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Mikaelle Teixeira Mendes – MED 33 Exame Parasitológico De Fezes ® FASE PRÉ-ANALÍTICA: 1. Solicitação de exame: Indicar método(s) a ser realizado Indicar parasita(s) a ser pesquisado 2. Coleta da amostra/orientações; procedimento para coleta; número de amostras; uso de conservantes, etc 3. Transporte da amostra para o laboratório Envio imediato x armazenamento geladeira Coleta no laboratório ǃ OBS: Se o paciente estiver em uso de antibióticos e outros medicamentos podem interferir no resultado (falso-negativo) ǃ OBS: O uso de contraste também diminui o numero de protozoários (por semanas). ´ Exame macroscópico: verificar a consistência, odor, presença de elementos anormais (muco, pus ou sangue) e de vermes adultos ou parte deles. ´ Exame microscópico: pesquisar e visualizar as formas parasitárias. Consistência formada (cistos) e diarreica (trofozoítas) ü EXAME DIRETO SEM COLORAÇÃO: Pesquisa de trofozoítos, cistos de protozoários, ovos e larvas de helmintos. Amostra recentemente colhida, fezes líquidas, amostra de aspirado duodenal – exame até 30 min após coleta. ü EXAME DIRETO COM COLORAÇÃO: com lugol – melhor definição da estrutura nuclear dos cistos ü SEDIMENTAÇÃO ESPONTÂNEA: O Método de Hoffman, Pons e Janer ou Lutz ou método de sedimentação espontânea é um tipo de exame parasitológico de fezes. Consiste basicamente na mistura das fezes com água, onde será filtrada por uma gaze cirúrgica e deixado em repouso, formando uma consistente sedimentação dos restos fecais ao fundo do cálice. Essa sedimentação é inserida em lâmina, feito um esfregaço e observado em microscópio. Este método detecta a presença de ovos nas fezes, e após coloração com lugol é possível verificar a presença de cistos de protozoários e larvas de helmintos. ROTINA DO EPF. ü SEDIMENTAÇÃO POR CENTRIFUGAÇÃO: Método de Blagg e cols. ou MIFc é indicado na pesquisa de larvas, ovos de helmintos e cistos de protozoários. A mistura de fezes e solução conservante é filtrada, misturada com éter sulfúrico e submetida a centrifugação. O exame microscópico do sedimento obtido, corado com lugol, permite a observação de cistos, ovos e larvas. ROTINA DO EPF. O método de Ritchie, se fundamenta na centrífugo-sedimentação de cistos e oocistos de protozoários em sistema formalina-éter ou formalina-acetato de etila. ü FLUTUAÇÃO ESPONTÂNEA: Pelo método de Willis, é utilizado o princípio da flutuação (levitação), utilizando soluções de densidade elevada (NaCl p.ex.); com isso, os oocistos e os ovos, de densidade menor que a solução, tendem a flutuar. Usada para visualização ovos de ancilostomídeos e cistos de protozoários. ü CENTRÍFUGO-FLUTUAÇÃO: Método de Faust e cols é um exame parasitológico de fezes, que consiste na centrífugo-flutuação em sulfato de zinco. As fezes são homogeneizadas em água filtrada, e centrifugadas até a solução tornar-se clara. Após isto, ressuspende-se a solução com sulfato de zinco a 33%, densidade de 1,18 g-ml. Centrifuga-se novamente. Os cistos e ovos leves de helmintos estarão presentes na película superficial, que pode ser colhida com alça de platina e pode ser confeccionada uma lâmina, tratada com lugol, para observação ao microscópio. ü MIGRAÇÃO ATIVA DE LARVAS: Método de Baermann e Moraes ou Rugai é um método que detecta larvas vivas, através de hidrotropismo e termotropismo positivo. Usualmente utilizado para detectar principalmente larvas de Strongyloides stercoralis, podendo observar larvas de ancilostomídeos. Para diferenciar as larvas pode-se utilizar coloração pelo lugol. “Bonequinha de pano”. ü CONCENTRAÇÃO DE OVOS ATRAVÉS DE FILTRAÇÃO DAS FEZES EM TELA METÁLICA OU DE NÁILON: único quantitativo Método de Katz-Katz ou Kato permite identificação e a quantificação por grama de fezes das infestações por alguns helmintos (Ascaris lumbricoides, Necator americanus, Schistosoma mansoni, Trichuris trichura, Taenia sp, Enterobios vermiculares e Strongyloides stercoralis). Cistos de protozoários podem não ser identificados por este método. A sua execução pode ser inviável em fezes diarreicas. ü MÉTODO DE GRAHAM: método da fita adesiva Utilizado na pesquisa de ovos de E. vermicularis. 1. Com auxílio de um tubo de ensaio, fazer pressão com uma fita gomada transparente (parte colante) sobre o ânus e região perianal. 2. Colar a fita em lâmina e observar ao microscópio. Mikaelle Teixeira Mendes – MED 33 ® ROTINA DO EPF: As formas parasitárias têm peso e sobrevida diferentes, então, não há um método capaz de detectá-las todas ao mesmo tempo. Alguns métodos são mais abrangentes, como por exemplo a sedimentação espontânea e métodos de centrifugação, e outros são específicos para determinado parasito. Como, na maioria das vezes, o pedido médico não informa a suspeita clínica, um método geral é o mais utilizado.
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