Resumo - BIOCARRAPATICIDOGRAMA

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Biocarrapaticidogram�
1. COLHEITA DAS PARTENÓGINAS DE Rhipicephalus (Boophilus)
microplus
● Colher no mínimo 200 partenóginas (fêmeas adultas de
carrapatos): pela facilidade de manuseio e
suscetibilidade à ação dos acaricidas, é o instar mais
rotineiramente usado nos testes.
● As partenóginas devem ser colhidas de preferência de
vários animais, no mínimo 21 dias após a última
aplicação de acaricida.
● O transporte dos ixodídeos deve ser feito em envelopes
de papel ou caixas de papelão, livres de resíduos
químicos. Não transportar as fêmeas em sacos
plásticos ou em vidros.
2. SELEÇÃO DAS PARTENÓGINAS
● Colocar as fêmeas em uma bandeja: avaliar o vigor
físico, ou seja, selecionar somente aquelas que tiverem
boa motilidade, boa repleção e sem anomalias.
Desprezar as partenóginas avermelhadas e liberar o
hipóstomo se ele estiver cheio de cemento.
3. FORMAÇÃO DE GRUPOS EXPERIMENTAIS
● Os grupos devem ser formados a partir das maiores
partenóginas para as menores.
● Pesar 10 partenóginas agrupadas pela média(colocá-la
em copos plásticos, de café,descartáveis).
● Para cada grupo usar duas repetições (10) e um controle
(10).
● As fêmeas devem ser afixadas em fita adesiva e
acondicionadas em placas de Petri.
4. DILUIÇÃO DOS PRODUTOS
● Diluir os produtos, a serem testados, de acordo com as
recomendações dos fabricantes, no momento de
realizar o teste.
● Preparar no mínimo 500ml se solução proporcional de
cada produto.
● Os recipientes e as placas de Petri devem ser os
mesmos, ou novos, para cada teste e para cada grupo.
5. BIOCARRAPATICIDOGRAMA (TESTE)
● O teste deve ser realizado no máximo 48 horas após a
colheita das partenóginas.
● Imergir os grupos de partenóginas nas soluções
medicamentosas e o grupo testemunho em água
comum, ou seja, na mesma água que foi usada para
diluir os produtos, durante cinco minutos (utilizar
preferencialmente copos de água descartável).
● Decorrido este tempo, recolher os grupos de
partenóginas e retirar o excesso de medicamento com
papel filtro.
● Fixar os carrapatos em placas de Petri, utilizando-se,
preferencialmente, fita de dupla face, de acordo com os
tratamentos.
● Manter as placas, com as fêmeas, em estufa BOD, a
27ºC e com 90%UR.
● Examinar diariamente as placas de Petri, anotando as
datas de cada fase (pré-postura, postura, pré-eclosão e
eclosão dos ovos). As partenóginas que morrerem
deverão ser relacionadas.
● Após duas semanas remover as posturas, pesar e
transferir para seringas plásticas com algodão na
ponta.
● Manter as seringas, com os ovos, na estufa (BOD), por
mais 10 dias para avaliação dos percentuais de
eclodibilidade.
● Dos grupos controles podem ser utilizadas
amostragens para determinação dos índices de
eclosão.
6. PORCENTAGENS DE ECLOSÃO
● O cálculo do percentual de eclosão é realizado por
meio de contagens de cascas e ovos oriundos de todas
as partenóginas, tanto dos grupos tratados como dos
testemunhos (não tratados).
7. EFEITOS DOS TRATAMENTOS NAS REDUÇÕES DE POSTURA E
DE ECLOSÃO
● Estes parâmetros ixodológicos são avaliados,
utilizando-se as seguintes equações:
% 𝑟𝑒𝑑𝑢çã𝑜 𝑑𝑒 𝑜𝑣𝑖𝑝𝑜𝑠𝑖çã𝑜 𝑡𝑜𝑡𝑎𝑙 = 𝑃𝑒𝑠𝑜 𝑚é𝑑𝑖𝑜 𝑑𝑎 𝑚𝑎𝑠𝑠𝑎 𝑑𝑒 𝑜𝑣𝑜𝑠 𝑑𝑜 𝑔𝑟𝑢𝑝𝑜 𝑑𝑒 𝑐𝑜𝑛𝑡𝑟𝑜𝑙𝑒 –𝑃𝑒𝑠𝑜 𝑚é𝑑𝑖𝑜 𝑑𝑎 𝑚𝑎𝑠𝑠𝑎 𝑑𝑒 𝑜𝑣𝑜𝑠 𝑑𝑜 𝑔𝑟𝑢𝑝𝑜 𝑡𝑟𝑎𝑡𝑎𝑡𝑜 𝑃𝑒𝑠𝑜 𝑚é𝑑𝑖𝑜 𝑑𝑎 𝑚𝑎𝑠𝑠𝑎 𝑑𝑒 𝑜𝑣𝑜𝑠 𝑑𝑜 𝑔𝑟𝑢𝑝𝑜 𝑐𝑜𝑛𝑡𝑟𝑜𝑙𝑒 𝑥100
% 𝑟𝑒𝑑𝑢çã𝑜 𝑑𝑒 𝑒𝑐𝑙𝑜𝑠ã𝑜 = 𝑀é𝑑𝑖𝑎 𝑑𝑜 % 𝑑𝑎 𝑒𝑐𝑙𝑜𝑑𝑖𝑏𝑖𝑙𝑖𝑑𝑎𝑑𝑒 𝑑𝑜 𝑔𝑟𝑢𝑝𝑜 𝑐𝑜𝑛𝑡𝑟𝑜𝑙𝑒−𝑀é𝑑𝑖𝑎 𝑑𝑜 % 𝑑𝑒 𝑒𝑐𝑙𝑜𝑑𝑖𝑏𝑖𝑙𝑖𝑑𝑎𝑑𝑒 𝑑𝑜 𝑔𝑟𝑢𝑝𝑜 𝑡𝑟𝑎𝑡𝑎𝑑𝑜𝑀é𝑑𝑖𝑎 𝑑𝑒 % 𝑑𝑒 𝑒𝑐𝑙𝑜𝑑𝑖𝑏𝑖𝑙𝑖𝑑𝑎𝑑𝑒 𝑑𝑜 𝑔𝑟𝑢𝑝𝑜 𝑐𝑜𝑛𝑡𝑟𝑜𝑙𝑒 𝑥100
8. ESTIMATIVA DE REPRODUÇÃO (EFICÁCIA REPRODUTIVA) E
PERCENTAGENS DE CONTROLE (EFICÁCIA).
● Para avaliação destes parâmetros adota-se a
metodologia preconizada por DRUMMOND et al. (1973).
8.1 Estimativa de Reprodução (ER) = Peso dos ovos (g)/
Peso das fêmeas (g) x % Eclosão x 20000¹
8.2 % 𝑑𝑒 𝐶𝑜𝑛𝑡𝑟𝑜𝑙𝑒 𝑜𝑢 𝑑𝑒 𝐸𝑓𝑖𝑐á𝑐𝑖𝑎 = 𝐸𝑅 𝑐𝑜𝑛𝑡𝑟𝑜𝑙𝑒 –𝐸𝑅 𝑡𝑟𝑎𝑡𝑎𝑑𝑜𝐸𝑅 𝑐𝑜𝑛𝑡𝑟𝑜𝑙𝑒 𝑥 100
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¹20.000 é uma constante e corresponde à estimativa do
número de larvas oriundas de um grama de ovos.