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RELATÓRIO DE PRÁTICA Júlia Carolina Culau da Silva 47042836 RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS ENSINO DIGITAL RELATÓRIO 01 e 02 DATA: ______/______/______ RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS: Bioquímica Humana DADOS DO(A) ALUNO(A): NOME: Júlia Carolina Culau da Silva MATRÍCULA:47042836 CURSO: Farmácia POLO: Unifael - Erechim PROFESSOR(A) ORIENTADOR(A): Rosilma Oliveira RELATÓRIO: ATIVIDADE CATALITICA DA AMILASE SALIVAR 1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados. Ao iniciar a aula, a professora explicou de um modo geral sobre o que é amilase salivar. Para identificação catalítica do amido foi utilizado duas técnicas. Primeiro a técnica Enzimática (Hidrólise Enzimática) com a amilase salivar e após a técnica Química (Hidrolise Química) com a solução de ácido clorídrico, que tem a capacidade de degradar as soluções glicosídicas que formam o amido. Na solução para a hidrólise química, foi utilizado o amido, o composto químico que será ou não degradado. Em um becker identificado com a escrita Hidrólise Química foi colocado 30 ml da solução de amido 1% e em seguida adicionado 3 ml da solução de ácido clorídrico. Para a hidrólise enzimática, foi adicionado 5 ml de água, 30 ml da solução de amido 1 % e 3 ml da amilase salivar em outro becker. Após a distribuição de cada componente para a hidrólise em seu respectivo tubo, foi acrescentado 5 gotas do reagente, para ver se há ou não a quebra desse amido, a solução de lugol. Todos os beckers foram submetidos aos fatores térmicos quente e frio. Para identificar o processo de hidrólise foi realizada as seguintes etapas: 1ª etapa: inserir o tubo 1 das duas hidrólises no banho de gelo por aproximadamente 1 minuto. 2ª etapa: colocar o tubo 2 das duas hidrólises no banho maria com água quente em torno de 70°, por aproximadamente 10 min e em seguida inseri-los no banho de gelo. 3ª etapa: posicionar o tubo 3 de ambas hidrolises por 20 minutos no banho maria com a água quente 70° e posteriormente no banho de gelo. Materiais utilizados: pera de borracha, 6 tubos de ensaio, pipeta de vidro, estante para os tubos de ensaio, proveta, cronômetro, banho de gelo, estufa para banho maria com água quente, becker, solução de amido 1%, solução de lugol, água destilada e conta gotas. 2. Responda as Perguntas: RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS ENSINO DIGITAL RELATÓRIO 01 e 02 DATA: ______/______/______ a) Qual a composição bioquímica do amido? De acordo com Santos (2023) o amido é um polissacarídeo importante para os vegetais, pois é a sua principal fonte de energia. É encontrado em grande quantidade na natureza, e formado por cadeias de amilose, originada por unidades de glicose unidas e ligações glicosídicas α-1,4 e amilopectina, formada por unidades de glicose unidas por ligações glicosídicas α-1,4 e α-1,6. Deste modo pode-se dizer que o amido é uma molécula complexa formada por várias moléculas de glicose. b) Qual o objetivo do uso de HCl, aquecimento e resfriamento no procedimento da hidrólise química do amido? As enzimas são proteínas que se desnaturam de acordo com o meio em que estão inseridas. Então através do banho de gelo, ou do banho-maria em água morna, é possível verificar se as temperaturas influenciam ou não nas reações catalíticas, tanto no método enzimático quanto no método químico. c) Descreva a sequência de transformações operadas pela amilase na molécula da amilose. A sequência de transformações inicia com o processo de mastigação, sendo que ao mastigar através da saliva há a liberação da enzima α-amilase que é responsável por catalisar a hidrólise nas ligações glicosídicas da amilose, que resultarão a maltose, a amilopectina e a glicose, e nas ligações da amilopectina que resultarão a dextrina. d) Explique os resultados obtidos durante o ensaio bioquímico. Ao tirar os tubos 01 das duas hidrolises do banho de gelo, foi adicionado em cada tubo 5 gotas fórmula de lugol 2% (solução de iodo) que é o reagente, para verificar se ocorre ou não a hidrólise. Desta primeira etapa