Relatório Prática_Bioquímica Humana

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RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS 
ENSINO DIGITAL 
	
RELATÓRIO 
01 e 02
	
	
	DATA:
______/______/______
RELATÓRIO DE PRÁTICA 
RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS: Bioquímica Humana
DADOS DO(A) ALUNO(A):
	NOME:
	MATRÍCULA:
	CURSO: 
	POLO: 
	PROFESSOR(A) ORIENTADOR(A): Claudeir Dias da Silva Junior
	ORIENTAÇÕES GERAIS: 
· O relatório deve ser elaborado individualmente e deve ser escrito de forma clara e
concisa;
· O relatório deve conter apenas 01 (uma) lauda por tema;
· Fonte: Arial ou Times New Roman (Normal e Justificado);
· Tamanho: 12;
Margens: Superior 3 cm; Inferior: 2 cm; Esquerda: 3 cm; Direita: 2 cm;
· Espaçamento entre linhas: simples;
· Título: Arial ou Times New Roman (Negrito e Centralizado). 
Atenção: desenvolva as respostas de maneira resumida, mas garanta que todo o conteúdo necessário foi abordado. Para essa atividade é obrigatório a indicação de referência bibliográfica. 
RELATÓRIO:
	ATIVIDADE CATALITICA DA AMILASE SALIVAR
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
R.: Foi utilizados: 6 tubos sendo 3 para a hidrolise química e 3 para hidrolise enzimática, 3 ml de amilase salivar, 3 ml de ácido clorídrico, 5 ml de água, 30 ml de amido 1%, proveta, Becker, pera de borracha, banho de gelo e banho-maria. Foi realizadas uma técnica enzimática e uma técnica química, a hidrólise enzimática foi realizada através da utilização da amilase salivar e a hidrólise química foi utilizado uma solução de ácido clorídrico. Para iniciação da técnica foi utilizado três tubos na qual foi realizada a atividade química através da reação em ácido, em seguida foi utilizado três tubos para realização da hidrólise enzimática através da amilase salivar. Como as proteínas têm a característica de se desnaturarem conforme o meio em que elas são submetidas, foi utilizado o banho de gelo e o banho-maria, para verificar se essas alterações de temperatura influenciam na reação catalítica. A professora iniciou fazendo uma solução para hidrólise química onde colocou 30 ml de amido 1% na proveta, logo passou para o Becker e em seguida colocou 3 ml da solução de ácido clorídrico para realização, e com auxílio da pera de borracha fez a sucção e adicionou na solução do amido que estava no Becker, após fez a solução da hidrólise enzimática utilizando também 30 ml de amido 1% e 3 ml da solução amilase salivar, em seguida foi distribuído nos tubos para atividade da hidrólise química e enzimática, após foi submetido a diversos fatores térmicos gelo e calor para visualização posterior da reação adicionando a solução de lugol para verificação da quebra ou não do amido. Além dos tubos, foi utilizado 5 ml de água para hidrólise enzimática com amilase, e para cada um dos tubos foi adicionado as respectivas soluções, realizada com a hidrólise química juntamente com ácido clorídrico e o amido e a outra para hidrólise enzimática que foi adicionado o amido e a amilase salivar, foi adicionado em cada um dos tubos 5 ml do reagente da reação inicial. Em seguida iniciou as etapas de verificação se essas mudanças de temperatura interferi no processo de hidrólise tanto na química como na enzimática. O primeiro passo foi adicionar tanto o tubo 1 da hidrólise química como da hidrólise enzimática no banho de gelo por 1 minuto, enquanto o tubo 2 foi colocado no banho-maria em torno de 10 minutos e foi posteriormente colocado no banho de gelo. E em seguida o tubo 3 foi adicionado por 20 minutos no banho-maria e em seguida adicionado no banho de gelo. Enquanto os tubos 2 e 3 estavam em banho-maria, a professora pegou o tubo 1 de ambas das hidrólises que estava apenas no banho de gelo e colocou 5 gotas em cada tubo solução de lugol 2% onde tem uma concentração de iodo que reage com a composição do amido formando uma cor escura esverdeada ou azulada quando ela encontra o amido, com isso o intuito é que ao adicionar a solução de lugol se o banho de gelo interferiu ou não nessa questão da hidrólise. Sendo assim nos tubos 1 que ficaram apenas no banho de gelo tanto da reação química tanto como na reação enzimática foi percebido que houve a degradação do amido. Enquanto nos tubos 2 ficaram submetidos por 10 minutos no banho maria e em seguida adicionado no banho de gelo por 1 minuto, não foi percebido a degradação do amido. Nos tubos 3 que ficaram por 20 minutos e posteriormente adicionado no banho de gelo também não houve degradação do amido. Isso indica que a temperatura influencia na atividade enzimática como na atividade química
2. Responda as Perguntas:
a) Qual a composição bioquímica do amido? 
 R.: A composição bioquímica do amido é composta por amilose e amilopectina. 
b) Qual o objetivo do uso de HCl, aquecimento e resfriamento no procedimento da hidrólise química do amido?
