1 - RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS EAD 2021 - Bioquímica Humana -PRONTO

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RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS - EAD 
 
AULA ____ 
DATA: 
 
______/______/______ 
VERSÃO:01 
 
 
RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS: BIOQUIMICA HUMANA – Aula 1 
 
DADOS DO(A) ALUNO(A): 
 
NOME: Tatiane de Sousa Holanda MATRÍCULA: 04107597 
CURSO: Farmácia POLO: 
PROFESSOR(A) ORIENTADOR(A): 
 
ORIENTAÇÕES GERAIS: 
 
• O relatório deve ser elaborado individualmente e deve ser escrito de forma clara e 
• concisa; 
• O relatório deve conter apenas 01 (uma) lauda por tema; 
• Fonte: Arial ou Times New Roman (Normal e Justificado); 
• Tamanho: 12; 
Margens: Superior 3 cm; Inferior: 2 cm; Esquerda: 3 cm; Direita: 2 cm; 
• Espaçamento entre linhas: simples; 
• Título: Arial ou Times New Roman (Negrito e Centralizado). 
 
 
TEMA DE AULA: ATIVIDADE CATALÍTICA DA AMILASE SALIVAR 
 
RELATÓRIO: 
 
1. Resumo sobre o tema abordado em aula. 
 
Na aula prática foi destacado a atividade catalítica da amilase salivar, como sabemos a 
amilase é uma enzima produzida na saliva, nas glândulas salivares. Esta enzima serve para 
degradar um carboidrato muito conhecido como amido de milho, um polissacarídeo de 
reserva das plantas. A ptialina como é conhecida tecnicamente a amilase salivar e produzida 
nas glândulas salivares e inicia o seu processo de degradação dos carboidratos. Na aula 
vimos como realizar identificação catalítica do amido, através da técnica enzimática e 
química. Será realizado uma hidrólise química junto ao ácido clorídrico e uma hidrólise 
enzimática que será realizado com a amilase salivar. Os ácidos têm a capacidade de 
degradar as ligações glicolítica que formam o amido e fazer essa quebra que também e 
realizada pela ptialina ou amilase salivar. 
 
2. Materiais utilizados. 
 
Ácido clorídrico 
Amilase salivar 
Lugol 
Solução de Amido 
 
 
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VERSÃO:01 
Banho Maria 
Banho de gelo 
Tubo 
Becker 
Pipetas de vidro 
EPI 
 
3. Responda as Perguntas: 
 
A) Qual a composição do amido? 
“O amido é considerado um polímero natural, pois ele é um polissacarídeo, ou seja, é um 
carboidrato formado pela união sucessiva de várias moléculas de α-glicose. Na realidade, 
ele é formado por dois polissacarídeos, amilose e amilopectina, que são constituídos de 
moléculas de α-glicose, mas são ligeiramente diferentes." 
 
https://brasilescola.uol.com.br/quimica/amido.htm 
 
B) Comente os resultados obtidos nos tubos 1, 2 e 3 no procedimento da hidrólise química 
do amido. 
O tubo 1 depois que foi retirado do banho de gelo e foi adicionado o lugol, o líquido ficou com 
uma coloração esverdeada depois da reação do iodo com o amido , após alguns minutos 
ocorreu uma reação, houver degradação do amido. 
 
O tubo 2 depois que foi retirado do banho maria de 10 minutos e resfriado no banho de gelo 
e foi adicionado o lugol, o líquido ficou com a coloração azul bem proeminente, fica evidente 
de que não houve degradação no tubo 2, isso indica que a temperatura influencia na 
atividade enzimática e na reação química. 
 
O tubo 3 depois que foi retirado do banho maria de 20 minutos e resfriado no banho de gelo 
e foi adicionado o lugol, o líquido ficou com a coloração azul, não houve degradação do 
amido. 
 
