RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS EAD 2021 - Bioquímica Humana - AULA 1

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RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS - EAD
	
AULA ____
	
	
	DATA:
______/______/______
VERSÃO:01
RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS: BIOQUIMICA HUMANA – Aula 1
DADOS DO(A) ALUNO(A):
	NOME: Geissiane Fausto de Oliveira 
	MATRÍCULA: 04041768
	CURSO: Farmácia 
	POLO: UNAMA 
	PROFESSOR(A) ORIENTADOR(A): Rosilma Oliveira
	ORIENTAÇÕES GERAIS: 
· O relatório deve ser elaborado individualmente e deve ser escrito de forma clara e
· concisa;
· O relatório deve conter apenas 01 (uma) lauda por tema;
· Fonte: Arial ou Times New Roman (Normal e Justificado);
· Tamanho: 12;
Margens: Superior 3 cm; Inferior: 2 cm; Esquerda: 3 cm; Direita: 2 cm;
· Espaçamento entre linhas: simples;
· Título: Arial ou Times New Roman (Negrito e Centralizado). 
 
	TEMA DE AULA: ATIVIDADE CATALÍTICA DA AMILASE SALIVAR
RELATÓRIO:
1. Resumo sobre o tema abordado em aula.
2. Materiais utilizados.
3. Responda as Perguntas: 
A) Qual a composição do amido?
B) Comente os resultados obtidos nos tubos 1, 2 e 3 no procedimento da hidrólise química do amido.
C) Qual o objetivo do uso de HCl, aquecimento e resfriamento no procedimento da hidrólise química do amido?
D) Descreva a sequência de transformações operadas pela amilase na molécula da amilose.
E) Comente os resultados obtidos nos tubos 1, 2 e 3 no procedimento da hidrólise enzimática do amido.
F) Explique a relação entre a atividade da amilase salivar, o tempo de incubação da enzima com o amido e a variedade de cores observada no procedimento da hidrólise enzimática do amido. 
4. Conclusão sobre a atividade catalítica da amilase salivar.
Sendo produzida nas glândulas salivares a amilase salivar tem a capacidade de degradação sobre o amido. Em nossa aula realizamos 2 testes hidrólise química com ácido clorídrico hidrólise enzimática com a amilase salivar(Atividade catalítica da amilase).
 Materiais e substâncias utilizadas:
Proveta
Tubos de ensaio
Estante
Banho de gelo
Banho Maria
Amido 1%
Ácido Clorídrico 
Pipeta graduada
Pipeta pasta
Pera
Água destilada 
Para mistura química 30 ml de amido a 1% e adicionamos 3 ml de ácido clorídrico.
 Para a enzimática 30 ml de amido a 1% e adicionamos 3 ml de amilase salivar; Separamos 3 tubos para cada teste e colocamos 5 ml de água destilada em cada tubo, adicionamos em cada tubo 5 ml d ácido clorídrico nos seus respectivos tubos e a amilase salivar no seu respectivo tubo. Primeiras amostra foi colocadas no banho de gelo por 1 minuto; o segundo turbo de cada amostra 10 minutos a 70° no ao banho Maria logo depois levado ao banho de gelo os terceiros dos de cada amostra 20 minutos no banho Maria e após levados ao banho de gelo. Nos primeiros tubos adicionamos 5 gotas de lugol e observamos se houve a degradação, Definimos o nosso resultado porque após o banho de gelo ainda havia o amido ou seja não houve lise Essa solução ficou com uma coloração esverdeada. hoje segundo os tubos adicionamos 5 gotas de lugol em cada tubo e aguardamos a reação onde ficou com uma coloração azul bastante escura que indica que a temperatura não quebrou o amido.
