Relatório de bioquímica - Sobre prática demonstrativa sobre Carboidratos

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UNIVERSIDADE FEDERAL DO VALE DO SÃO FRANCISCO 
 RELATÓRIO DA AULA PRÁTICA 
BIOQUÍMICA I 
PROF. DRAULIO COSTA 
 
 
Relatório 2. 
Aulas 1 e 2 práticas demonstrativas sobre carboidratos. 13 de maio de 2021. 
Germano Menezes, Helbert Gustavo, Igor Kauã, Isabela Holanda, Jayne Ellen, João Paulo N. 
I. de Brito. 
1. INTRODUÇÃO 
 Carboidratos são substancias compostas principalmente de carbono, hidrogênio e 
oxigênio. Os carboidratos são conhecidos, também, como glicídios ou açucares e são 
biomoléculas importantes que formam a base nutricional dos organismos não fotossintéticos. 
Eles são classificados como: monossacarídeos, que são açucares simples, sendo 
impossibilitados de se quebrar na digestão, pois são os menores glicídios; dissacarídeos, 
formados por dois monossacarídeos; oligossacarídeos, é a ligação de até 10 monossacarídeos; 
polissacarídeos, união demais de 10 monossacarídeos. (ALCÂNTARA, et al, 2015). 
 O amido é uma união de dois polissacarídeos, amilose e a amilopectina. Ele está presente 
em grande quantidade nas células vegetais, geralmente como um polissacarídeo de reserva, na 
formula de grânulos insolúveis. Os polissacarídeos que constituem o amido são homopolímeros 
constituídos por glucose. A amilose contém uma estrutura linear com unidades de glucose que 
ao serem ligadas a amilopectina apresenta uma cadeia ramificada com ligações glicosídicas. 
(ALCÂNTARA, et al, 2015). 
 A caracterização de carboidratos é um processo de importância na ciência, pois nos 
permite identificar a presença dele, assim como também o especificar. 
 O processo de hidrólise é responsável por quebrar macromoléculas importantes em 
nosso organismo, como no caso dos açucares, permitindo a formação de monossacarídeos como 
a glicose, que possui uma grande importância no processo de respiração celular. 
2. OBJTIVOS 
2.1 OBJETIVO GERAL DA AULA 1 
 Na primeira aula se teve como objetivos demonstrar a extração e caracterização do 
amido de batata, identificar o amido como carboidrato e, por fim, evidenciar o amido através 
de reações de precipitação e coloração. 
2.2 OBJETIVO GERAL DA AULA 2 
 Demonstrar a hidrólise do amido, verificar os diferentes tipos de catálise: por ação de 
ácido e enzima específica, e verificar através de reações específicas o desaparecimento do 
amido e o aparecimento de açúcares redutores durante o curso da hidrólise. Além disso, o 
objetivo também foi elaborar curvas de tempo, tanto para a hidrólise ácida como enzimática, 
por meio de dosagem de açúcares redutores. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
3. PARTE EXPERIMENTAL E MATERIAIS UTILIZADOS 
3.1 VIDRARIAS E EQUIPAMENTOS 
 As vidrarias são muito importantes, pois elas facilitam a vida dos pesquisadores. Elas 
são instrumentos que podem ser fabricados em vidro cristal ou vidro temperado ou plástico. Os 
equipamentos são usados para adotar medidas de substâncias e analisar reações químicas, 
(MILOS, 2019). 
3.1.1 Béquer 
 É um recipiente muito utilizado em laboratório, são usados em grande parte, para formar 
reações de soluções, dissolver substâncias sólidas, efetuar reações de precipitação. O mais 
comumente encontrado em laboratórios são os béqueres feitos de vidro borisilicato, pois estes 
são mais resistentes ao calor, (MARTINEZ, s/d). 
Figura 1 – Béquer. 
 
Fonte: https://www.dsyslab.com.br/ s/d. 
3.1.2 Funil vidro 
 O funil no laboratório é utilizado para realizar filtração e fazer transferências de líquidos, 
ele pode ser acompanhado com o papel filtro. Existem dois tipos de funil, o liso e o raiado, 
(LABORQUIMI, s/d). 
 
 
 
 
https://www.dsyslab.com.br/
Figura 2 – Funil de vidro. 
 
Fonte: www.infoescola.com, 2016. 
 
