BOTANICA AULA 6

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BOTÂNICA CRIPTOGÂMICA
AULA 6
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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Profª Nicole Witt
CONVERSA INICIAL
Nesta etapa, estudaremos a importância da taxonomia para o estudo e conservação da flora,
conheceremos alguns sistemas de identificação de táxons com foco nas chaves de identificação de
organismos criptógamos e também discorreremos sobre a importância dos herbários para os estudos
e conservação da flora. Por fim, estudaremos métodos de coleta e herborização para exemplares de
briófitas, pteridófitas, algas e fungos.
TEMA 1 – TAXONOMIA E ESTUDO DA FLORA
A diversidade de espécies existente no planeta é um fato evidente (só de plantas vasculares, há
mais de 260 mil espécies descritas e de fungos, mais de 40 mil – Reece et al., 2015), tanto que é algo
que pode ser observado por qualquer um de nós ao prestarmos atenção ao nosso redor.
À medida que caminhamos em um parque, em um bosque, em uma trilha ou ao subirmos uma
montanha, averiguamos uma variedade de espécies diferentes da fauna e da flora. Como isso sempre
nos intrigou, desde muito cedo na história da humanidade desenvolvemos formas de organizar os
organismos, criando, assim, diferentes sistemas de classificação.
Atualmente, a disciplina científica responsável por inventariar e descrever a biodiversidade,
classificando os seres vivos em grupos (linhagens) a partir de suas características morfológicas,
fisiológicas e genéticas, é a sistemática. Quando o objetivo da classificação busca refletir as relações
evolutivas, levando em conta o grau de parentesco entre os organismos, definimos como
sistemática filogenética, que é o sistema de classificação que se baseia na teoria evolutiva e é o
mais utilizado nos dias atuais.
Fazendo parte da sistemática, temos a taxonomia, que pode ser definida como a “Disciplina
científica dedicada a nomear a classificar as diversas formas de vida” (Reece et al., 2015, p. 1381).
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Diante disso, a taxonomia envolve, portanto, a identificação, a denominação e a classificação das
espécies. A identificação segue a nomenclatura binomial proposta por Lineu em 1753, onde o nome
da espécie corresponde ao gênero seguido de epíteto específico, normalmente um adjetivo, p. ex.:
Nepeta cataria, popularmente conhecida como erva-de-gato. É importante pontuar que os nomes de
gêneros e espécies são impressos em latim e em itálico ou sublinhados (Raven; Evert; Eichhorn, 2018).
Dentro da Biologia Vegetal, a Sistemática Vegetal, muitas vezes, denominada por Taxonomia
Vegetal, é o ramo da Botânica que têm por finalidade identificar, nomear e agrupar as plantas dentro
de sistemas, levando em consideração suas características internas e externas, suas relações genéticas
e evolutivas.
Nesse sentido, a classificação é a ordenação das plantas em táxons (ou taxa) , em que cada
espécie pertence a um gênero e este a uma família. Famílias são subordinadas a uma ordem, as
ordens a uma classe e cada classe a uma divisão ou filo (Medeiros; Mendes; Lucena, 2015). Os filos,
no caso dos organismos estudados na botânica, serão agrupados em Reino Plantae ou Primoplantae
(Archaeoplastida), conforme a classificação utilizada nessa disciplina – algas verdes, algas vermelhas e
plantas terrestres; as algas que não são vermelhas ou verdes, nas diferentes linhagens de Protistas, e
os fungos no Reino Fungi.
Quanto à nomenclatura botânica, o nome designado para as espécies de algas, fungos e plantas
segue as regras e recomendações aprovados em Congressos internacionais de Botânica e publicados
em um Código Internacional de Nomenclatura para algas, fungos e plantas (antes de 2011 era
designado Código Internacional de Nomenclatura Botânica (ICBN).
Agora, para a correta identificação de uma espécie botânica, comumente se faz a comparação
com uma amostra seca (exsicata) guardada em museu ou herbário que serve como base para
comparação para que se possa determinar se são membros da mesma espécie (Raven; Evert;
Eichhorn, 2018). A utilização da literatura específica (livros, artigos etc.) e das chaves de identificação
também são recursos importantes.
Somado a esses recursos, atualmente, as bases de dados digitais que contém informações
importantes sobre a biodiversidade, como descrição e distribuição das espécies, estado de
conservação, entre outras, também têm contribuído muito com a identificação e conhecimento sobre
as espécies. A seguir, alguns exemplos.
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SiBBr – Sistema de Informação sobre a biodiversidade brasileira.
ICMBio – Portal da Biodiversidade.
WDPA – World Database on Protected Areas.
LEAp – Laboratório de Ecologia Aplicada (UFSC).
iDiv – Centro Alemão de Pesquisa Integrativa em Biodiversidade que produziram o sPlot –
Banco de dados de vegetação global.
GBIF — Sistema Global de Informação sobre Biodiversidade.
Saiba mais
Para conhecer como o sPlot foi criado e como os dados foram coletados, acesse o artigo a
seguir.
Disponível em: <https://www.ufrgs.br/ciencia/pesquisadores-compilam-e-analisam-base-glo
bal-de-dados-de-especies-de-plantas-e-suas-caracteristicas/>. Acesso em: 18 abr. 2022.
1.1 TAXONOMIA E CONSERVAÇÃO DA FLORA
Mas por que a correta identificação das espécies é importante para a biologia da conservação?
As espécies são as unidades fundamentais da vida e, apesar da dificuldade em se definir o que é uma
espécie e qual conceito utilizar (biológico, filogenético ou outro), suas nomeações e descrições
adequadas são fundamentais para que cientistas e gestores estudem e conservem a biodiversidade.
Nesse sentido, a conservação das espécies exige uma compreensão clara de quem são as espécies e
o que as distingue umas das outras, compreendendo, com isso, de forma correta, a distribuição e o
nicho ecológico de cada espécie.