Os terceiros tubos também adicionar uns 5 gotinhas de lugol em cada tubo onde ficou com uma coloração azul bem escura onde indica a presença do amido, esse amido é uma molécula formada por outras moléculas de glicose.O tempo de incubação realizado no teste serve para verificar se as mudanças de temperatura influenciam ou não na reação catalítica eu uso do HCL e as mudanças de temperatura serve para saber se ocorrerá a lise ou não do amido.
Finalizamos os testes e o resultado é que a mudança de temperatura um muda o tipo de reação a olho nu, se observarmos a coloração mas ela não faz com que haja a quebra do amido e isso só ocorre após deixarmos um bom tempo em reação.
		TEMA DE AULA: REAÇÃO DE SELIWANOFF (REAÇÃO PARA DISTINÇÃO ENTRE ALDOSES E CETOSES)
RELATÓRIO:
1. Resumo sobre o tema abordado em aula.
2. Materiais utilizados.
3. Responda as Perguntas:
A) Explique o princípio bioquímico do teste de Seliwanoff.
B) Comente os resultados obtidos nos 3 tubos utilizados no procedimento, correlacionando com a presença ou não de aldoses e cetoses.
C) Explique qual o objetivo de utilizar um tubo apenas com água destilada.
D) Qual a função do ácido clorídrico (HCl) e da fervura aplicados no teste de Seliwanoff?
4. Conclusão sobre a identificação de aldoses e cetoses utilizando o teste de Seliwanoff.
 As aldoses são grupos de carboidratos simples e a cetose são do grupo cetona.
Saliwanoff É um reagente usado nas Reações além de outros reagentes que também podem ser usados.
Materiais:
Balão volumétrico
Becker
Ácido clorídrico HCL a 0,1 Mol
Saliwanoff
Água destilada
Tubos de ensaio
Pipetas Pasteur e graduadas
Pera
Estantes
Glicose (aldose)
Frutose (cetose)
Banho Maria.
Identificamos os tubos como glicose, frutose e um com um ml de água destilada para o controle negativo. Adicionamos uma ml de glicose a 1% no seu respectivo tubo e um ml de frutose no seu respectivo tubo; adicionamos 1,5 ml de ácido clorídrico nos 3 tubos; adicionamos 05 Ml do reativo saliwanoff Nos 3 tubos e homogenic Samos tudo e levamos para o banho-maria a 70 graus até obtermos reação que é a mudança de coloração os tubos ficou em média 2 minutos ao banho-maria e observamos porque a glicose manteve-se intacta não houve mudança de coloração o que significa que ela não é uma cetose já a frutose ficou com uma coloração bastante vermelha que indica que houve reação com o furfural e o reciocinol Ok não ocorreu com a glicose e no nosso controle negativo que foi o tubo com água que também manteve-se inalterado. Concluímos que a cetoses contida nos saliwanoff reagem com ácidos Fortes que no caso é o ácido clorídrico com a mistura ocorre a produção de furfural que reage com o raciocínio (derivado da uréia) que está presente no saliwanoff.
 
