérias que utilizam o citrato com única fonte de carbono. ★ Resultado: O meio tem a coloração inicial verde, se a bactéria metabolizar o citrato presente no meio, ele ficará azul devido ao indicador azul de bromotimol. A mudança de cor ocorre pela alcalinização do meio ★ Leitura: - positivo + : meio fica azul - negativo - : meio fica verde Urocultura - Uso de cultura mista - Bacilos gram + no agar sangue - Bacilos gram - agar mac conkey - Se tiver crescimento no Mac Conkey: serie bioquimica - SEM crescimento no Mac Conkey: - GRAM - Catalase: - Se POSITIVO: coagulase em tubo e lâmina / manitol Novobiocina: placa de mullher hinton, fazer escala de McFarland, usar salina para fazer confluencia (com swab) e aplicar o disco. - Se NEGATIVO: Camp teste/ bacitracina NaCl / bile esculina - Infecção do trato respiratório - Infecções de pele e partes moles + tsa GRAM NEGATIVO LAC + : série bioquímica LAC - : oxidase - Tira de oxidase em uma placa vazia - Pingar 2 gotas de água destilada na tira - Alça descartável e coletar colônias controle de pseudomonas e colocar de um lado da tira - Fazer a mesma coisa com colônias teste - Positivo: azul - Negativo: mesma cor - Se POSITIVO: OF glicose e cetrimide OF Glicose: - 2 tubos, 1 com meio e outro com meio e vaselina - Agulha normal e inocula nos 2 tubos com placa agar nutriente - Resultado: Cetrimide: esgotamento com bactéria teste com alça descartável Resultado: - Se NEGATIVO: Série bioquímica e OF glicose GRAM POSITIVO: - Catalase - Se POSITIVA: coagulase em tubo e lâmina + manitol - Se NEGATIVA: Camp / bacitracina e NaCl / Bile esculina.
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