A clareza na taxonomia também é essencial para definir leis sobre quais espécies são protegidas.
Globalmente, espécies descritas de forma imprecisa levam a uma má gestão, perda de recursos,
dificultam a conservação e podem proteger equivocadamente espécies não ameaçadas ou, ainda,
proteger a espécie de forma inadequada por deturpação do tamanho e distribuição da população.
Portanto, sendo a taxonomia uma ciência dinâmica, taxonomistas e biólogos conservacionistas
precisam se unir para promover mecanismos legislativos eficazes para a real conservação da
biodiversidade (Thomson et al., 2018).
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TEMA 2 – CHAVES TAXONÔMICAS
As chaves taxonômicas ou de identificação são recursos úteis e bastante utilizados na
identificação de organismos desconhecidos e são produzidas a partir de um conjunto de caracteres
morfológicos marcantes e facilmente reconhecíveis nos espécimes examinados (Medeiros; Mendes;
Lucena, 2015).
O objetivo das chaves taxonômicas é apresentar caracteres de tal forma que, por uma série de
escolhas alternativas, chega-se à identificação de um táxon específico, que pode ser a nível de
espécie, gênero, família, ordem ou outro. É importante destacar que as chaves de identificação
correspondem a um arranjo analítico artificial, que não tem por intenção refletir as relações
filogenéticas entre os táxons (Faleiro, 2020).
As características presentes em uma chave podem se restringir a plantas da flora regional ou
podem abranger vegetais distribuídos mundialmente. Da mesma forma, há chaves específicas para
identificar plantas em nível de família, gênero ou espécie (Medeiros; Mendes; Lucena, 2015). Quantos
aos tipos, existem as chaves tradicionais ou dicotômicas e as interativas ou de múltiplos-acessos
(Faleiro, 2020).2.1 CHAVES TAXONÔMICAS TRADICIONAIS
A primeira chave taxonômica dicotômica foi desenvolvida por Richard Waller (Figura 1) e, ainda
hoje, chaves como esta continuam sendo construídas (Figura 2) e constituem uma ferramenta
amplamente utilizada para a identificação de espécies, gêneros, famílias e outras categorias, estando
presentes em grande parte dos trabalhos de descrição e revisão de táxons (Faleiro, 2020).
Esses tipos de chaves são constituídos por um conjunto de proposições contraditórias,
estruturadas dicotomicamente para facilitar seu manuseio (Medeiros; Mendes; Lucena, 2015), ou seja,
possuem alternativas mutuamente excludentes que conduzem ao próximo passo e, desta forma, por
diante, até que se chegue na identificação do espécime (Faleiro, 2020). Por possuírem um ponto de
partida definido e apresentarem uma única sequência funcional, dizemos que são chaves
hierárquicas. Esse funcionamento da chave pode ser um problema, pois, se o pesquisador não
identificou a característica ou a amostra coletada, não apresenta tal informação, o pesquisador não
consegue prosseguir com a identificação.
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Figura 1 – Representação das tabelas de Richard Waller. As tabelas apresentam os caracteres de
identificação inseridos em um diagrama de árvore com ramificação dicotômica. No final dos ramos,
há prancha das espécies de plantas, caracterizando como chave dicotômica ilustrada ou pictórica
Fonte: Faleiros, 2020.
Figura 2 – Exemplo de uma chave taxonomia tradicional dicotômica. Chave para identificação de
alguns gêneros de pteridófitas
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Fonte: Fernando Santiago, [S.d.].
2.2 CHAVES TAXONÔMICAS INTERATIVAS
Enquanto as chaves tradicionais são dicotômicas e fáceis de serem construídas manualmente, as
chaves taxonômicas interativas ou multiacesso são construídas em programas de computador e
funcionam por exclusão da lista de possíveis resultados, o que significa que, ao selecionar um estado
de caráter, ela mantém todos os táxons que possuem aquele estado selecionado e exclui todos
aqueles que não o possuem.
Por causa disso, para a sua construção, é necessário primeiro construir uma matriz com todos os
táxons e caracteres incluídos (Faleiro, 2020). Embora possuam o mesmo objetivo das chaves
tradicionais, as chaves interativas, segundo Faleiro (2020), diferem bastante destas e apresentam
algumas vantagens, tais como se seguem.
1. Como não possuem uma sequência hierárquica de passos (são multiacesso), o usuário pode
escolher por qual caráter iniciar a identificação e por quais quer seguir. Com isso, o usuário
pode inserir as informações sobre os caracteres que ele dispõe do organismo que se pretende
identificar e não fica preso a características que eventualmente não conseguiu identificar.
2. É possível inserir nesse tipo de chave uma variedade de informações, como links, fotos, vídeos,
sons, imagens, entre outras, isso acaba tornando as chaves mais atrativas e, às vezes, mais
fáceis, o que as torna excelentes ferramentas para disseminar o conhecimento taxonômico.
3. Para atualizar os caracteres e/ou novos táxons, basta integrá-los à matriz. Isso torna a edição da
chave muito mais simples e fácil.
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4. O acesso às chaves interativas é bastante prático, pois podem ser publicadas on-line. Ao mesmo
tempo, isso permite que haja maior interação com o usuário, o que favorece, até mesmo, a
construção coletiva e reparação de eventuais erros.
2.3 INDICAÇÕES DE CHAVES TAXONÔMICAS E DEMAIS MECANISMOS PARA
IDENTIFICAÇÃO DE ESPÉCIMES BOTÂNICAS
Para a identificação de algas, fungos e plantas desconhecidos, existe uma variedade de
publicações sobre a flora de estados, de regiões ou de unidades políticas menores que possuam
chaves e descrições botânicas (Medeiros; Mendes; Lucena, 2015). Com foco nos organismos
criptógamos, além das bases de dados digitais já indicadas anteriormente, seguem algumas
sugestões para identificação dos diferentes táxons.