3.1.3 Tubos de ensaio 
 Recipientes onde ocorrem reações e análises. Pode também ser utilizado para coleta de 
amostras em pequena quantidade, (QUEVEDO,2016). 
Figura 3 – Tubo de ensaio. 
 
Fonte: www.infoescola.com, 2016. 
 
3.1.4 Suporte para tubos de ensaio 
 Esse suporte tem a finalidade de servir alocar os tubos de ensaio, assim evitando dos 
mesmo durante a sua utilização, (QUEVEDO,2016). 
 
 
 
http://www.infoescola.com/
http://www.infoescola.com/
 
Figura 4 – Estante de tubos de ensaio. 
 
Fonte: www.infoescola.com, 2016. 
 
3.1.5 Pipeta 
 A pipeta é utilizada para medir e transferir soluções e líquidos. Existem diversas, porém, 
as duas mais comuns são a volumétrica e a gradual, (QUEVEDO,2016). 
Figura 5 – pipeta graduada. 
 
Fonte: www.infoescola.com, 2016. 
 
3.1.6 Aquecedor magnético 
 O aquecedor magnético é utilizado para aquecer e agitar soluções, através da utilização 
de “peixinho” dentro do recipiente que contém a solução a ser agitada, através de campo 
magnético que centraliza o peixinho no fundo do recipiente, o mesmo realiza movimentos 
circulares para agitam e uniformizam a solução, (QUEVEDO,2016). 
http://www.infoescola.com/
http://www.infoescola.com/
Figura 6 – Aquecedor magnético. 
 
Fonte: www.infoescola.com, 2016. 
 
3.1.7 Espectrofotômetro 
 O espectrofotômetro, é um aparelho que tem a finalidade de medir o quanto uma 
substância química absorve a luz, medindo a sua intensidade, (KASVI, 2018). 
Figura 7 – Espectrofotômetro. 
 
Fonte: www.lojabunker.com.br, s/d. 
 
3.1.8 Banho maria 
 O banho maria possui a função de aquecimento de se soluções em temperaturas 
adequadas par o experimento que será realizado. 
 
 
 
http://www.infoescola.com/
http://www.lojabunker.com.br/
Figura 8 – Aparelho de laboratório, para o banho maria. 
 
Fonte: www.prolab.com.br, s/d. 
 
3.2 EXPERIMENTOS REALIZADOS EM AULA 
 Os experimentos foram feitos de forma remota, divididos em duas partes, extração e 
caracterização do amido, e hidrólise ácida e enzimática do amido. 
3.2.1 Extração e caracterização do amido 
3.2.1.1 Reagentes e solventes utilizados 
• Água destilada; 
• Água quente; 
• Solução de amido (obtido pela batata); 
• Solução de α-naftal; 
• Ácido sulfúrico concentrado. 
3.2.1.2 Extração do amido 
 O procedimento realizado inicialmente foi o de extração do amido. Para isso, foi 
utilizada uma amostra de batata, que é uma fonte rica em amido e ao ser raspada, ocorre os 
rompimentos das células que a compõem e dentro dessas células há presença de amiloplastos, 
onde estão contidos os grânulos de amido. Com o rompimento das células os amiloplastos são 
liberados para o meio, (BIOQUÍMICA PRÁTICA UFPR, 2020). 
https://www.youtube.com/channel/UCxHsIoEHNr3uZ0gcSDRgQwA
 Em seguida, pegou-se um pedaço da batata e raspou para dentro de um béquer. Após 
isso, foi adicionado aproximadamente 50 mL de água destilada no béquer e o a agitou bastante 
com o auxílio de um bastão de vidro (isso para liberar os grânulos de amido que estão nas 
células da batata). 
Figura 9 – Extração do amido. 
 
Fonte: www.youtube.com. 2020. 
 A etapa seguinte foi a filtração do material obtido. Para isso foram utilizados um funil 
e uma gaze (serviu como papel filtro), que teve como objetivo retirar a parte sólida mais densa 
da solução. Na solução restante ficaram os grânulos de amido insolúvel em água fria. Então, foi 
deixado à solução por 10 minutos em repouso para que esses grânulos decantem, para, assim, 
facilitar a retirada do sobrenadante com o auxílio de outro béquer, ficando somente os grânulos 
de amido. 
Figura 10 – Filtração do material obtido. 
 