C) Qual o objetivo do uso de HCl, aquecimento e resfriamento no procedimento da hidrólise 
química do amido? 
O objetivo do ácido clorídrico no método químico e favorecer a hidrólise do amindo. 
 
 
D) Descreva a sequência de transformações operadas pela amilase na molécula da amilose. 
A amilase é liberada na mastigação, essa enzima está presente na saliva. Esta enzima 
catalisará a hidrólise nas ligações glicosídica (a1- 4) da amilose, resultando em maltose, 
glicose e amilopectina; e das ligações ( a1- 4) da amilopectina, resultando em dextrina , 
mistura de polissacarídeo. 
 
 
 
 
 
 
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VERSÃO:01 
E) Comente os resultados obtidos nos tubos 1, 2 e 3 no procedimento da hidrólise enzimática 
do amido. 
O tubo 1 ao ser adicionado o lugol, não houve hidrólise, pois ainda há a presença do amido, 
o líquido ficou esverdeado, após alguns minutos houve degradação do amido. O resfriamento 
teve influência no processo enzimático. 
 
O tubo 2 após ser adicionado o lugol, a solução ficou azul escuro, indicando que não houve 
hidrólise, porém percebesse que a temperatura de 10 minutos influência na coloração 
quando comparada com o 1 tubo que foi submetido apenas ao banho de gelo. 
 
O tubo 3 após ser adicionado o lugol, a solução ficou bem azul escuro, não ocorreu a 
degradação, no entanto observou se que a temperatura de 20 minutos influência na cor da 
solução do processo enzimático. 
 
E) Explique a relação entre a atividade da amilase salivar, o tempo de incubação da enzima 
com o amido e a variedade de cores observada no procedimento da hidrólise enzimática 
do amido. 
Foi possível verificar que a solução do iodo adicionado ao amido, reagem formando uma cor 
esverdeada e azul escuro. Portanto o tempo de incubação temperatura influenciam na 
hidrólise. 
 
4. Conclusão sobre a atividade catalítica da amilase salivar. 
De acordo com explicação da aula prática observou se que os tubos a1 tanto da amostra 
química quanto da enzimática submetido apenas ao resfriamento, concluiu que após alguns 
minutos houve hidrólise, a degradação do amido. Nos tubos 2 e 3, verificou se que a 
temperatura influenciou na coloração da solução, no entanto não houve degradação do 
amido. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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TEMA DE AULA: REAÇÃO DE SELIWANOFF (REAÇÃO PARA DISTINÇÃO ENTRE 
ALDOSES E CETOSES) 
 
 
RELATÓRIO: 
 
1. Resumo sobre o tema abordado em aula. 
Na aula a professora explicou sobre aldose e cetose, que são grupos identificados como 
carboidratos. A Aldose faz parte do grupo de carboidratos simples e a cetose são 
monossacarídeos que contêm o grupo cetona. Essa reação é chamada de Seliwanoff, e 
acontece porque as cetoses reagem com ácidos fortes, como é o caso da reação estudada. 
Além disso, foi utilizado ácido clorídrico, e o reativo Seliwanoff durante a reação. Esses dois 
compostos ao reagirem produzem furfural. 
Na aula foi realizado uma diferenciação entre aldose e citose. Foi utilizado a glicose que é 
uma aldose, um monossacarídeo simples. 
A mistura que foi feita era pra identificar se a frutose é ou não a cetose, se contem ou não o 
grupo cetona. Essa reação após a colocação do resorcinol que está no reativo do Seliwanoff 
vai ser colocado em banho maria de 70 graus para que aconteça a reação após mais ou 
menos 5 minutos vamos ter o resultado o produto que é formado na reação entre o furfural 
e resorcinol que está no reativo de Seliwanof vai ser vermelho. Conseguimos perceber a 
coloração através desta mudança de cor. Esse composto que é formado não tem uma 
composição definida e nem um nome definido, mas é visualmente percebido pela coloração 
vermelha. 
 