Exemplos de artigos, livros e páginas institucionais:
1. Catálogo de plantas e fungos do Brasil. Disponível em: <https://static.scielo.org/scielobooks/z3
529/pdf/forzza-9788560035083.pdf>. Acesso em: 18 abr. 2022.
2. Macroalgas marinhas da área de influência da Central Nuclear Almirante Álvaro Alberto/ Baía da
Ilha Grande / Rio de Janeiro. Disponível em: <https://www.icmbio.gov.br/esectamoios/images/s
tories/Guia_de_Macroalgas_Marinhas_2015.pdf>. Acesso em: 18 abr. 2022.
3. Chave provisória para identificação dos Gêneros de algas marinhas da zona das marés do litoral
do Estado de Pernambuco. Disponível em: <https://periodicos.ufpe.br/revistas/TROPICALOCEA
NOGRAPHY/article/view/2559>. Acesso em: 18 abr. 2022.
4. Algas do Estado de São Paulo. Chave artificial para identificação de alguns gêneros.
5. Algas: uma abordagem filogenética, taxonômica e ecológica (Franceschini et al., 2010 – editora
Artmed).
6. Laboratório de Biologia de Micorrizas Universidade Federal do Rio Grande do Norte. Disponível
em: <https://glomeromycota.wixsite.com/lbmicorrizas>. Acesso em: 18 abr. 2022.
7. Fungos macroscópicos do Pantanal do Rio Negro, Mato Grosso do Sul, Brasil. Disponível em: <h
ttps://www.scielo.br/j/hoehnea/a/dz9ygCShmBZMRPQykrQvpMq/?format=pdf&lang=pt>.
Acesso em: 18 abr. 2022.
8. Guia preliminar para as Briófitas frequentes em Manaus e adjacências. Disponível em: <https://
www.scielo.br/j/aa/a/D3HqpmgSHBtPnBjkKDqp6Yj/?format=pdf&lang=pt>. Acesso em: 18 abr.
2022.
https://static.scielo.org/scielobooks/z3529/pdf/forzza-9788560035083.pdf
https://www.icmbio.gov.br/esectamoios/images/stories/Guia_de_Macroalgas_Marinhas_2015.pdf
https://periodicos.ufpe.br/revistas/TROPICALOCEANOGRAPHY/article/view/2559
https://glomeromycota.wixsite.com/lbmicorrizas
https://www.scielo.br/j/hoehnea/a/dz9ygCShmBZMRPQykrQvpMq/?format=pdf&lang=pt
https://www.scielo.br/j/aa/a/D3HqpmgSHBtPnBjkKDqp6Yj/?format=pdf&lang=pt
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9. Portal de Chaves Interativas da Biodiversidade (Criptógamas). Disponível em: <https://www2.ic
b.ufmg.br/chaveonline/chaves/criptogamas.html>. Acesso em: 18 abr. 2022.
10. Chave para identificação de gêneros de criptógamos vasculares citados para a flora Brasileira.
Disponível em: <https://brazilianjournals.com/index.php/BRJD/article/view/23057/18530>.
Acesso em: 18 abr. 2022.
11. Programa de Pesquisa em Biodiversidade (PPBio – Inpa). Disponível em: <https://ppbio.inpa.go
v.br/noticias/chaveonline>. Acesso em: 18 abr. 2022.
Exemplos de plataformas com trabalhos indexados:
1. Biological abstract. Disponível em: <http://www.periodicos.capes.gov.br>. Acesso em: 18 abr.
2022.
2. Index to American Botanica l Literature, Resources, Index.
3. CNIP – Centro Nordestino de Informações sobre Plantas, UFPE.
4. Teses brasileiras. Disponível em: <http://www.ibict.br>. Acesso em: 18 abr. 2022.
Exemplos de aplicativos:
1. Chave de Identificação Botânica;
2. PlantNet;
3. iNaturalist; e
4. FunGui – Guia de Identificação para Fungos.
TEMA 3 – HERBÁRIOS E O ESTUDO DA FLORA
Segundo Fidalgo e Bononi (1989), “Herbário é uma coleção de plantas [algas ou fungos] mortas,
secas e montadas de forma especial, destinadas a servir como documentação para vários fins” (p. 5).
Denominadas de exsicatas (Figura 3), essas amostras secas são essenciais para as pesquisas na área
de sistemática, tanto que, por meio de uma simples comparação entre os espécimes coletados e as
exsicatas dos herbários, já é possível identificar os organismos desconhecidos.
Ao mesmo tempo, as exsicatas servem como um material testemunho para documentar a
ocorrência de uma espécie em uma determinada localidade com possíveis registros de suas
características ecológicas (Judd et al., 2009), consistindo, portanto, em bancos de informações sobre a
flora existente no planeta (Medeiros,Mendes e Lucena, 2015).
https://www2.icb.ufmg.br/chaveonline/chaves/criptogamas.html
https://brazilianjournals.com/index.php/BRJD/article/view/23057/18530
https://ppbio.inpa.gov.br/noticias/chaveonline
http://www.periodicos.capes.gov.br/
http://www.ibict.br/
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Diante disso, os herbários são fundamentais para o desenvolvimento de trabalhos de
levantamento da flora, de conservação e monitoramento ambiental, para o conhecimento da flora da
região para fins de alimentação, de apicultura, de paisagismo e de interesses medicinais. Ainda
podem ser utilizados para a reconstituição paleoecológica de uma região (Medeiros; Mendes; Lucena,
2015), por meio, principalmente, da análise de pólen e esporos.
Figura 3 – Exsicata com folhas e frutos de canela do curucutu (Ocotea curucutuensis)
Fonte: Sara Schmidt, 2020, Pesquisa Fapesp.
Os herbários podem ser coleções que refletem a flora de uma região ou abrigar espécies do
mundo inteiro, quando servem como referência para estudos mais abrangentes (Medeiros; Mendes;
Lucena, 2015) e, de acordo com os mesmos autores, são centros de identificação botânica que
atendem às seguintes finalidades.
