Formulando uma Nanoemulsão Cosmética

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CENTRO UNIVERSITÁRIO LEONARDO DA VINCI 
NÚCLEO DE EDUCAÇÃO A DISTÂNCIA - NEAD 
RELATÓRIO DE PRÁTICA VIRTUAL 
 
IDENTIFICAÇÃO 
1. Acadêmico: PRISCILA ELIAS LIVRAMENTO FAGUNDES 
2. Matrícula: 3455214 
3. Curso: Ciências Farmacêuticas 4. Turma: FLC8903BFR 
5. Disciplina: Farmacotécnica II 
6. Tutor(a) Externo(a): Adão Pachêco Lima 
 
DADOS DA PRÁTICA 
1. Título: Formulando uma Nanoemulsão Cosmética 
2. Semestre: 2024/1 
3. Data: 28/03/2024 
 
INTRODUÇÃO 
A nanotecnologia tem sido usada para criar pequenos recursos em chips de 
computador nos últimos 25 anos. O mundo natural, também, contém muitos 
exemplos de estruturas em nanoescala, do leite (um coloide em nanoescala) às 
sofisticadas proteínas nanoestruturadas, que controlam uma série de atividades 
biológicas, como flexionar os músculos, liberar energia e reparar um dano celular. Os 
nanomateriais diferem, significativamente, de outros materiais, devido a dois fatores 
principais: aumento da área de superfície e efeitos quânticos. À medida que o 
tamanho da partícula diminui, uma proporção maior de átomos é encontrada na 
superfície em comparação com a interior. Por exemplo, um tamanho de partícula de 
30 nm tem 5% de átomos na superfície; de 10 nm, 20%; e, de 3 nm, 50%. Assim, um 
NP tem uma área de superfície muito maior por unidade de massa em comparação 
com partículas maiores, assim, ocorre uma maior reatividade. Isso pode afetar os 
comportamentos óptico, elétrico e magnético dos materiais. O comportamento in 
vivo pode ser desde o aumento da absorção até a alta toxicidade dos nanomateriais 
(THASSU; PATHAK; DELEERS, 2007). 
 
OBJETIVOS 
❖ Liberar o fármaco na pele para absorção percutânea em níveis terapêuticos e 
com um fluxo ótimo. 
❖ Conter agentes medicinais com características físico-químicas necessárias 
para liberação adequada e partição favorável ao estrato córneo. 
❖ Ocluir a pele para garantir um fluxo unidirecional do fármaco ao sistema do 
estrato córneo. 
❖ Apresentar vantagens terapêuticas sobre outras formas farmacêuticas e 
sistemas de liberação de IFAs. 
❖ Não ser irritante ou sensibilizante para a pele. 
❖ Aderir bem à pele e apresentar tamanho, aparência e local indicados para o 
uso, quefacilitem a adesão terapêutica por parte do paciente. 
 
 
 
 
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MATERIAIS 
❖ Agitador mecânico; 
❖ Água purificada; 
❖ Aquecedor magnético; 
❖ Béquer (100 mL); 
❖ Béquer (50 mL); 
❖ Cubeta; 
❖ Monoestearato de sorbitano; 
❖ Monoleato de polioxietilenosorbitano; 
❖ Pano de limpeza; 
❖ Pipeta graduada (1 mL); 
❖ Pipeta Pasteur; 
❖ Polymol; 
❖ Proveta (100 mL); 
❖ Proveta (5 mL); 
❖ Termômetro; 
❖ Vitamina E; 
❖ Zetasize nano sz.. 
 
METODOLOGIA 
1 Lave as mãos na “Pia” e coloque o equipamento de proteção individual 
localizado no “Armário de EPIs”. 
 