2. Materiais utilizados. 
 
Um tubo para frutose 
Um tubo para glicose 
Um tubo para água 
Banho maria (em torno de 70 graus) 
Becker 
Pera de Borracha 
Pipeta 
Solução de HCl 
Glicose 1% 
Frutose 1% 
Reativo de Seliwanoff 
 
Tubo glicose: Misturas dos reagentes. 
VERSÃO:01 
 
Tubo para glicose 
 
Adicionar 1ml de glicose 
Adicionar 1,5 ml de ácido clorídrico HCL 
Homogeneizar 
Adicionar 0,5 ml do reativo de Seliwanoff 
Agitar os tubos e levar ao banho maria até visualizar o resultado 
 
 
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Observar a coloração 
Após 2 minutos em banho maria o tubo da glicose permaneceu inalterado. Confirmando 
que ela não é uma cetose. Não tem produção do furfural e nem reação com o resorcinol. 
 
Tubo para frutose 
 
Adicionar 1 ml de frutose 
Adicionar 1,5 ml de ácido clorídrico HCL 
Homogeneizar 
Adicionar 0,5 ml do reativo de Seliwanoff 
Agitaros tubos e levar para o banho maria até visualizar o resultado 
Observar a coloração 
Após 2 minutos em banho maria o tubo da frutose ficou vermelho. Houve alteração na cor. 
Indica reação do resorcinol com o furfural. Indica que ela é uma cetose. 
 
Tubo para água 
 
Adicionar 1 ml de água 
Adicionar 1,5 ml de ácido clorídrico HCL 
Homogeneizar 
Adicionar 0,5 ml do reativo de Seliwanoff 
Agitar os tubos e levar para o banho maria até visualizar o resultado 
Observar a coloração 
Após 2 minutos em banho maria o tubo da água permaneceu inalterado. Confirmando que 
ela não é uma cetose. Não tem produção do furfural e nem reação com o resorcinol. 
 
 
 
3. Responda as Perguntas: 
 
A) Explique o princípio bioquímico do teste de Seliwanoff. 
O teste de Seliwanoff é um teste químico que permite distinguir aldoses de cetoses. Se um 
açúcar contiver um grupo cetona, é uma cetose; se, por outro lado, contiver um grupo 
aldeído, é uma aldose. Este teste baseia-se no princípio de que, quando aquecidas, as 
cetoses sofrem desidratação muito mais rapidamente que as aldoses. 
Este teste fora proposto por Theodor Seliwanoff, daí ser assim designado. Quando o 
reagente é adicionado a uma solução contendo uma cetose, a cor da solução muda para 
vermelho (teste positivo). Quando adicionado a uma solução contendo uma aldose, a cor 
muda mais lentamente para rosa. 
A frutose (uma cetose) é um açúcar que dá teste positivo. A sacarose também dá teste 
positivo, pois é um dissacarídeo composto por glucose (uma aldose) e frutose 
 
 
 
B) Comente os resultados obtidos nos 3 tubos utilizados no procedimento, correlacionando 
com a presença ou não de aldoses e cetoses. 
O tubo da glicose permaneceu inalterado, ela não é cetose e não tem reação com o resorcinol 
e não têm produção do furfural. O tubo da frutose houve mudança bem proeminente para a 
 
 
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cor vermelha, indicando a reação do resorcinol com furfural. O tubo da água permanece 
inalterado. 
 
C) Explique qual o objetivo de utilizar um tubo apenas com água destilada. 
O tubo de água serve de controle negativo, no teste permaneceu inalterado. 
 
D) Qual a função do ácido clorídrico (HCl) e da fervura aplicados no teste de Seliwanoff? 
Aldoses e cetoses são grupos que são idênticos dentro dos carboidratos, aldoses são grupos 
de carboidratos simples enquanto as cetoses são monossacarídeos que contêm cetona. 
Essa reação e conhecida por Seliwanoff , essa reação se dá porque as cetoses reagem com 
ácidos fortes. Utilizaremos o ácido clorídrico, ao reagir com esses ácidos fortes, esse 
composto produz o furfural. O furfural reage com o resorcinol, o resorcinol por sua vez é um 
composto derivado da uréia que está presente no reativo de Seliwanoff. 
 