conclui-se que não houve a hidrolise nem na técnica química e nem na enzimática, pois o amido vai se degradando aos poucos. Os tubos de número 02 e 03 foram utilizados para saber se a temperatura quente também influência na hidrólise. Os tubos de número 2 foram retirados no banho maria e colocados no banho de gelo, até que a temperatura se normalize, em torno de 1 minuto. Após adicionado 5 gotas de lugol 2% para verificar se houve ou não a degradação do amido. Percebe-se o lugol se homogeneizando com a presença do amido, deixando a solução com cor azul escuro. Não houve a degradação do amido, indicando que a temperatura influencia sim na atividade enzimática e na química e hidrolise aconteceu nas duas atividades. E com os tubos 03 o mesmo processo foi realizado, retirando-os do banho-maria, mas de 20 minutos e colocando-os em banho de gelo. Quando a temperatura deles baixou foi colocado 5 gotas de lugol. Que indica a presença do amido, pois o lugol está penetrando na solução, deixando-a de cor azul escura, ocorrendo a hidrolise química e enzimática. RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS ENSINO DIGITAL RELATÓRIO 01 e 02 DATA: ______/______/______ REAÇÃO DE SELIWANOFF (REAÇÃO PARA DISTINÇÃO ENTRE ALDOSES E CETOSES) 1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados. O que são aldoses e cetoses? Este foi o ponto inicial da aula. Aldoses são um grupo de carboidratos simples, e as cetoses são monossacarídeos que contém o grupo cetona. Em seguida, foi explicado que essa reação de Seliwanoff ocorre porque as cetoses reagem com ácidos fortes e deste modo produzem um composto chamado de furfural que reage com o resorcinol, onde o mesmo é um composto derivado da ureia e está presente no reativo de Seliwanoff. Para realizar essa reação foi utilizado a glicose que é uma aldose. E através desta reação será possível identificar através se a frutose é ou não uma cetose. Em cada tubo de ensaio identificado por glicose, frutose e água, foi adicionado 1 ml da solução de cada elemento, em seguida 1,5 ml de ácido clorídrico que é o ácido forte para fazer a reação com a aldose e a cetose e 0,5 ml do reativo de Seliwanoff. Após agitar os tubos levemente, eles foram levados até o banho-maria, não tendo um tempo exato para deixá-los em contato com a água quente de 70º, sendo necessário a atenção para perceber quando começar o resultado. O produto que é formado na reação possui coloração vermelha, por isso é fácil de percebê-lo. Esse composto não tem uma composição definida e nem um nome, mas é visualmente percebido. Materiais utilizados: 1 ml da solução de glicose 1%, 1 ml da solução de frutose, 3 tubos de ensaio identificados com os respectivos nomes, água destilada, conta gotas, pipeta, pera de borracha, becker, estufa para o banho-maria, estante para os tubos de ensaio e o reagente Seliwanoff. 2. Responda as Perguntas: a) Qual o princípio da técnica de Seliwanoff? O princípio desta técnica é um teste químico que distingue aldoses de cetoses. Ele baseia-se na teoria de que, quando aquecidas, cetoses são desidratadas mais rapidamente que aldoses. Essa reação utiliza o reativo Seliwanoff, nome desta prática que é em homenagem a Theodor Seliwanoff, o químico que a idealizou. (Wikipédia, 2022) b) Qual o objetivo de utiliza um tubo apenas com água destilada. A água destilada serve apenas como controle negativo para esta reação. c) Porque é necessário aplicar fervura e ácido clorídrico (HCl) durante o teste de Seliwanoff? De acordo com Coelho (2020), o teste de Seliwanoff é baseado na reação de mistura do HCl com os carboidratos, que quando misturados, causa a desidrataçãodos carboidratos devido à hidrólise da ligação glicosídica. Essa reação leva à https://pt.wikipedia.org/wiki/Aldose https://pt.wikipedia.org/wiki/Cetose RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS ENSINO DIGITAL RELATÓRIO 01 e 02 DATA: ______/______/______ produção de furfural e seus derivados; quando reagem com o resorcinol resultam em um produto condensado com uma cor vermelha. Para que este processo ocorra é preciso energia, que se origina através