2. PREPARANDO A FASE AQUOSA E OLEOSA Abra os frascos contendo Span 80, 
Tween 80, Polymol e Vitamina E. Colete 2,5 mL de Span 80 na proveta de 5 mL 
e adicione ao béquer de 100 mL. Colete 2,5 mL de Tween 80 em uma nova 
proveta de 5 mL e adicione ao mesmo béquer de 100 mL. Utilizando uma 
proveta de 10 mL, colete 10 mL de Polymol e adicione ao béquer de 100 mL. 
Transfira a vitamina E para o béquer de 50 mL. Com a pipeta graduada de 1 
mL, colete 1 mL de vitamina E do béquer de 50 mL e adicione ao béquer de 
100 mL. Abra o frasco contendo água purificada e colete, na proveta de 100 
mL, 85 mL. Transfira a água purificada da proveta para um novo béquer de 100 
mL. 
 
3. MANIPULANDO A EMULSÃO Leve os dois béqueres de 100 mL para os seus 
respectivos aquecedores magnéticos e coloque um termômetro em cada. 
Ligue os aquecedores e aguarde 3 minutos até atingir a temperatura de 75 °C. 
Posicione o agitador mecânico e ligue o aparelho. Ainda em aquecimento, use 
a pipeta Pasteur para transferir a fase oleosa para a fase aquosa gotejando. 
Repita o procedimento de transferência da fase oleosa 5 vezes até que todo o 
conteúdo do béquer seja transferido. Desligue o aquecedor da fase oleosa. 
Mantenha a agitação em aquecimento durante 5 minutos. Desligue o 
aquecedor e mantenha a agitação por mais 5 minutos. 
 
 
 
 
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4. ANALISANDO O TAMANHO DAS PARTÍCULAS Desligue o agitador mecânico 
e eleve o equipamento. Com uma nova pipeta Pasteur, colete uma quantidade 
da emulsão no béquer e transfira para a cubeta. Limpe a parte externa da 
cubeta com o pano de limpeza. Ligue o computador e o aparelho ZetaSizer 
Nano zs. Abra tampa do ZetaSizer Nano zs. Insira a cubeta no local indicado e 
feche a tampa. Pressione o botão na frente da tampa para iniciar a análise. 
Observe o resultado clicando o ícone na tela do computador. 
 
RESULTADOS E DISCUSSÕES 
Os nanosistemas podem ser diferenciados em sistemas lipídicos, que compreendem 
micelas, nanopartículas metálicas, lipossomas, nanoemulsões, NP lipídicas sólidas, 
carreadores lipídicos nanoestruturados e outras nanopartículas que não pertencem 
ao sistema lipídico: complexos em ciclodextrinas, dendrímeros, fulerenos e 
nanotubos de carbonos. A função do material não é, necessariamente, falar de todos 
os tipos de nanosistemas, até porque, a cada momento, podem surgir novos sistemas 
e novos conceitos para os já existentes, desse modo, aqui, estudaremos um pouco 
dos tipos mais populares. Os lipossomas são vesículas lipídicas biocompatíveis e 
biodegradáveis compostas, principalmente, por fosfolipídios (fosfatidilcolina (PC), 
fosfatidilglicerol e fosfatidiletanolamina). O fosfolipídio, geralmente, tem um grupo 
hidrofílico e duas cadeias hidrofóbicas. Possui um diâmetro variável entre 25 a 10.000 
nm e as propriedades físico-químicas dele variam, de acordo com o método de 
preparo e a composição. Essas porções lipídicas se orientam, espontaneamente, na 
água, para dar ao grupo hidrofílico voltado para fora, no ambiente aquoso, e cadeias 
lipídicas orientadas para dentro, assim, evita-se a fase aquosa. Isso dá origem a 
estruturas de duas camadas. Em geral, lipossomos podem ser vesículas 
multilamelares (multilamellar vesicle – MLVs), que têm diâmetros com o intervalo de 
1 a 5 μm. A partir do uso de técnicas adequadas (extrusão ou sonicação), as MLVs 
podem gerar pequenas vesículas unilamelares (small unilamellar vesicle – SUVs), com 
diâmetros na faixa de 0,02-0,08 μm. Grandes vesículas unilamelares (LUVs), também, 
podem ser produzidas por evaporação, sob pressão reduzida, com lipossomas com 
diâmetro de 0,1-1 µm. Há, ainda, vesículas unilamelares gigantes (giant unilamellar 
vesicle – GUV), com diâ metro acima de 1 µm, e as multivesiculares, que são vesículas 
que encapsulam vesículas menores (SWAAYA; MELLO, 2013; ZORZI et al., 2017). 
 