4. Conclusão sobre a identificação de aldoses e cetoses utilizando o teste de 
Seliwanoff. 
Foi concluído que a frutose é uma cetose. Na reação ocorre a produção do furfural e também 
a reação do resorcinol dentro reativo de Seliwanoff ocorre a mudança para a cor vermelha 
no tubo da frutose. No tubo da glicose e da água não houve alteração. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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TEMA DE AULA: PRECIPITAÇÃO POR ÁCIDOS FORTES E METAIS PESADOS 
 
 
RELATÓRIO: 
 
1. Resumo sobre o tema abordado em aula. 
 
Proteínas são biomoléculas muito importantes e estruturais, tem função catalíticas, entre 
outros. Vamos fazer uma técnica que vai identificar que essas proteínas por terem 
compostos carbanimicos, aquelas estruturas químicas. Elas podem reagir e podem 
precipitar com algumas substancias. Entre elas a principal fonte de precipitação de proteínas 
são ácidos fortes. Vamos utilizar hoje o ácido tricloroacético 20%, mas poderia ser utilizado 
também o ácido sulfúrico entre outros. Podemos também utilizar substancias como metais 
pesados como cobre, chumbo, mercúrio, para fazer essa precipitação, hoje vamos usar o 
acetato de chumbo a 10% para realizar a precipitação. E como matéria prima a ovo 
albumina 10%. A precipitação é imediata. 
 
 
2. Materiais utilizados. 
 
Reagentes 
 
Ácido tricloroacético 20% 
Acetato de chumbo 10% 
Ovoalbumin a 10% 
 
Equipamentos 
 
Pera de borracha 
Pipeta 
Becker 
 
3. Responda as Perguntas: 
 
A) Comente os resultados obtidos no procedimento da precipitação da ovoalbumina 
com ácido forte e metal pesado. 
Se forma uma liquido leitoso branco indicando a precipitação e formação de alguns grumos 
da proteína. Antes conseguimos visualizar o concentrado da solução e apos a precipitação 
ele fica todo turvo indicando que houve a precipitação da proteína pelo ácido. Verificamos 
que também teve uma precipitação. Porem conseguimos ter mais visibilidade e perceber que 
no tubo do ácido teve uma precipitação mais intensa, pois o ácido forte tem a capacidade de 
quebrar as ligações peptídicas da proteína mais do que o chumbo. Temos um material mais 
leitoso no ácido do que no metal pesado. De toda forma também temos essa percepção em 
relação a solução inicial e as soluções precipitadas. 
 
 
 
 
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B) Qual a fundamentação teórica que explica o processo de precipitação das proteínas 
com ácidos fortes e metais pesados? 
 
Com essa prática é possível perceber que além da modificação do ponto elétrico, do meio 
de cargas iônicas, de tudo isso que a gente tem nas proteínas um ponto que é importante 
para a precipitação alguns tipos de elementos químicos que conseguem clivar, quebrar as 
estruturas da proteína fazendo este processo de precipitação que a gente também pode 
fazer com o ácido e com o metal pesado. 
 
C) O que ocorreu com a ovoalbumina para que ela formasse um precipitado insolúvel 
neste experimento? 
 
É possível perceber que além da modificação do ponto elétrico, do meio de cargas iônicas, 
de tudo isso que a gente tem nas proteínas um ponto que +e importante para a precipitação 
são alguns tipos de elementos químicos que conseguem clivar, quebrar as estruturas da 
proteína fazendo o pro 
cesso de precipitação que a gente também pode fazer com o ácido e o metal pesado. 
Os Cátions de metais pesados formam precipitados insolúveis de roteina, denominados de 
acordo com o elemento formador (Exemplo: proteinado de mercúrio, proteinado de chumbo 
e etc.). Essa precipitação é mais intensa quando o pH está acima do ponto isoelétrico (pl). 
Isso porque, acima do pl, a carga líquida sobre a proteína é negativa favorecendo a interação 
proveniente dos cátions do sal. 
 