Fornecer dados à taxonomia botânica.
Auxiliar e validar pesquisas nas áreas de botânica, anatomia, ecologia, palinologia, genética,
ecologia, química e etnobotânica.
Documentar a vegetação de uma região.
Ajudar a reconstituir as informações sobre a flora original de uma área degradada.
Colaborar com estudos sobre a relação evolutiva entre plantas e animais.
Promover o diálogo entre pesquisadores do mundo todo e o intercâmbio de material botânico
entre herbários.
Proporcionar a formação continuada de botânicos, por meio de estágios oferecidos.
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Promover o estudo florístico e a revisão de novos táxons.
Prestar assessoria técnica aos cursos de pós-graduação na identificação de amostras
relacionadas à elaboração de monografias, teses e dissertações, bem como à sociedade como
um todo.
3.1 HERBÁRIOS NACIONAIS
No Brasil, temos 216 herbários em funcionamento, os quais, em conjunto, no ano de 2018,
reuniam 8,4 milhões de exemplares, número similar ao do herbário do museu nacional de história
natural de Paris, o mais antigo e um dos maiores do mundo, com cerca de 8 milhões.
A maioria dos herbários brasileiros estão em universidades públicas (cerca de 60%), seguido de
institutos e jardins botânicos (10%), e o restante em universidades comunitárias, ONGs e empresas
privadas e públicas. As maiores coleções estão no Jardim Botânico do Rio de Janeiro (cerca de 850
mil amostras) e no Museu Nacional (cerca de 600 mil) (Schmidt, 2020).
Assim como em muitas áreas da pesquisa nacional, os curadores dos herbários sofrem com a
falta de verba e espaço, o que limita a ampliação das coleções e prejudica o armazenamento das que
estão presentes e, ao mesmo tempo, atrasa a digitalização das amostras e organização dos herbários
virtuais. Inclusive, cerca de um terço dos espaços que abrigam os herbários não possuem estrutura
de proteção contra incêndios.
Para conhecer mais sobre a realidade dos herbários nacionais, acesse o artigo “Herbários
brasileiros, das caixas de papelão aos acervos on-line”, da Sara Schmidt (2020) – Pesquisa Fapesp e,
para conhecer alguns acervos virtuais, o Programa Reflora e o INCT – Herbário Virtual da Flora e dos
Fungos. É possível, também, participar do grupo Rede Brasileira de Herbários – SBB do Facebook, no
qual podemos acompanhar diversas publicações relevantes.
Disponíveis em: <https://revistapesquisa.fapesp.br/herbarios-brasileiros-das-caixas-de-papelao-
aos-acervos-on-line/>;
<http://reflora.jbrj.gov.br/reflora/PrincipalUC/PrincipalUC.do>;
<http://inct.florabrasil.net/>. Acessados em: 18 abr. 2022.
https://revistapesquisa.fapesp.br/herbarios-brasileiros-das-caixas-de-papelao-aos-acervos-on-line/
http://reflora.jbrj.gov.br/reflora/PrincipalUC/PrincipalUC.do
http://inct.florabrasil.net/
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TEMA 4 – COLETA E HERBORIZAÇÃO DE PLANTAS TERRESTRES
De acordo com Fidalgo e Bononi (1989) e Medeiros, Mendes e Lucena (2015), diversos
procedimentos metodológicos são necessários para que plantas possam ser registradas em um
herbário. O primeiro passo envolve a coleta adequada de material botânico, depois teremos a
prensagem, a secagem, a identificação e a montagem do material botânico, que consistem em etapas
importantíssimas para o resultado final das amostras que farão parte do acervo de uma coleção
(Medeiros; Mendes; Lucena, 2015). Para tanto, os mesmos autores indicam a necessidade dos
seguintes materiais.
Tesoura de poda, podão, facão ou espátula (depende muito do espécime de planta que irá
coletar).
Desplantador (para pteridófitas, principalmente).
Caixas plásticas ou de papelão e envelopes de papel para briófitas.
Prensa de madeira (vide item 4.3.1).
Papelões de espessura dupla e jornais.
Sacos plásticos e estopas.
Cordas, cordões grossos ou cintas com fivelas para amarração.
Fichas de identificação e cadernetas de campo.
Lupa de mão.
Binóculo (indivíduos arbóreos ou epífitas).
GPS.
Câmera fotográfica.
É importante pontuar que cada herbário pode ter particularidades quanto às instruções para as
suas exsicatas, assim vale a pena averiguar essas informações antes de concluir a coleta e
herborização dos materiais. Como exemplos, as normas do Herbário Prof. Jorge Pedro Pereira
Carauta (HUNI) da Universidade Federal do Estado do Rio de Janeiro e o Protocolo para coleta,
herborização e identificação de espécimes vegetais do Laboratório de Ecologia e Evolução de Plantas
Amazônicas .
4.1 ORIENTAÇÕES GERAIS
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Em linhas gerais, para que o material botânico possa ser identificado, é necessária a presença do
máximo de estruturas possíveis, com foco nas reprodutivas, como ramos férteis sexuados contendo
estróbilos, flores e/ou frutos no caso das espermatófitas e assexuados, com esporângios com esporos
no caso das criptógamas. É importante que, especialmente as briófitas e pteridófitas não “arbóreas”,
possam ser coletadas inteiras.
É indicado que se colete no mínimo cinco exemplares da mesma espécie, para que se possa, ao
mesmo tempo, identificar a espécie e, por meio das duplicatas, realizar a permuta com outros
herbários, além de garantir que conheçamos um pouco da variedade entre os indivíduos
(polimorfismo) (Medeiros; Mendes; Lucena, 2015).
É importante sempre obter a coordenada do GPS bem próximo ao indivíduo coletado,
preferencialmente na base da planta, e fazer o registro na caderneta de campo, que é um material
fundamental, pois, além de dados botânicos que serão catalogados junto à ficha de campo (Figura 4)
escrita a lápis, dados do ambiente e hábitat devem ser registrados.