		TEMA DE AULA: PRECIPITAÇÃO POR ÁCIDOS FORTES E METAIS PESADOS
RELATÓRIO:
1. Resumo sobre o tema abordado em aula.
2. Materiais utilizados.
3. Responda as Perguntas:
A) Comente os resultados obtidos no procedimento da precipitação da ovoalbumina com ácido forte e metal pesado.
B) Qual a fundamentação teórica que explica o processo de precipitação das proteínas com ácidos fortes e metais pesados?
C) O que ocorreu com a ovoalbumina para que ela formasse um precipitado insolúvel neste experimento?
4. Conclusão sobre a precipitação de proteínas por ácidos fortes e metais pesados.
Na aula fizemos a técnica de verificação das proteínas em reação e precipitação com algumas substâncias.
Materiais:
Ácido tricloracetico 20%
Acetato de chumbo 10%
Ovalbumina10% (proteína)
Tubos de ensaio
Estantes
Pipetas
Pera
Identificamos os tubos um como ácido e outro com chumbo, adicionamos 2 ml de ovo albumina em cada tubo; Adicionamos uma ml de ácido tricloracético no seu respectivo tubo onde já observamos uma mudança pois formou um líquido bastante leitoso. Adicionarmos o metal pesado no caso o chumbo, onde foram 5 gotas no seu respectivo tubo e logo houve a precipitação, Portanto com o ácido houve uma precipitação bem maior.
Concluímos que as proteínas a uva albumina com suas estruturas carbaminicas se precipitam com ácidos fortes e metais pesados.
			TEMA DE AULA: PRECIPITAÇÃO FRACIONADA POR SOLUÇÕES SALINAS CONCENTRADAS
RELATÓRIO:
1. Resumo sobre o tema abordado em aula.
2. Materiais utilizados.
3. Responda as Perguntas:
A) O que é “Salting out”, “Salting in” e camada de solvatação?
B) Explique o princípio Bioquímico da precipitação de proteínas por adição de soluções salinas.
C) Comente os resultados observados da precipitação da proteína por sulfato de amônio na presença e ausência da água, correlacionando com a solubilidade da proteína.
4. Conclusão sobre a precipitação das proteínas por adição de sais neutros (soluções salinas concentradas)
Na aula praticamos sobre precipitação Salinas de proteína Mudando a sua concentração iônica com o adicionamento de sais.
Materiais:
Ovalbumina 10% (proteína )
Sulfato de amônio (concentrado em sais)
Água destilada
Tubos
Estantes
Pipetas
Pera
Beckeridentificamos os tubos como A (ovalbumina+salina) mais salina e um tubo B (ovalbumina+amônio e água destilada).Adicionamos 2 ml de ovalbumina em cada tubo; Adicionámos 2 ml de concentração de salina (amônio ) no tubo A; adicionamos 2ml de água destilada no tubo Be após 2 ml de sulfato de amônio (salina) no tubo b.
No final observamos que no tubo A houve grande precipitação, já o tubo B Não deu para fazer essa observação já que a água ela diminui a questão iônica das cargas.
Salting out É a precipitação da proteína em meio a uma solução de salina e em alta concentração. Onde ocorre a separação informação de uma fase sólida.
Salting in é a diminuição da interação entre moléculas proteicas e as cargas provenientes de sal neutro adicionado, o Significa que o houve o aumento da concentração de íons.
			TMA DE AULA: REAÇÃO DE BENEDICT (IDENTIFICAÇÃO DE AÇÚCARES REDUTORES)
RELATÓRIO:
1. Resumo sobre o tema abordado em aula.
2. Materiais utilizados.
3. Responda as Perguntas:
A) Qual a composição do Reativo de Benedict?
B) O que são açúcares redutores?
C) Explique a fundamentação teórica do Teste de identificação de açúcares redutores com o Reativo de Benedict.
D) Comente os resultados observados no experimento relacionando com a identificação de açúcares redutores.
E) Exemplifique algumas aplicações deste teste na área clínica. É um teste qualitativo ou quantitativo?
4. Conclusão sobre a identificação de açúcares redutores utilizando o Teste de Benedict.
Sendo carboidratos de estrutura hidroxila os açúcares redutores reagem com íons metálicos, onde a carbonila da reação se liga ao reativo de Benedict que foi o reativo de nosso teste em aula prática. o reativo Benedict é composto por íons cúpricos.
A nossa aula teve como objetivo identificarmos os principais açúcares redutores.
Materiais:
Glicose1%
Sacarose1%
Reativo de Benedict (qualitativo)
Tubos
Estantes 
Água destilada para controle negativo
Becker 
Pipetas 
Pera
Identificamos os tubos como glicose, sacarose e água destilada. Adicionamos 5 ml do reativo Benedict em cada um dos tubos, após adicionamos 5 ml de glicose no seu respectivo tubo 5 ml de sacarose no seu topo e 5ml de H²O no seu respectivo tubo para o controle negativo.
Homogeneizar os tubos e levamos para o banho-maria a 70° por 5 minutos para obtermos a reação. O resultado que obtivemos foi que o tubo com água não houve reação e nem redução; na sacarose também não houve reação e nem redução onde a sacarose não é um carboidrato redutor; Já a glicose houve redução dos íons pelo fato de em sua composição a aldose. Esse teste é de classificação qualitativa pois só observamos se os açúcares redutores estavam ou não presente.