4. Conclusão sobre a precipitação de proteínas por ácidos fortes e metais pesados. 
 
Verificamos que também teve uma precipitação. Porem conseguimos ter mais visibilidade e 
perceber que no tubo teve uma precipitação mais intensa, pois o ácido forte tem a 
capacidade de quebrar as ligações peptídicas da proteína mais do que o do chumbo. Temos 
um material mais leitoso no ácido do que no metal pesado. 
De toda forma temos essa percepção em relação a solução inicial e as soluções precipitadas. 
Com essa prática é possível perceber que além da modificação do ponto elétrico, do meio 
de cargas iônicas, de tudo isso que a gente tem nas proteínas um ponto que é importante 
são alguns elementos químicos que conseguem clivar, quebrar as estruturas da proteína 
fazendo este processo de precipitação que a gente também pode fazer com o ácido e o metal 
pesado. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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TEMA DE AULA: PRECIPITAÇÃO FRACIONADA POR SOLUÇÕES SALINAS 
CONCENTRADAS 
 
 
RELATÓRIO: 
 
1. Resumo sobre o tema abordado em aula. 
 
A proteína é uma biomolécula muito importante que são classificadas de acordo com seu 
ponto isoelétrico e dependendo do ambiente em que está colocada,ela interage de forma 
iônica com alguns compostos e podemos mudar essa concentração iônica de acordo com 
adicionamento de sais. Esse adicionamento de sais conseguimos fazer com que mude a 
concentração deste ambiente onde está a proteína e consegue dissociar as proteínas de 
forma a precipita-los. Esse é o objetivo da pratica, que consigamos em uma concentração 
onde temos vários tipos de proteínas fazer uma separação. Ela é muito utilizada em colunas 
de sílica, de resinas para separação de proteínas. 
 
 
2. Materiais utilizados. 
 
Ovoalbuniva 10% 
Agua (para padrão negativo) 
Sulfato de amônio concentrado (solução concentrada de sais, salina, que vai proporcionar a 
precipitação das proteínas) 
Pera de borracha 
Pipeta 
Becker 
 
3. Responda as Perguntas: 
 
A) O que é “Salting out”, “Salting in” e camada de solvatação? 
 
Quando adicionamos sais neutros a uma solução, ocorre o aumento da força iônica do 
sistema. Assim quando adicionamos pequenas quantidades de sal a uma solução contendo 
proteínas, as cargas provenientes da dissociação do sal passam a interagir com as 
moléculas proteicas, diminuindo a interação entre elas. Temos um aumento da solubilidade 
da proteína no meio acuoso. O nome desse fenômeno é Saltingin. 
Em condições de elevada força iônica, decorrente da adição de grandes quantidades de sal, 
temos o efeito contrário. A água, que apresenta grande poder de solvatação, passa a 
interagir com duas espécies: as proteínas e os íons provenientes da dissociação do sal. No 
entanto, a água apresenta maior tendência de solvatação de partículas menores. As 
moléculas de água, ocupadas em sua interação com íons, deixam a estrutura proteica. Como 
resultado, temos maior interação proteína-proteína, diminuição da solubilidade em meio 
aquoso e consequentemente precipitação da proteína. Para esse fenômeno de 
insolubilizarão da proteína em decorrência de um considerado aumento da força iônica dá-
se o nome de Salting out. Esse processo é essencial para a separação de proteínas uma 
vez que a concentração de sal é necessária é diferente para cada proteína. 
 
 
 
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VERSÃO:01 
B) Explique o princípio Bioquímico da precipitação de proteínas por adição de 
soluções salinas. 
 