fervura. d) Explique os resultados obtidos durante o ensaio bioquímico quanto a presença de aldose e cetoses. Os tubos foram observados aproximadamente por dois minutos após serem retirados do banho maria para saber se há ou não alguma reação. No tubo de ensaio da glicose, após ser retirado do banho-maria permaneceu inalterado, não tendo nenhuma reação. Já no tubo de ensaio da frutose, a solução mudou para uma cor avermelhada, então isto quer dizer que teve sim a reação. E a água como serve somente para controle negativo, permaneceu inalterada. RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS ENSINO DIGITAL RELATÓRIO 01 e 02 DATA: ______/______/______ PRECIPITAÇÃO POR ÁCIDOS FORTES E METAIS PESADOS 1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados. Uma breve explicação sobre precipitação e identificação das proteínas, foi o início da aula. Através desta técnica realizada é possível verificar que essas proteínas por terem estruturas químicas, podem reagir e podem precipitar com algumas substâncias. E as principais fontes de precipitação de proteínas são os ácidos fortes, por exemplo o ácido que será utilizado é o tricloracético à 20 %. A substância de metal pesado que a ser utilizada é o acetato de chumbo 10%. E a matéria prima é a ovoalbumina 10%. Após homogeneizar a ovoalbumina que está em um recipiente, foi colocado 2 ml dela em um tubo de ensaio utilizado para a precipitação com o metal pesado e em outro tubo de ensaio com o ácido. E seguida acrescentou-se 1 ml de ácido tricloracético em seu respectivo tubo e a precipitação foi imediata, pôde ser observada logo que as soluções entraram em contato uma com a outra, formando um líquido leitoso, com alguns grumos. Aparência turva indicando que houve a precipitação da proteína pelo ácido. No tubo identificado metal pesado, foi adicionado 5 gotas do acetato de chumbo. A precipitação também imediatamente ocorreu. Materiais utilizados: Solução de ácido tricloracético 20%, acetato de chumbo 10%. Ovoalbumina 10%, 2 tubos de ensaio, pipeta, pera de borracha e conta gotas. 2. Responda as Perguntas: a) Por que a ovoalbunina precipita na presença de ácidos fortes e metais pesados? Porque ácidos fortes e metais pesados podem alterar a estrutura da proteína e afetar as forças de ligação entre as moléculas de proteína. De acordo com Silva, algumas proteínas combinam-se com cátions de metais pesados formando proteinatos insolúveis. Os sais de metais pesados reagem com seu cátion com o ânion da proteína (COO-) formando proteinatos insolúveis e por isso precipitam. b) Explique por que a ovoalbumina torna-se insolúvel após a precipitação. Porque ela foi desnaturada. c) Explique os resultados encontrados no experimento. Os resultados obtidos no experimento são precipitação nos dois tubos de ensaio, mas percebe-se que em contato com o chumbo não é tão intensa como com o ácido, pois o ácido quebra as ligações peptídicas da proteína mais do que o chumbo. RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS ENSINO DIGITAL RELATÓRIO 01 e 02 DATA: ______/______/______ PRECIPITAÇÃO FRACIONADA POR SOLUÇÕES SALINAS CONCENTRADAS 1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados. De acordo com a Professora Rosilma, as proteínas são classificadas de acordo com seu ponto isoelétrico e dependendo do ambiente em que se encontra ela interage de forma iônica com alguns compostos, mas que com a adição de sais pode-se mudar essa concentração iônica. Em tubo identificado como Tubo A colocou-se 2 ml da solução de ovoalbumina e 2 ml de sulfato de amônia, no tubo identificado como Tubo B, 2 ml da solução de ovoalbumina, 2 ml de água e 2 ml da solução de sulfato de amônia. Materiais utilizados: Para ocorrer essa precipitação das proteínas a solução utilizada será a de sulfato de amônia, que é a concentração salina, água destilada como o padrão negativo, a Solução de ovoalbumina 10%, dois tubos de ensaio, becker, pipeta, pera de borracha. 