Fonte: www.youtube.com. 2020. 
 
http://www.youtube.com/
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 Para transformar os grânulos insolúveis em solúveis, eles foram postos em um béquer 
de 100 mL, dilui-se eles em 50mL de água fria e 50mL de água quente, que, com a ajuda de 
uma pipeta, foram adicionados aos poucos sob agitação (constante) de um agitador magnético, 
que ali foi deixada por alguns minutos, atingindo uma tonalidade perolada. 
Figura 11 - Adição de água em agitação. 
 
Fonte: www.youtube.com. 2020. 
 
3.2.1.3 Reação de Molisch 
 Em um tubo de ensaio foi adicionado 2 mL da soluçãode amido, 3 gotas do reativo de 
Molisch e 2 mL de H2SO4 concentrado e adicionado pela borda do tubo, deixando o tubo 
descansando para ocorrer a reação. 
Figura 12 – Formação da reação de Molisch. 
 
Fonte: www.youtube.com. 2020. 
 
http://www.youtube.com/
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3.2.1.4 Reação de Lugol 
 Em um tubo de ensaio foi inserido 2 mL da solução de amido e 3 gotas da solução de 
Lugol (I2 + KI). E de forma imediata se obteve o resultado. Também foi realizado um 
aquecimento do tubo de ensaio no banho maria em uma temperatura de 100°C, e em seguida 
foi feito um resfriamento do tubo de ensaio com o auxílio de um béquer e uma piseta, até que 
se voltasse a temperatura ambiente. 
 
3.2.2 Precipitação de polissacarídeos em solução 
 Nos experimentos de precipitação do amido, foi usado 5 mL da solução de amido em 2 
tubos de ensaios, em um foi adicionado 5 mL de (NH4)2SH4 saturado e no outro adicionou 5 
mL de EtOH. Após agitar os tubos para homogeneizar as soluções, deixou-se em repouso por 
10 minutos. Em seguida, filtrou as duas soluções, que passaram pelo teste de Lugol, tanto a 
parte filtrada quanto a que retido no filtro. 
Figura 13 – Filtração das soluções. 
 
Fonte: www.youtube.com. 2020. 
 
3.2.3 Hidrólise ácido e enzimático do amido 
3.2.3.1 Reagentes e solventes utilizados 
• Solução de glucose; 
• Água Destilada; 
• Reativo de ácido 3,5-dinitrosalicílico (DNS); 
http://www.youtube.com/
• Solução de amido; 
• Solução de HCI concentrado; 
• Reativo de Lugol. 
 
3.2.3.2 Curva de titulação 
 Para realização desse procedimento foi utilizado soluções de glucose de concentração 
conhecida, submetidas ao método colorimétrico do DNS. 
Figura 14 – Curva de calibração. 
 
Fonte: www.youtube.com. 2020. 
 
 Após a realização da curva de calibração, determinou-se a absorbância no 
espectrofotômetro, que estava calibrado com um comprimento de onda de 540 nm. 
3.2.3.3 – Experimento da hidrólise 
 Consistiu em uma análise, onde procurou-se observar o comportamento das hidrólises 
ácida e enzimática do amido, quando reagem com o reativo de Lugol e com uma concentração 
de DNS, por um período de 20 minutos. 
 Foi realizado dois procedimentos simultâneos em banho e maria, um para hidrólise ácida 
e outro para a enzimática. Precisou utilizar, dois aparelhos de banho maria, com temperaturas 
de 37°C para o processo com enzimas e 100°C para os ácidos. Com antecedência foi posto por 
5 minutos, um tubo de ensaio com 5 mL de solução de amido a 1%, em ambos aparelhos. Isso 
aconteceu para que fosse possível a homogeneização da solução. 
http://www.youtube.com/
Figura 15 - Parte inicial do experimento de hidrólise. 
 
Fonte: www.youtube.com. 2020. 
 Em seguida, no tubo de ensaio aquecido a 37°C, adicionou-se 0,2 mL de saliva diluída 
em tampão de imidazol com o pH 7,2 (diluição 1:2), assim formando a hidrólise enzimática. E 
no tubo de ensaio com temperatura de 100°C, foi colocado 0,2 mL de HCl concentrado, 
formando a hidrólise ácida. 
Figura 16 – Coleta das alíquotas. 
 