Então as proteínas são classificadas de acordo com seu ponto isoelétrico e dependendo do 
ambiente onde ela está inserida ela interage de forma iônica com alguns compostos e 
podemos mudar essa concentração iônica de acordo com o adicionamento de sais. Esse 
adicionamento de sais consegue fazer com que mude a concentração deste ambiente onde 
está a proteína e consiga dissociar as proteínas de forma que consiga dissocia-las. O objetivo 
da pratica é que consigamos em uma concentração fazer a separação de varias proteínas. 
Ela é muito utilizada em colunas de sílica, de resinas para a separação de proteínas. 
 
C) Comente os resultados observados da precipitação da proteína por sulfato de amônio 
na presença e ausência da água, correlacionando com a solubilidade da proteína. 
 
Não foi possível observar a formação deste precipitado no tubo B com sulfato de amônia. A 
água diminui e interfere na questão iônica das cargas. 
A água, que apresenta grande poder de solvatação, passa a interagir com as duas espécies: 
as proteínas e os íons. Porem as moléculas de água apresentam maior poder de solvatação 
de partículas menores. As moléculas de água, ocupadas em sua interação com os íons, 
deixam a estrutura proteica. Como resultado temos maior interação proteína-proteína, 
diminuição da solubilidade em meio aquoso, e, consequentemente precipitação da proteína. 
A esse fenômeno de insolubilização da proteína em decorrência de determinado aumento 
da força de solubilização iônica do meio dá se o nome de Samling out. Já no tubo A 
percebemos a precipitação e formação de líquido leitoso e esbranquiçado. 
 
4. Conclusão sobre a precipitação das proteínas por adição de sais neutros (soluções 
salinas concentradas) 
 
Na aula pratica foi demonstrado a importância do ponto isoelétrico das proteínas bem como 
do ambiente, se é um meio dependendo da carga iônica a qual a proteína é submetida, ela 
pode sim ser separa por meio de uma solução salina que irá proporcionar essa separação 
das proteínas que pode ser através de um uma coluna de resina. A precipitação de proteínas 
pela alta concentração de sais é um processo importante para a separação de misturas 
complexas de proteínas, uma vez que a concentração de sal necessária para a precipitação 
é diferente para cada proteína. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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VERSÃO:01 
TEMA DE AULA: REAÇÃO DE BENEDICT (IDENTIFICAÇÃO DE AÇÚCARES 
REDUTORES) 
 
 
RELATÓRIO: 
 
1. Resumo sobre o tema abordado em aula. 
 
Os açucares redutores são tipos de carboidratos que apresentam estruturas que é uma 
hidroxila em um dos carbonos que é o C1. Essa hidroxila consegue reagir com diversos íons, 
principalmente os metálicos. E a reação se baseia nesta ligação onde a carbonila vai se ligar 
a um reativo que é chamado de reativo de Benedict. Esse reativo contem íons cúpricos que 
ao reagir com a carbonila forma um composto de nome óxido-cuproso. O reagente tem cor 
azul bem intensa. A reação positiva desta junção entre a carbonila do açúcar redutor com o 
ion cuproso deste reativo formam um composto vermelho que é uma coloração bem 
diferenciadas deste reativo. A partir desta reação conseguimos identificar quais são os 
principais açucares redutores. Podemos observar que a reação não ocorre após imediata 
colocação do material. É essencial uma reação a quente onde vamos utilizar o banho maria 
para realizar a reação 
 
2. Materiais utilizados. 
 
Glicose 1% (principal monossacarídeo, verificar se ele é um açúcar redutor) 
Solução de sacarose 1% (dissacarídeo) 
Reativo de Benedict 
Água (Controle Negativo) 
Pera de Borracha 
Pipeta 
Becker 
Banho Maria (Temperatura 70% por 5 minutos) 
 
3. Responda as Perguntas: 
 
A) Qual a composição do Reativo de Benedict? 
 