2. Responda as Perguntas: a) Explique os conceitos de “Salting out”, “Salting in” e camada de solvatação? “Aumento da solubilidade da proteína no meio aquoso. A esse fenômeno dá-se o nome de "salting-in".” (Heleno, 2018). Isto quer dizer que no momento que é adicionados concentrações salinas na água, as substâncias que eram solúveis são excluídas. Agora falando de "salting-out" Heleno (2018) deixa claro “A água, que apresenta um grande poder de solvatação, passa a interagir com as duas espécies: as proteínas e os íons provenientes da dissociação do sal. Porém, as moléculas de água apresentam maior tendência de solvatação de partículas menores (nesse caso, os íons). As moléculas de água, ocupadas em sua interação com os íons, "abandonam" a estrutura proteica. Como consequência, temos: maior interação proteína-proteína, diminuição da solubilidade em meio aquoso e, consequentemente, precipitação da proteína. A esse fenômeno de insolubilização da proteína em decorrência de um considerável aumento da força iônica do meio dá-se o nome de "salting-out". (Heleno, 2018) b) Qual o princípio bioquímico do experimento? Heleno (2018) explica que ao adicionarmos sais neutros a uma solução, ocorre um aumento da força iônica do sistema. Deste modo ao adicionarmos pequenas quantidades de sal a uma solução contendo proteínas, as cargas provenientes da dissociação do sal passam a interagir com as moléculas proteicas. c) Explique os resultados encontrados durante o experimento. No tubo A, que estava somente a solução de ovoalbumina e a concentração salina que é o sulfato de amônio, houve a precipitação das proteínas. Já no tubo B que além destas soluções, tinha também água destilada, percebeu- se que não houve a precipitação, pois a água diminui e interfere na questão iônica das cargas. RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS ENSINO DIGITAL RELATÓRIO 01 e 02 DATA: ______/______/______ REAÇÃO DE BENEDICT (IDENTIFICAÇÃO DE AÇÚCARES REDUTORES) 1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados. Iniciou-se a aula explicando sobre o princípio da técnica bioquímica deste experimento. A coloração do resultado deste experimento é vermelho tijolo. Em seguida os experimentos realizados serão para identificar quais são açucares redutores e quais não são. Em um tubo de ensaio identificado por Glicose, colocou-se 5 ml do reagente de Benedict e 5 ml de glicose 1%. No tubo identificado por Sacarose, 5 ml de reagente de Benedict e 5 ml de sacarose. E por fim no tubo identificado por água, 5 ml de reagente Benedict e 5 ml de água. Para identificação de açucares é necessário levar as soluções até o banho- maria, que deve estar com a temperatura da água bem quente, mais ou menos 70º e o tempo que os tubos devem permanecer lá é de aproximadamente 5 minutos. Materiais utilizados: Glicose 1%, que é o principal monossacarídeo, Solução de sacarose 1%, Reativo de Benedict qualitativo, que possui cor azulada, água destilada que é o controle negativo, 3 tubos de ensaio, pipetas de vidro, estante para os tubos de ensaio, pera de borracha e estufa para o banho-maria. 2. Responda as Perguntas: a) Explique o princípio da técnica bioquímica do experimento. Açucares redutores sãoalguns carboidratos que apresentam estrutura, hidroxila OH e um dos carbonos C¹. Esta hidroxila consegue reagir com diversos íons, principalmente metálicos. E esta reação que vamos fazer se baseia na ligação onde a carbonila vai se ligar a um reativo chamado de Benedict, que contém íons cúpricos, onde os mesmos ao reagir com essas carbonilas formam um composto chamado Óxido cuproso. O princípio desta técnica é detectar, identificar a presença de açúcar redutor. b) Qual o conceito de “açúcares redutores”? De acordo com Santos et al (2021) “Os açúcares redutores são carboidratos monossacarídeos, capazes reduzir os sais de cobre, prata e bromo em soluções alcalinas, pois possuem grupos aldeídos ou cetonas livres. Os demais açúcares como os dissacarídeos não possuem grupos aldeídos ou cetonas Química: ensino, conceitos e fundamentos 173 livres, por isso não são capazes de reduzir sais, e são denominados não redutores. Desta forma, para serem quantificados em açúcares solúveis totais (AST) é necessária hidrólise prévia para quebrar as ligações glicosídicas e formar assim