Fonte: www.youtube.com. 2020. 
 Após a adição de HCL e uma leve agitação para homogeneização da substância, no seu 
respectivo tubo de ensaio, imediatamente foi retirado uma amostra de 0,2 mL para um outro 
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tubo de ensaio e futuramente no mesmo foi adicionado 3 gotas de Lugol (I2+KI), assim 
realizando o teste de Lugol. Posteriormente, foi retirado mais 0,2 mL da solução, que foi posta 
em um novo tubo de ensaio para que depois fosse adicionado 1 mL de DNS para a realização 
do teste. Deste modo, deu início ao tempo zero do experimento de hidrólise ácida. 
 Depois da adição da saliva diluída em tampão imidazol, foi feita uma leve agitação para 
homogeneização da solução, que em seguida teve uma retirada de uma alíquota de 0,2 mL para 
um novo tubo de ensaio que, mais tarde, teve um acréscimo de 3 gotas de Lugol (I2+KI) e assim 
foi realizado o teste de Lugol. Em seguida, foi retirada uma nova porção de 0,2 mL para um 
novo tubo de ensaio que, mais à frente, teve um adicionamento de 1 mL de DNS, então foi feito 
o seu respectivo teste. Desta forma, deu início ao tempo zero do experimento de hidrólise 
enzimática do amido. 
 Após o tempo de 5 minutos, o mesmo procedimento foi realizado novamente em novos 
tubos de ensaios, em ambos experimentos, que teve um processo contínuo, até o tempo de 20 
minutos, dando a conclusão dessa parte do experimento. 
Figura 17 – Coleta das amostras no tempo de 5 minutos. 
 
Fonte: www.youtube.com. 2020. 
 
 
 
 
 
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Figura 18 – Coleta das amostras no tempo 10 minutos. 
 
Fonte: www.youtube.com. 2020. 
 
Figura 19 – Coleta das amostras do tempo de 15 minutos. 
 
Fonte: www.youtube.com. 2020. 
 
 
 
 
 
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Figura 20 – Coleta das amostras do tempo 20 minutos. 
 
Fonte: www.youtube.com. 2020. 
 Em seguida, para saber a eficiência do teste de Lugol, tanto em relação a hidrólise ácida 
como a enzimática do amido, foi adicionado 10 mL de água em todos os tubos que se realizou 
o teste de Lugol, posteriormente foi feita uma leve agitação em todos os tubos, para 
homogeneização das soluções. Assim foi possível melhor observar a reação de Lugol. 
Figura 21 – Adição de água nos testes de Lugol. 
 
Fonte: www.youtube.com. 2020. 
 Também, foi realizado a ativação do DNS, que é necessário uma elevação da 
temperatura. Se adicionou 1,3 mL de água destilada aos tubos de ensaio dos testes do DNS, que 
em seguida foram colocados em banho maria por 5 minutos, em uma temperatura de 100°C. 
Depois do passar do tempo, esses respectivos tubos de ensaio foram retirados do banho maria 
http://www.youtube.com/
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e tiveram uma adição de 7,5 mL de água, que logo passaram pelo processo de 
espectrofotometria. 
Figura 22 - Ativação do DNS. 
 
Fonte: www.youtube.com. 2020. 
 
Figura 23 – Leitura da absorbância. 
 
Fonte: www.youtube.com. 2020. 
 
 
 
 
 
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4. RESULTADOS E DISCUSSÃO 
4.1 EXPERIMENTOS DA AULA 1 
4.1.1 Reação de Molisch. 
 O primeiro experimento realizado foi o da reação de Molisch. Ao concluir o 
experimento, percebe-se que entre o H2SO4 e a solução de amido foi formado uma substância 
de cor púrpura. A reação de Molisch é caracterizada pela capacidade de identificar os 
carboidratos pela adição de uma ácido forte. Quando um ácido forte entra em contato com um 
carboidrato em solução, há uma baixa no pH, fazendo com que as ligações dos polissacarídeos 
sofram hidrólise, que liberam os monossacarídeos e em seguidas são desidratados. Após esse 
processo é formado hidróxi – metil – furfural, que possui a capacidade de se condensar com o 
α-naftal, formando um reagente de Molisch, o qua,l ao entrar em contato com outro composto, 
revelará a presenta de carboidratos pela coloração violeta, (BIOQUÍMICA PRÁTICA 
UFPR,2020). Desse modo, conclui-se que nessa reação há presença de amido, pois essa 
característica permite perceber que a reação é positiva. 
Figura 24 – Reação de Molisch. 
 
Fonte: www.youtube.com. 2020. 
 