O reagente de Benedict consiste basicamente, de uma solução de sulfato cúprico em meio 
alcalino (com muitos íons OH) e pode ser preparado através do carbonato de sódio, citrato 
de sódio e sulfato cúprico 
 
B) O que são açúcares redutores? 
 
É qualquer açúcar que em solução básica, apresenta um grupo carbonilico livre aldeído 
(derivado de uma aldose). Soa capacidade de redução se dá pela presença de um grupo 
aldeído ou cetona livre. 
 
 
 
 
 
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C) Explique a fundamentação teórica do Teste de identificação de açúcares redutores com 
o Reativo de Benedict. 
 
Essa reação se baseia na ligação onde a carbonila vai se ligar a um reativo que é chamado 
reativo de Benedict. Esse reativo contem íons cúpricos que ao reagir com a carbonila, ela 
forma um composto chamado de oxido cuproso. O reagente tem cor azul. A reação positiva 
dessa junção entre a carbonila e o açúcar redutor com o ion cuproso desse reativo formam 
um composto vermelho que é uma coloração bem diferenciada deste reativo. A partir desta 
reação conseguimos identificar quais são os açucares redutores. 
 
D) Comente os resultados observados no experimento relacionando com a identificação de 
açúcares redutores. 
 
Tubo de Glicose: Mesmo após o banho maria por cinco minutos em temperatura a 70 graus, 
houve uma modificação, no entanto não é uma modificação de cor vermelha, mas essa 
modificação para cor esverdeada indica que houve uma redução dos ions. Houve uma 
reação de cobre. Neste caso não há formação do ácido cuproso, já foi reduzido ao máximo 
o cobre, mas conseguimos perceber uma diferença entre a sacarose e a glicose. Isso nos 
mostra que a glicose, a aldose é um agente redutor, e a frutose e a sacarose não é redutora. 
 
Tubo da Sacarose: Após o banho maria por cinco minutos em temperatura de 70graus, não 
houve redução nem reação entre os íons. Isto significa que a sacarose não é um carboidrato 
redutor, ou seja, ela não tem a hidroxila. 
 
Tubo de Água: Após o Banho maria por cinco minutos em temperatura de 70 graus não 
houve reação. A cor que está no tubo é do reativo Benedict. Não ocorreu mudança de cor. 
 
E) Exemplifique algumas aplicações deste teste na área clínica. É um teste qualitativo ou 
quantitativo? 
 
O teste é essencialmente qualitativo. O teste qualitativo é usado para verificar se um açúcar 
redutor está presente para determinar quantidade, porem ele pode ser usado como um teste 
quantitativo bruto, na medida em que a cor esverdeada indica apenas apenas um pouco de 
açúcar redutor; amarelo, um pouco mais, e vermelho muito. Um outro reagente conhecido 
como solução quantitativa de Benedict pode ser usado para determinar com muita precisão, 
a quantidade de açúcar redutor que está presente numa amostra. É semelhante a um 
reagente normal, mas contém dois produtos químicos adicionais. Na solução um resultado 
positivo é indicado por um precipitado branco e perda de algumas das cores azuis iniciais. A 
intensidade da cor indica a quantidade de açucares redutores na 
amostra. 
 
3. Conclusão sobre a identificação de açúcares redutores utilizando o Teste de 
Benedict. 
 
Na aula prática observamos que após o banho maria de cinco minutos em temperatura de 
70 graus houve uma alteração, porem não é uma reação de vermelho tijolo, mas uma 
alteração para uma cor esverdeada o que indica que houve uma redução dos íons. Houve 
 
 
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VERSÃO:01 
uma reação do cobre. E nesse caso não há formação do ácido cuproso, já foi reduzido ao 
máximo o cobre, mas conseguimos perceber uma diferença entre a sacarose e a glicose. 
Isso significa que a glicose geralmente a aldose é um agente redutor e a frutose a sacarose 
não é redutor.