monossacarídeo” (SILVA et al., 2003; BRUICE, 2014; SANTOS, GEMMER, OLIVEIRA, 2016). c) Explique os resultados encontrados no experimento. RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS ENSINO DIGITAL RELATÓRIO 01 e 02 DATA: ______/______/______ No tubo identificado de água, não teve reação, a cor do tubo permaneceu inalterada. No tubo da sacarose também não houve reação entre os íons, deste modo a sacarose não é um carboidrato redutor. E no tubo da glicose há uma modificação da cor, porém não é de cor vermelho tijolo, mas a cor esverdeada também indica a redução dos íons. Isso significa que a glicose é um agente redutor. d) Explique como o experimento pode ser aplicado nas atividades na área clínica. Na área clínica este experimento pode ser realizado para detectar se uma pessoa tem ou diabetes. Utilizando o reagente de Benedict e uma amostra da urina da pessoa, pode-se chegar ao resultado da presença de glicose. RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS ENSINO DIGITAL RELATÓRIO 01 e 02 DATA: ______/______/______ REAÇÃO DE BIURETO 1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados. As proteínas são biomoléculas importantíssimas na configuração do nosso corpo, fazem parte da atividade de diversas funções, por exemplo participam da formação da membrana plasmática e de funções enzimáticas. Para identificação das proteínas será utilizado a reação de Biureto. O Reativo de Biureto é um composto derivado da ureia e reage com algumas conformações presentes nas proteínas, dando uma coloração violácea (violeta). Em um tubo identificado por água destilada, acrescentou-se 1 ml de água e 1 ml da solução de biureto. E no tubo identificado por ovoalbumina, 1 ml da mesma e 1 ml da solução de biureto. Materiais utilizados: Solução de ovoalbumina, Reativo de Biureto, aguá destilada que é o controle negativo, 2 tubos de ensaio, pipeta e a pera de borracha. 2. Responda as Perguntas: a) Explique o princípio bioquímico da Reação de Biureto. Envolve a interação entre íons de cobre e ligações peptídicas presentes nas proteínas. b) Qual o tipo de ligação que ocorre entre o Biureto e as moléculas identificadas? Ligações Peptídicas. c) Explique os resultados encontrados no experimento. No tubo da água destilada, ela permaneceu de cor inalterada. E no tubo da ovoalbumina, em torno de 1 minutos após a homogeneização começou a ficar de cor violeta. Significando a presença de proteínas. RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS ENSINO DIGITAL RELATÓRIO 01 e 02 DATA: ______/______/______ REAÇÃO DO LUGOL (IDENTIFICAÇÃO DE POLISSACARÍDEOS) 1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados. Os carboidratos são compostos encontrados na natureza e identificados a partir das propriedades de ligações glicosídicas. Neste experimento será estudado os polissacarídeos, que são sacarídeos. Dentro âmbito vegetal o principal é o amido, que é composto pela amilopiptina e amilose. O lugol é uma solução de iodo que reage com as ligações amilopeptinas e da amilose dentro do carboidrato, dando uma coloração azul de diversas tonalidades, que depende da concentração do amido. A cor do lugol é bem amarela. Em um tubo identificado inseriu-se 1 ml da solução de amido 1% e 5 gotas de lugol. E em outro tubo identificado1 ml de água e 5 gotas de lugol. Materiais utilizados para fazer a identificação dos polissacarídeos: Solução de amido 1%, solução de lugol 2%, água destilada que é o controle negativo, pipeta, pera de borracha, batata inglesa, farinha de aveia, polvilho, pera de borracha, faca, 2 tubos de ensaio, conta gotas, pratos pequenos e papel toalha. 