4.1.2 Reação de Lugol. 
 Já na segunda parte do experimento tivemos a reação de Lugol. Como resultado final, 
obtivemos uma solução de coloração azul escuro. O reativo de Lugol é uma substância 
composta por I2 + KI que permite identificar a presença especifica de amido em uma substância. 
Reagindo com a solução de amido (especificamente a parte do polissacarídeo amilose) que em 
http://www.youtube.com/
solução apresenta características helicoidal e na presença de 6 ou mais hélices permite que 
ocorra um alinhamento de mesmo plano das moléculas, ocorrendo por conta da compensação 
do iodo (I2). Imediatamente, a solução vai apresentar uma cor azul intensa, o que caracteriza a 
presença do amido, (BIOQUÍMICA PRÁTICA UFPR,2020). Portanto, é possível concluirque 
há presença de amido ou amilose. Logo após, o tubo de ensaio da reação de Lugol foi aquecido 
a 100ºC para um novo teste e o resultado mostrou que a solução perdeu a coloração azul intensa. 
Assim, conclui-se que o amido perdeu sua estrutura helicoidal e liberou as moléculas de iodo. 
Resfriando novamente o tubo, jogando água em temperatura ambiente, notou-se que o amido 
retomou sua estrutura helicoidal, capturando novamente as moléculas de iodo, voltando a ter 
coloração azul escura. 
Figura 25 – Reação de Lugol. 
 
Fonte: www.youtube.com. 2020. 
 
4.1.3 Precipitação das soluções. 
 Foram feitos dois testes para a precipitação do amido e em ambos ocorreu a precipitação. 
Posteriormente a filtração e a adição do reativo de Lugol, a solução dos tubos de ensaio, 
apresentava uma coloração alaranjada, o que caracteriza a não presença de amido em solução. 
Porém, quando se testou o reativo de Lugol no que foi retido pelos filtros, constatou a presença 
de amido em ambos. 
 
 
 
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Figura 26 – Reação de Lugol no material retido no filtro. 
 
Fonte: www.youtube.com. 2020. 
 
4.2 EXPERIMENTO DA AULA 2. 
4.2.1 Resultados da curva de calibração. 
 Processo utilizado durante o experimento para determinação de açucares redutores. E 
os valores encontrados foram expressos nos gráficos abaixo. 
Gráfico 1 –Absorbâncias encontradas. 
 
Fonte: Acervo pessoal, 2021. 
 
 
0
0,107
0,263
0,58
1,129
1,315
0
0,2
0,4
0,6
0,8
1
1,2
1,4
Tubo 1 Tubo 2 Tubo 3 Tubo 4 Tubo 5 Tubo 6
Absorbância
http://www.youtube.com/
Gráfico 2 - Curva de calibração. 
 
Fonte: www.youtube.com. 2020. 
 
4.2.2 Resultados dos processos de hidrólise. 
 Em relação ao reativo de Lugol, percebeu-se que, chegando ao final das etapas, pode-se 
observar que a medida em que o tempo de hidrólise foi passando, a coloração da reação do 
Lugol foi diminuindo, tanto para a hidrólise ácida quanto para a enzimática, revelando que no 
começo havia mais amido que no final. 
 Para descobrir o que acontece em relação à presença de açúcares redutores foi feito o 
teste do DNS. Os resultados mostraram que, conforme o tempo da hidrólise vai passando, as 
colorações das soluções vão se intensificando e a intensidade da reação do DNS vai 
aumentando, ou seja, aumenta a concentração de açúcares redutores na solução. 
 O gráfico abaixo representa os resultados obtidos, deixando claro que a intensidade da 
cor do Lugol diminui ao longo do tempo de reação em detrimento do aumento da intensidade 
da cor observado para a reação do DNS. 
 
 
 
 
 
http://www.youtube.com/
Gráfico 3 – Intensidade da hidrólise/tempo 
 
Fonte: www.youtube.com. 2020. 
 
4.2.3 Absorbância das soluções do DNS. 
 Através das absorbâncias encontradas pelas reações do DNS e pela equação da curva de 
calibração, foi possível encontrar a concentração de açucares redutores presentes. 
 
Gráfico 4 – Produção de açucares redutores. 
 
Fonte: www.youtube.com. 2020. 
 
 
http://www.youtube.com/
http://www.youtube.com/
5. CONCLUSÃO. 
 