Além disso, todas as amostras devem ser registradas por fotografias, tanto com fotografias feitas
em campo, do indivíduo inteiro em seu ambiente e de detalhes como em briófitas: gametófito e
esporófito; em pteridófitas os soros e esporângios, folíolos, caule e outras. O mesmo vale para as
espermatófitas quanto aos estróbilos, flores, frutos e sementes e em indivíduos arbóreos, a casca das
árvores e suas estruturas. Quanto em laboratório, no qual devem ser feitas fotos das exsicatas. Para
que as fotos tenham valor científico, é imprescindível o uso de escalas e o cuidado com a iluminação
e a perspectiva da foto.
Figura 4 – Exemplo de uma ficha de campo. As informações dessa ficha junto dos registros da
caderneta de campo deverão compor o rótulo e fichas de herbários
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Fonte: Fidalgo; Bononi, 1989.
Com exceção das briófitas, as quais devem ser coletadas sempre inteiras e com um pouco do
substrato e armazenadas em caixas plásticas ou de papelão,devido às suas estruturas frágeis, as
plantas vasculares, quando não coletadas inteiras (pteridófitas “arbóreas” ou a maior parte das
espermatófitas), podem ter ramos coletados (preferencialmente os férteis) e indica-se a prensagem já
em campo, pois, assim, as suas características botânicas são conservadas ao máximo.
Exemplares inteiros não devem ser maiores do que 35-40cm, caso isso aconteça, o que
ultrapassar deve ser dobrado em V ou N, respeitando as medidas da cartolina padrão do herbário. Já
quando o tamanho do exemplar, espécime ou parte dele (ramos, folhas etc.) ultrapassar em demasia
as dimensões desejadas, recomenda-se o corte no tamanho adequado, com cada segmento
recebendo a indicação da fração que representa do todo (Ex.: "Parte um de cinco partes"). O conjunto
de frações relativas a um mesmo exemplar deve permanecer sempre junto e sob o mesmo número
de herbário (Fidalgo; Bononi, 1989).
4.2 COLETA E HERBORIZAÇÃO DE BRIÓFITAS
As briófitas correspondem ao coletivo de plantas terrestres avasculares caracterizadas como
hepáticas (filo Hepatophyta), musgos (filo Bryophyta) e antóceros (filo Anthocerophyta) (Reece et al.,
2015; Raven; Evert; Eichhorn, 2018). As briófitas são encontradas crescendo sobre os mais variados
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substratos (troncos vivos ou em decomposição, superfície de rochas, conchas, folhas vivas, diferentes
tipos de solos e outros materiais orgânicos) tanto em florestas de regiões úmidas, como também no
Cerrado, na Caatinga e mesmo no deserto, em que a umidade relativa é muito baixa (Fidalgo; Bononi,
1989).
Segundo Fidalgo e Bononi (1989), para a coleta de briófitas, importante separar os seguintes
materiais: caixa de papelão grande, lenço de papel macio, saco confeccionado com jornal (19cm x
12,5cm), tesoura pequena, espátula ou canivete. Como o material é de fácil conservação, para a
coleta e conservação de briófitas quase não existe um método específico, inclusive as amostras,
quando secas, raramente emboloram ou são atacadas por insetos (Fidalgo; Bononi, 1989).
O material, coletado com um pouco do substrato, deve secar à temperatura ambiente ou
levemente prensado entre jornal ou papel chupão, mas nunca colocado em prensa. Ao acondicionar
o material, é importante arrumar os indivíduos de forma a evitar emaranhamentos ou danos ao
material. Sempre que possível, deve-se coletar tanto os gametófitos masculinos como os femininos.
Com relação aos esporófitos, estes devem ser mantidos junto ao gametófito feminino, ou quando em
número reduzido devem ser separados e colocados juntos, no saco original, com o mesmo número
de gametófitos, para evitar que se percam no meio do material (Fidalgo; Bononi, 1989).
Quando a coleta envolver briófitas aquáticas, é importante seguir alguns procedimentos para a
secagem, evitando, assim, o emboloramento. Para a retirada do excesso de água, Fidalgo e Bononi
(1989) sugerem que o material seja levemente comprimido entre papel chupão, sem espremer e, em
seguida, para reduzir a umidade, manter por um ou dois dias em saco de papel comum ou
confeccionado com jornal.
Também é importante o uso de sacos pequenos para manter as espécies delicadas, em boas
condições ou para estudo microscópico, com a proteção adicional de lenço de papel macio. No
próprio saco de papel, são feitas as anotações (Fidalgo; Bononi, 1989).
Segundo os mesmos autores, todo e qualquer material coletado deve ser identificado e
separado por espécie e local de coleta e, sempre que possível, deve se coletar quantidade suficiente
de material para estudos posteriores e para a confecção de duplicatas.
Quanto à preservação de materiais, somente talos e esporófitos e anterídios de hepáticas e
antóceros devem ser fixados em FAA, solução de Transeau ou em formalina a 1%. Para a secagem e
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herborização, colocar o material entre jornais, espalhar e depois apertá-lo levemente. Depois de seco
à temperatura ambiente ou em estufa o material, é colocado em sacos de papel e, em seguida,
dentro de um envelope padronizado (12,8 x 9,5cm) confeccionado com papel sulfite, (28 x 21,5cm).
Em herbários, esses envelopes são rotulados e colocados em caixas de tamanho padrão ou em
gavetas (Fidalgo; Bononi, 1989).
4.3 COLETA E HERBORIZAÇÃO DE PTERIDÓFITAS
As plantas vasculares que não produzem sementes e se reproduzem por esporos são
artificialmente consideradas pteridófitas. Com isso, são pteridófitas as licófitas, como as selaginelas e
as monilófitas, como as samambaias e cavalinhas. Esse coletivo perde em diversidade somente para
as angiospermas (Raven; Evert; Eichhorn, 2018).