 
 
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O lipídeo formador de bicamada é a parte essencial da estrutura de membrana 
lamelar. Os demais compostos são adicionados para conferir certas características 
para as vesículas. A localização de um medicamento aprisionado nos lipossomas 
depende da solubilidade do medicamento e das características. Fármacos solúveis em 
água podem ser aprisionados nos lipossomas por intercalação nas bicamadas 
aquosas, enquanto fármacos lipossolúveis podem ser aprisionados no interior de 
hidrocarbonetos das bicamadas lipídicas. Exemplos de aplicações nas quais 
lipossomas são empregadas com sucesso, para proporcionar benefício terapêutico, 
incluem Lipossomas de anfotericina B. O uso do agente antifúngico anfotericina B, 
formulado em lipossomas, foi aprovado pela Food and Drug Administration (FDA) 
para o tratamento de micoses sistêmicas. Os lipossomas podem ser classifi cados nas 
seguintes categorias: convencionais, furtivas, direcionados e catiônicos. Vejamos um 
pouco agora: 
 
• Lipossomas convencionais: são lipossomas neutros ou carregados negativamente. 
Tipicamente, são compostos por, apenas, fosfolipídios, glicolipídios e/oucolesterol, 
sem derivatização, para aumentar o tempo de circulação. Esses lipossomas são, 
geralmente, utilizados para as células fagocíticas da MPS, com localização, 
predominantemente, no fígado e no baço. Esse tipo, também, tem sido utilizado para 
a entrega de antígeno. 
 
• Lipossomas esterilizados (furtivos): assim como os lipossomas convencionais são 
reconhecidos, pelo sistema imunológico, como corpos estranhos, são, 
frequentemente, incluídos, na preparação desse tipo de lipossoma, o lipídeo PEG 
(comumente, conhecido como lipídeo PEGuilado) e o PEG-fosfatidiletanolamina (PEG-
PE). O lipídeo PEGuilado reduz a captação de lipossomos por MPS ou RES, o que gera 
meia-vida de circulação prolongada. Simplesmente, esse sistema persiste na corrente 
sanguínea. Lipossomas PEGuilados tendem a ser liberados em tumores e maioria dos 
locais de infl amação. 190 Por exemplo, a ALZA Corporation desenvolveu lipossomas 
STEALTHTM, que fogem do reconhecimento pelo sistema imunológico, por causa do 
revestimento PEG exclusivo. DoxilTM é um lipossoma STEALTHTM com formulação de 
doxorrubicina, usada no tratamento de sarcoma de Kaposi, relacionada à AIDS. 
 
 
 
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• Lipossomas direcionados: além de um revestimento de PEG, a maioria dos 
lipossomos furtivos, também, possui alguma espécie biológica acoplada, o que 
permite a ligação por meio de uma expressão específica no sítio de entrega do 
medicamento direcionado. Esses ligantes podem ser anticorpos monoclonais 
(produzem um imunolipossoma), vitaminas ou antígenos específicos. Fármacos, 
naturalmente, tóxicos podem ter a toxicidade diminuída se entregues, apenas, a 
tecidos doentes. 
 
• Lipossomas catiônicos: são sistemas carregados positivamente e usados para a 
entrega de ácido. Os lipossomas catiônicos interagem com o esqueleto fosfato de 
DNA ou RNA, carregado negativamente, o que leva à neutralização da carga. Esses 
lipossomas são preparados ao serem usados um lipídio catiônico e um colipídeo, 
como dioleoilfosfatidiletanolamina (DOPE) ou colesterol. 
 
 
 
REGISTRO FOTOGRÁFICO 
Durante a prática realize 1 registro fotográfico em que você aparece executando a 
prática. Você pode tirar um selfie. 
 
 
REFERÊNCIAS 
• Farmacotécnica II. Caroline Deckmann Nicoletti. Indaial – SC: UNIASSELVI, 
2022