 Foi possível concluir que, a partir do que se foi evidenciado durante as aulas, o amido 
possui características de dois polissacarídeos. O experimento com os fragmentos de batata 
misturados com água destilada e obtendo, por fim, uma solução opalescente (coloração da 
reação), foi de extrema importância para que pudesse ser observado a comprovação de que o 
amido é encontrado em grânulos nos vegetais. Também foi possível compreender formas de 
identificar os carboidratos, sendo eles de aspectos específicos para o amido, utilizando a reação 
de Lugol e, de forma geral, a reação de Molisch. Tais aspectos também foram importantes para 
a equipe ao observarmos os resultados das hidrólises ácidas e enzimáticas do amido, pois foi 
possível notar os comportamentos das reações com o passar do tempo e como isso pode afetá-
las. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
REFERÊNCIAS 
ALCÂNTARA, et al. Elaboração e utilização de um aplicativo como ferramenta no ensino de 
Bioquímica: carboidratos, lipídios, proteínas e ácidos nucleicos. Revista de Ensino de 
Bioquímica, v. 13, n. 3, p. 54-72, 2015. 
Aula #10 – Extração e Caracterização do Amido. BIOQUÍMICA PRÁTICA UFPR. 
Disponível em: https://www.youtube.com/watch?v=3uWhsz6NDUg. Acesso em: 13 de maio, 
2021. 
Aula #11 - Hidrólise Ácida e Enzimática do Amido. BIOQUÍMICA PRÁTICA UFPR. 
Disponível em: https://www.youtube.com/watch?v=qLu4h10mEdM&t=413s. Acesso em: 13 
de maio, 2021. 
MARTINEZ, Marina. Béquer. Disponível em: https://www.infoescola.com/materiais-de-
laboratorio/bequer/. Acesso em: 13 de maio, 2021. 
MILOS, Luan. Qual é a importância das vidrarias e reagentes em laboratório de 
biologia? Disponível em: 
https://brainly.com.br/tarefa/20790503#:~:text=As%20vidrarias%20s%C3%A3o%20muito%
20importantes,subst%C3%A2ncias%20e%20analisar%20rea%C3%A7%C3%B5es%20qu%C
3%ADmicas. Acesso em: 13 de maio, 2021. 
LAMBOQUI. Funil analítico. Disponível em: https://www.laborquimi.com.br/funil-
analitico#:~:text=O%20funil%20anal%C3%ADtico%20%C3%A9%20utilizado,como%20estr
iado%20o%20funil%20raiado. Acesso em: 13 de maio, 2021 
QUEVEDO, Renata Tomaz. Materiais e equipamentos de laboratório. Disponível em: 
https://www.infoescola.com/quimica/material-de-laboratorio/. Acesso em: 13 de maio, 2021. 
KASVI. Espectrofotometria: Análise da concentração de soluções. Disponível em: 
https://kasvi.com.br/espectrofotometria-analise-concentracao-solucoes/. Acesso em: 13 de 
maio, 2021. 
 
 
 
 
https://www.youtube.com/watch?v=3uWhsz6NDUg
https://www.infoescola.com/materiais-de-laboratorio/bequer/
https://www.infoescola.com/materiais-de-laboratorio/bequer/
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https://brainly.com.br/tarefa/20790503#:~:text=As%20vidrarias%20s%C3%A3o%20muito%20importantes,subst%C3%A2ncias%20e%20analisar%20rea%C3%A7%C3%B5es%20qu%C3%ADmicas
https://brainly.com.br/tarefa/20790503#:~:text=As%20vidrarias%20s%C3%A3o%20muito%20importantes,subst%C3%A2ncias%20e%20analisar%20rea%C3%A7%C3%B5es%20qu%C3%ADmicas
https://www.laborquimi.com.br/funil-analitico#:~:text=O%20funil%20anal%C3%ADtico%20%C3%A9%20utilizado,como%20estriado%20o%20funil%20raiado
https://www.laborquimi.com.br/funil-analitico#:~:text=O%20funil%20anal%C3%ADtico%20%C3%A9%20utilizado,como%20estriado%20o%20funil%20raiado
https://www.laborquimi.com.br/funil-analitico#:~:text=O%20funil%20anal%C3%ADtico%20%C3%A9%20utilizado,como%20estriado%20o%20funil%20raiado
https://www.infoescola.com/quimica/material-de-laboratorio/
https://kasvi.com.br/espectrofotometria-analise-concentracao-solucoes/