Há grande diversidade de porte e de hábitat entre as pteridófitas, sendo possível encontrar
pteridófitas herbáceas, arbustivas, arbóreas e aquáticas. Da mesma forma, encontramos pteridófitas
habitando o solo, a água, a superfície de pedras ou árvores, os barrancos de estradas, de rios e de
riachos, nos arredores de casas e construções, nos cerrados, matas etc. (Fidalgo; Bononi, 1989).
Para fins taxonômicos, as pteridófitas devem ser coletadas apenas quando férteis, ou seja,
quando possuem folhas com soros (conjuntos de esporângios) ou estróbilos, ambos participando do
ciclo assexuado do grupo e sendo estruturas responsáveis pela produção de esporos por meiose.
Adicionalmente, todas as partes de uma pteridófita são necessárias à taxonomia, portanto, cada
planta deve ser coletada inteira (Fidalgo; Bononi,1989).
A ausência de qualquer parte desvaloriza e, às vezes, até impossibilita uma identificação precisa,
razão pela qual Fidalgo e Bononi (1989) recomendam o emprego de desplantador, tesoura de poda e
estopa para a coleta, o que reduz os danos causados à planta e permite que o material seja
adequadamente protegido. No caso das espécies que possuem rizoma muito incrustado em seus
substratos, os mesmos autores indicam que parte do substrato deve ser removido junto com a planta
e para as arbóreas, a fronde toda precisa ser coletada, inclusive as escamas da base da raque.
4.3.1 Prensagem e herborização
Para uma boa herborização, o que envolve a preparação e prensagem do material coletado para
posterior depósito em um herbário, sugere-se que as pteridófitas sejam imediatamente prensadas
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para evitar o enrolamento dos bordos. A prensagem consiste em colocar as plantas coletadas, uma a
uma em folhas de jornal, identificadas com a sua ficha de campo, em uma prensa (Figura 5) bem
apertada, para que os exemplares dessecados não fiquem enrugados (Medeiros; Mendes; Lucena,
2015).
A prensa, por sua vez, é constituída por duas tábuas de madeira com dimensões de cerca de 29 x
42cm, que servem para pressionar a amostra e secá-la sem dobras; folhas de papelão, contendo as
mesmas dimensões das tábuas, para retirar a umidade do material; amostras de papelão; cordas ou
cintas para amarrar e, ainda, podem fazer parte da prensa, placas de alumínio corrugado com
mesmas dimensões das tábuas, caso se utilize estufa para secar o material.
Figura 5 – Esq. Montagem. Dir. Prensa pronta
Fonte: protocolo para coleta, herborização e identificação de espécimes vegetais (Laboratório de Ecologia e Evolução de
Plantas Amazônicas).
Para a prensagem, coloca-se as amostras de plantas nas folhas de jornal intercaladas com
papelão (e o alumínio corrugado quando para secagem em estufa – não deixar esse material em
contato com as plantas). Passo a passo: colocar sobre a grade de madeira um papelão e as folhas de
jornal contendo o exemplar ou parte com sua respectiva ficha de campo. Em seguida, coloca-se
outro papelão, folhas de jornal com outra amostra e, assim, sucessivamente. Por fim, o material é
fechado com a outra grade de madeira, utilizando-se, para isso, das cintas ou cordas (Figura 5).
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https://univirtus.uninter.com/ava/web/roa/ 18/24Caso a prensa esteja em campo ou o pesquisador opte por utilizar o calor do sol para a secagem
do material, o jornal deve ser trocado diariamente para evitar a proliferação de fungos. Em
laboratório, recomenda-se o uso de estufas por cerca de 10-12 horas para a secagem e de prensas
contendo o alumínio corrugado (Fidalgo; Bononi,1989). Uma vez desidratadas, as amostras deverão
ser costuradas com linha de algodão em cartolina branca (42 cm alt. x 28 cm larg) (Fidalgo; Bononi,
1989), envolvidas por papel madeira ou Kraft ouro dobrado ao meio (Medeiros; Mendes; Lucena,
2015).
No canto inferior direito da cartolina, coloca-se a etiqueta com as informações da planta, hábitat
e coletor, seguindo as regras do herbário e, acima, no canto superior esquerdo, um pequeno
envelope com partes retiradas ou caídas do material (Figura 3) (Peixoto; Maia, 2013). Uma vez
prontas, as exsicatas devem ser armazenadas em armários e organizadas segundo sistema de
classificação vigente (Medeiros; Mendes; Lucena, 2015).
TEMA 5 – COLETA E HERBORIZAÇÃO DE ALGAS E FUNGOS
A seguir, serão apresentadas algumas metodologias de coleta e armazenamento de algas e
fungos.
5.1 COLETA DE ALGAS DULCÍCOLAS E MARINHAS
As algas ocupam os mais variados ambientes, com predominância no meio aquático. Para
estudar esses organismos, como eles apresentam variação na estrutura corporal e interação com o
ambiente, primeiramente, se deve determinar qual é o grupo de estudo, a fim de se definir onde
serão feitas as coletas e qual a metodologia será aplicada para a obtenção das amostras (Franceschini
et al., 2010).
Para a coleta de algas planctônicas, com foco em algas microscópicas unicelulares, coloniais ou
filamentosas, como as euglenas, cianobactérias, crisofíceas, diatomáceas, dinoflagelados e algas
verdes (p. ex. Desmodesmus, Dimorphococcus e Monoraphidium), segundo Medeiros, Mendes e
Lucena (2015), utiliza-se uma rede especial de malha reduzida (rede de plâncton), que deve ser
jogada dentro de um corpo d’água e arrastada cuidadosamente sobre a superfície da água,
preferencialmente em lugar calmo por cerca de 10-15 minutos.