2. Responda as Perguntas: a) Explique o princípio bioquímico da utilização do lugol na identificação de polissacarídeos. Identificar a presença do amido pela formação de complexos com iodo presente no reativo de lugol. b) Explique para quais situações essa técnica pode ser utilizada. Essa técnica também pode ser utilizada para verificar se há presença de amido em alguns alimentos, por exemplo: na batata inglesa, sendo que ao cortar um pedaço e colocar a solução de lugol ela muda de cor, confirmando a presença do amido. Percebe-se também que na farinha de aveia, a presença de amido também é evidenciada e com uma coloração mais intensa, pois ela também é uma fonte muito importante de amido. E por fim colocando o lugol em contato com a fécula de mandioca, o polvilho, conclui-se que ela concentra uma grande quantidade de amido, resultando em uma coloração muito intensa. c) Explique os resultados encontrados no experimento. O resultado deste experimento é imediato. No tubo identificado de amido, a coloração ficou azul bem escuro, indicando a presença do amido. Já no tubo da água a coloração ficou da cor no reagente lugol, indicando que não há a presença do amido. RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS ENSINO DIGITAL RELATÓRIO 01 e 02 DATA: ______/______/______ REAÇÃO DE SAPONIFICAÇÃO 1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados. Os triglicerídeos são um tipo de classificação dos lipídeos e são nossa reserva energética. E estes também são importantes na indústria, principalmente na produção de sabão. O sabão é formado através de uma hidrólise. Onde uma hidrolise alcalina, (sal alcalino), faz a quebra do triglicerídeo em glicerina e ácidos graxos. Então o ácido graxo faz a saponificação, produção de espuma. Mas o sabão também pode ser feito de forma caseira utilizando o óleo vegetal reaproveitado e com o adicionamento da soda cáustica, que faz a hidrólise alcalina. Para realizar o experimento, inicialmente foi colocado em um tubo identificado 5 ml da solução hidróxido de potássio, 2 ml do óleo de milho. Percebe-se logo que há a formação de duas fases, onde o óleo não se misturou com a solução. Para que a hidrolise alcalina aconteça é necessário que os tubos sejam aquecidos em banho-maria em torno de 5 minutos com temperatura de 70º. Se a hidrolise aconteceu o conteúdo dentro do tubo irá se homogeneizar. Além da saponificação, foi realizado um teste para verificação da água, no caso água dura, que é composta por vários sais, dentre eles, cálcio e magnésio, fazendo com que diminua a reação do sabão com a água, diminuindo a produção de espuma. Em um tubo identificado, colocou-se 1 ml de água e 2 ml da solução de sabão. Para ter certeza de que os íons interferem na produção de espuma, colocou-se em outro tubo identificado 2 ml da hidrólise (solução de sabão) e 5 gotas da solução de cloretode cálcio. Materiais utilizados: Óleo vegetal de milho, que é a fonte de triglicerídeos, a água destilada para a verificação da espuma, solução etanólica hidróxido de potássio KOH 10% (composição alcalina), 3 tubos de ensaio, pipeta, pera de borracha, estante para os tubos, estufa para o banho-maria. 2. Responda as Perguntas: a) Explique bioquimicamente o que são ácidos graxos e triglicerídeos. De acordo com Nascimento, os ácidos graxos consistem em um tipo de lipídio formado por cadeias longas de carbonos com um grupamento carboxila em uma de suas extremidades. Eles são a parte dos lipídios utilizada como combustível pelas células, constituindo uma das principais fontes de energia junto com a glicose e as proteínas. E Fogaça, destacou que os triglicerídeos são óleos e gorduras de origem animais e vegetal, formados na reação entre três ácidos graxos e uma molécula de glicerina. São chamados de triglicerídeos porque possuem três grupos ésteres de glicerídeos. b) Explique a fundamentação teórica da técnica de saponificação. A reação de saponificação é um tipo de reação química utilizando um sal orgânico e um álcool. O nome saponificação se deve ao fato de que, quando se utiliza um éster derivado de um ácido graxo em reações desse tipo, produz-se o sabão, e já que a principal fonte natural de ácidos graxos são gorduras e óleos, suas hidrólises https://www.infoescola.com/bioquimica/lipidios/ https://www.infoescola.com/elementos-quimicos/carbono/ https://www.infoescola.com/quimica/carboxila/ https://www.infoescola.com/quimica/alcoois/ https://www.infoescola.com/bioquimica/acidos-graxos/ https://www.infoescola.com/bioquimica/lipidios/ RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS ENSINO DIGITAL RELATÓRIO 01 e 02 