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É importante não passar a rede rente ao fundo, para não coletar o substrato junto. Após a coleta,
o líquido preso no frasco localizado na porção terminal da rede deve ser cuidadosamente
transportado para outros frascos destinados à fixação e ao transporte do plâncton obtido. É
importante etiquetar os frascos anotando a data, localização, hora, características do tempo,
profundidade de coleta e outras que julgar importante.
Para a amostragem e identificação, será necessária a observação através de microscópio óptico.
Para isso, as amostras podem ser preparadas pelos métodos de centrifugação ou sedimentação. Para
a identificação das espécies-chave taxonômicas, podem ser utilizadas, bem como é feita a
comparação com a literatura e bases de dados tanto quanto as espécies de ocorrência na região de
análise quanto a comparação morfológica.
Em ambientes pouco movimentados de água doce, é comum a presença de grandes massas de
algas verdes filamentosas ou pseudofilamentosas aderidas ao substrato ou livre-flutuantes. Com o
uso de luvas, essas massas mucilaginosas podem ser coletadas manualmente e acondicionadas em
frasco contendo água do próprio ambiente para posterior triagem em laboratório e observação
microscópica. Comumente, encontram-se nesses ambientes os gêneros Desmidium
(pseudofilamentoso), Spirogyra e Zygnema (filamentosos) (Franceschini et al., 2010). Todos os frascos
devem ser etiquetados contemplando as mesmas informações descritas para algas planctônicas.
De acordo com Franceschini et al. (2010), outro método de coleta para algas microscópicas de
ambiente dulcícola é o espremido de macrófitas aquáticas – pteridófitas e angiospermas, que
formam com as suas raízes, um ambiente favorável para o desenvolvimento de certas algas. Esse
conjunto de organismos associados às raízes é denominado de metafíton, diatomáceas e
cianobactérias, sendo comuns nesse aglomerado.
Em conjunto, podemos encontrar uma variedade de algas vivendo aderidas ao substrato, como
seixos, rochas, pedaços de madeira etc. A esse conjunto de organismos, chamamos de perifíton, e
eles podem ser obtidos a partir do método da raspagem, utilizando-se de uma espátula. Tanto o
metafíton quanto o perifíton devem ser acondicionados em frascos bem vedados, contendo água do
ambiente de origem para posterior triagem e observação em laboratório. Uma vez acondicionados
em frascos bem vedados, cada um deles deve ser etiquetado com as informações semelhantes às das
algas planctônicas.
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Por fim, para a coleta de macroalgas bentônicas com talos visíveis, é feita por processo de
arranque manual ou raspagem do substrato com espátula ou faca, podendo ser utilizado um rastelo
de jardinagem preso a uma corda de nylon com intenção de realizar a dragagem do leito,
especialmente na coleta das algas verde Chara e Nitella de ambientes lodosos (Franceschini et al.,
2010).
Para a coleta desse grupo de algas, seja em ambiente dulcícola ou marinho, é importante ter o
cuidado de obter-se o indivíduo inteiro, com suas estruturas de fixação e reprodutivas (se possível),
as quais são importantes para a caracterização de gêneros e espécies. É importante que seja feita a
coleta de poucos indivíduos, a fim de preservar as populações naturais.
Os exemplares, uma vez coletados, deverão ser armazenados em sacos plásticos mantendo a
umidade, mas sem água em abundância, etiquetados com os dados de data e local de coleta, cor e
informação sobre o hábitat ocupado pelos organismos (condições as quais as algas estão expostas,
batimento das ondas, rochas expostas, zona de marés, remanso etc.) (Franceschini et al., 2010;
Medeiros; Mendes; Lucena, 2015). Segundo Franceschini et al. (2010), esse material, quando bem
acondicionado e mantido sob refrigeração, para estudo das estruturas vivas, pode ser armazenado
por até 15 dias.
O material pode ser fixado tanto na forma de exsicata e posterior deposição em herbário
(Medeiros; Mendes; Lucena, 2015; Dias; Abreu, 2020) quanto em meio líquido em solução de formol
(Dias; Abreu, 2020). Para acompanhar o passo a passo, recomendamos os materiais a seguir: Coleções
Biológicas de Macroalgas e o livro Morfologia e Taxonomia de Criptógamas .
5.2 COLETA DE FUNGOS MACROSCÓPICOS E CULTURA DE FUNGOS
A grande maioria dos macrofungos correspondem aos ascomicetos ou basidiomicetos, sendo o
corpo de frutificação a estrutura mais importante para a classificação, com isso, neste tópico, será
apresentada apenas a metodologia de coleta para esse conjunto de fungos.
Na coleta, é importante que todos os fungos encontrados durante o percurso sejam coletados,
para isso, é preciso estabelecer um plano de amostragem, podendo ser em parcelas, transectos ou
livre caminhada por um perímetro determinado, bem como frequência de coleta (única, semanal,
sazonal etc.). A organização de um bom delineamento experimental permitirá a posterior análise
estatística e comparação de dados.
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Para a coleta dos fungos macroscópicos, os métodos de coleta, documentação e preservação
mais utilizados, são os citados por Fidalgo e Bononi (1984). Para esses autores, a coleta dos fungos
deve ocorrer por catação manual com uso de luvas, facas ou pequenos canivetes.
Os corpos de frutificação (ascocarpos e basidiocarpos) devem ser coletados individualmente,
tomando-se o cuidado de coletá-los com uma porção do substrato, ao qual o fungo esteja aderido
(solo, folheto, troncos ou galhos caídos de plantas em decomposição). O material deverá ser
acondicionado em envelopes de papel ou, quando muito frágeis, em caixas de papelão ou em
depósitos de filme fotográfico.
Para cada amostra coletada, deveráser preenchido um formulário com detalhes morfológicos,
coloração, odor, textura e, sempre que possível, registro fotográfico e/ou desenho. É importante
anotar também a data, a localização com coordenada geográfica e tipo de substrato em que o fungo
foi encontrado (Medeiros; Mendes; Lucena, 2015). Em linhas gerais, pode-se utilizar a mesma ficha de
campo descrita na Figura 4.
Uma vez em laboratório, o material deverá ser desidratado em estufa com temperatura em torno
de 50° a 60ºC, durante o período aproximado de 24 a 48 horas. O material, agora seco, pode ser
colocado em freezers por cerca de três dias para eliminar organismos capazes de danificar as
estruturas do corpo frutífero (Medeiros; Mendes; Lucena, 2015) ou mantidas com cravo, evitando,
desta forma, o ataque de insetos.
A identificação é feita com chaves taxonômicas, observação de macro e microestruturas com
auxílio de lupa de mão e microscópio estereoscópico, análises químicas e, ainda, observações com
microscópio óptico, com posterior comparação com espécimes secos depositadas em herbários e
com a literatura. Além disso, para auxiliar na descrição das espécies, segue-se as bases de dados
específicas para os fungos, tais quais MycoBank, Index Fungorum e CBS. Os exemplares, depois de
fixados e herborizados, são comumente depositados em herbários credenciados (Bononi et al., 2008;
Carvalho, 2018).
NA PRÁTICA
Que tal montar a sua própria exsicata de organismo criptógamo? Para isso, utilize das
informações dos tópicos 4 ou 5 e mãos à obra. Como treinamento para a identificação da espécie (ou
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para outra categoria taxonômica), separe um ou dois exemplares e, com eles ainda frescos, corra uma
chave de indentificação.
Você pode utilizar uma das chaves disponíveis na subseção 2.3 ou, caso necessário, buscar nova
chave de identificação. Para saber qual chave melhor se adequa, leve em conta o local da coleta e a
qual categoria taxonômica se pretende chegar. Caso queira, também pode fazer uso das bases de
dados disponíveis no tópico 1, dos herbários virtuais da subseção 3.1 e aplicativos na subseção 2.3.
FINALIZANDO
Nesta etapa, estudamos a importância da taxonomia para o estudo da flora, compreendendo a
espécie como unidade fundamental da vida e, consequentemente, a importância da correta descrição
das espécies. Ao mesmo tempo, identificamos como é o procedimento para a identificação e
descrição de táxons.
Na sequência, estudamos as chaves de identificação taxonômica com foco nos dois modelos
principais: dicotômica e interativa, tendo, inclusive, exemplos dos dois tipos de chaves para os
organismos criptógamos. Trabalhamos, também, com a importância dos herbários para estudos e
conservação da flora e abordamos os métodos de coleta e herborização de plantas terrestres, com
foco nas briófitas e pteridófitas e para algas e fungos.
REFERÊNCIAS
BONONI, V. L. R. et al. Fungos macroscópicos do Pantanal do Rio Negro, Mato Grosso do Sul,
Brasil. Hoehnea, 35(4), p. 489-511, 2008.
CARVALHO, N. de. C. de. Levantamento de Fungos Macroscópicos (Basidiomycota) de um
Fragmento Urbano de Cerrado em Ituiutaba, Minas Gerais. Trabalho de Conclusão de Curso.
Universidade Federal de Uberlândia, 2019.
FALEIROS, B. T. Chaves Taxonômicas. In: Oswald et al. (Orgs.). Princípios de Sistemática
Zoológica. Universidade Federal de Minas Gerais. Instituto de Ciências Biológicas, 2020.
FIDALGO, O; BONONI, V. L. R. (Orgs.). Técnicas de coleta, preservação e herborização de
material botânico. Instituto de Botânica,1984.
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https://univirtus.uninter.com/ava/web/roa/ 23/24
FRANCESCHINI, I. et al.. Algas: Uma abordagem filogenética, taxonômica e ecológica. Editora
Artmed, 2010.
MEDEIROS, J. B. L. de P.; MENDES, R. M. de S.; LUCENA, EL. M. P. de. Morfologia e Taxonomia
de Criptógamas. 2. ed. Fortaleza: EdUECE, 2015.
PEIXOTO, A. L.; MAIA, L. C. Manual de Procedimentos para Herbários. Editora Universitária.
UFPE, 2013.
RAVEN, P. H.; EVERT, R. F.; EICHHORN, S. E. Biologia Vegetal. 7. ed. Rio de Janeiro: Guanabara
Koogan, 2018.
REECE, J. B. et al. Biologia de Campbell. 10. ed. Porto Alegre: Artmed, 2015.
SCHMIDT, S. Herbários brasileiros, das caixas de papelão aos acervos on-line. Pesquisa FAPESP,
2020.
THOMSON S. A. et al. Taxonomy based on science is necessary for global conservation. Plos Biol,
16(3), 2018.
 Táxon é o termo aplicado para determinar diversas unidades taxonômicas de níveis
hierárquicos diferentes ou categorias. Ex.: gênero = categoria = táxon. Plural, táxons ou taxa.
 Disponível em: <http://www.unirio.br/ccbs/ibio/herbariohuni/pdfs/instrucoes-para-
montagem-de-exsicatas>. Acesso em: 18 abr. 2022.
 Disponível em: <http://www.botanicaamazonica.wiki.br/labotam/doku.php?
id="projetos":sgc:natura:protocolos:coleta#protocolo_para_coleta_herborizacao_e_identificacao_de_e
specimes_vegetais>. Acesso em: 18 abr. 2022.
 Disponível em:
<https://alegre.ifes.edu.br/images/stories/Arquivos/Laboratorios/laboratorio_botanica/Cartilha_colec
ao_macroalgas.pdf>. Acesso em: 18 abr. 2022.
 Disponível em:
<https://educapes.capes.gov.br/bitstream/capes/431605/2/Livro_Cien.%20%20Biologicas_Morfologia
[1]
[2]
[3]
[4]
[5]
10/11/2022 22:28 UNINTER
https://univirtus.uninter.com/ava/web/roa/ 24/24
%20e%20Taxonomia%20de%20Criptogamas.PDF>. Acesso em: 18 abr. 2022.