DATA: ______/______/______ alcalinas são os principais processos aplicados à produção de sais de ácidos graxos, popularmente conhecidos como sabões. (Cardoso 2006) c) Explique os resultados encontrados no experimento. Depois de 5 minutos em banho-maria na temperatura de 70° conclui-se que teve sim hidrólise no tubo identificado de óleo vegetal de milho. Em relação ao outro experimento para verificação da espuma, observa-se que ocorreu a hidrolise, é perceptível a textura do sabão líquido, a formação de espuma e a coloração. Sobre a interferência dos íons na produção de espuma, tem como resultado a não formação de espuma e a presença de alguns grumos pequenos. RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS ENSINO DIGITAL RELATÓRIO 01 e 02 DATA: ______/______/______ SOLUBILIDADE DOS LIPÍDIOS 1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados. Os lipídeos são biomoléculas muito importantes, e possuem várias categorias, como os ácidos graxos, os triglicerídeos, os fosfolipídeos, todos eles fazendo parte de alguma função do nosso corpo. Tem por característica uma hidrofobia, não é solúvel em água. Quanto mais apolar menos solúvel os lipídeos são. Os tubos foram identificados como água, ácido clorídrico, hidróxido de sódio, álcool etílico e éter. Em seguida foi adicionado 3 ml de cada solvente e 1 ml do óleo de milho em seu respectivo tubo. Materiais utilizados: Lipídeo: Óleo vegetal de milho. Solventes: água destilada, ácido clorídrico, hidróxido de sódio, éter etílico e álcool etílico, 5 tubos de ensaio, pipetas e pera de borracha. 2. Responda as Perguntas: a) Explique a estrutura bioquímica dos lipídios correlacionado com sua característica de insolubilidade em soluções aquosas. Os lipídios são ésteres, são elementos orgânicos derivados dos ácidos carboxílicos. Eles são compostos por uma molécula de ácido (ácido graxo) e uma de álcool (glicerol ou outro). O éster é insolúvel em água, mas se dissolve em álcool, éter. (Stood, 2021) b) Explique a fundamentação teórica da técnica de solubilidade dos lipídios. Os lipídios são moléculas apolares e conhecendo o princípio da solubilidade que "semelhante dissolve semelhante", certamente as amostras que contêm lipídios formarão soluções de apenas uma fase com as substâncias apolares; e com as substâncias polares formarão soluções onde observaremos mais de uma fase. (Juliana 2017) c) Explique os resultados encontrados no experimento. Conforme foi colocado o óleo de milho em cada tudo, o resultado já apareceu instantaneamente. No tubo da água, o resultado foi não solúvel, uma vez que o lipídeo tem por característica ser hidrofóbico. Nos seguintes tubos de ácido clorídrico e hidróxido de sódio, o resultado também foi de insolubilidade. No tubo de álcool etílico percebe-se que há um pouquinho de solubilidade, mas não é totalmente solúvel. E o tubo que melhor resultou em solubilização foi o de éter. RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS ENSINO DIGITAL RELATÓRIO 01 e 02 DATA: ______/______/______ REFERÊNCIAS Cardoso, M. Reação de Saponificação. 2006. Disponível em https://www.infoescola.com/quimica/reacao-de-saponificacao/ . Acessado em 03/09/2023. Coelho, P. Reagente de Seliwanoff – Teste para distinguir Aldoses de Cetoses. 2020. Disponível em https://www.engquimicasantossp.com.br/2020/01/reagente- seliwanoff-teste-distinguir.html . Acessado em 31/08/2023. Fogaça, J. R. V. Triglicerídeos. Disponível em https://www.manualdaquimica.com/quimica-dos- alimentos/triglicerideos.htm#:~:text=Os%20triglicer%C3%ADdeos%20s%C3%A3o% 20%C3%B3leos%20e,e%20uma%20mol%C3%A9cula%20de%20glicerina. Acessado em 03/09/2023. Heleno, M. A. G. Precipitação de proteínas por adição de sais neutros (força iônica). 2018. Disponível em https://pt.linkedin.com/pulse/precipita%C3%A7%C3%A3o-de-prote%C3%ADnas-por- adi%C3%A7%C3%A3o-sais-neutros-gomes-heleno . Acessado em 03/09/2023. Juliana. Teste de Solubilidade. 2017. Disponível em http://plone.ufpb.br/ldb/contents/paginas/teste-de-solubilidade . Acessado em 03/09/2023. Nascimento, P.S d. Ácidos graxos. 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