R.: Os ácidos têm a capacidade de degradar as ligações glicosídicas que formam o amido, com isso o objetivo do uso de HCI é produzir glicose como produto final.
c) Descreva a sequência de transformações operadas pela amilase na molécula da amilose.
R.: - A sequência de de transformações operadas pela amilase na molécula da amilose são iniciadas a partir do processo de mastigação, pois a saliva libera a enzima α-amilase que é a enzima responsável por catalisar a hidrolise nas ligações glicosídicas da amilose e nas ligações de amilopectina. 
d) Explique os resultados obtidos durante o ensaio bioquímico.
R.:Como dito anteriormente teve como resultado que nos tubos 1 que ficaram apenas no banho de gelo tanto da reação química tanto como na reação enzimática foi percebido que houve a degradação do amido. Enquanto nos tubos 2 ficaram submetidos por 10 minutos no banho maria e em seguida adicionado no banho de gelo por 1 minuto, não foi percebido a degradação do amido. Nos tubos 3 que ficaram por 20 minutos e posteriormente adicionado no banho de gelo também não houve degradação do amido. Isso indica que a temperatura influencia na atividade enzimática como na atividade química.
	REAÇÃO DE SELIWANOFF (REAÇÃO PARA DISTINÇÃO ENTRE ALDOSES E CETOSES)
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
R.: Foram utilizados o reativo de seliwanoff, o ácido clorídrico, a glicose, a frutose, a água como controle negativo, a pera de borracha e 3 tubos para identificação das reações. Para iniciar o procedimento foi colocado 1 ml de água no tubo 1, em seguida 1 ml de glicose no tubo 2 e 1 ml de frutose no tubo 3, feito isso, foi adicionado 1,5 ml do ácido clorídrico em cada um dos tubos, e posteriormente foi adicionado também em cada um dos tubos 0,5 ml do reativo de seliwanoff. Em seguida os tubos foram colocados em banho-maria em torno de 70 graus e ficou em observação até ocorrer a mudança de cor. Por volta de 2 minutos foi visualizado que o tubo da glicose permaneceu inalterado, isso confirma que ela não tem a produção do furfural e reação com o resorcinol. Enquanto a frutose foi percebido que houve a mudança de cor indicando a reação do resorcinol com furfural, e a água com o controle negativo também permaneceu inalterada. 
2. Responda as Perguntas:
a) Qual o princípio da técnica de Seliwanoff? 
R.:O princípio baseiase que, quando aquecidas, as cetoses sofrem desidratação muito mais rapidamente do que as aldoses. 
b) Qual o objetivo de utiliza um tubo apenas com água destilada.
R.:Serve para o controle negativo
c) Porque é necessário aplicar fervura e ácido clorídrico (HCl) durante o teste de Seliwanoff?
R.:A função do ácido clorídrico é de desidratar os carboidratos para que esse processo ocorra é preciso que haja energia no meio e essa energia vem da fervura, ao desidratar os carboidratos o ácido clorídrico forma furfurais e verifica-se uma cor vermelha intensa. 
d) Explique os resultados obtidos durante o ensaiobioquímico quanto a presença de aldose e cetoses. 
R.:Foi visualizado que o tubo da glicose permaneceu inalterado, isso confirma que ela não tem a produção do furfural e reação com o resorcinol. Enquanto a frutose foi percebido que houve a mudança formando uma cor vermelha, assim indicando a reação do resorcinol com furfural. 
	PRECIPITAÇÃO POR ÁCIDOS FORTES E METAIS PESADOS
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
 Foi utilizado ácido tricloroacético a 20 %, acetato de chumbo e matéria prima ovo albumina
10%, 2 tubos um com ácido e outro com metal pesado que é o acetato de chumbo
2. Responda as Perguntas:
a) Por que a ovoalbunina precipita na presença de ácidos fortes e metais pesados? A carga liquída sobre a proteína é negativa, favorecendo a interação com os catíons
provenientes do sal.
b) Explique por que a ovoalbumina torna-se insolúvel após a precipitação.
Porque ela foi desnaturada
c) Explique os resultados encontrados no experimento. Alguns elementos químicos são capazes de quebrar as estruturas da 
proteína que fazem essa precipitação que pode ser feitos com ácido e também 
com material pesado.
	PRECIPITAÇÃO FRACIONADA POR SOLUÇÕES SALINAS CONCENTRADAS
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados. 
Proteína é uma biomolécula muito importante. As proteínas são classificadas de acordo com o seu ponto isoelétrico e de pendendo do ambiente onde ela foi colocada ela interage de forma iônica com alguns compostos e podemos mudar essa concentração iônica de acordo com o adicionamento de sais. Esse adicionamento de sais conseguimos fazer com que mude a concentração desse ambiente onde está a proteína e consiga dissociar as proteínas de forma a precipita-las. Esse é o intuito da prática. Que consigamos em uma concentração onde temos vários tipos de proteínas fazer uma separação. Ela é muito utilizada em colunas de sílica, de resinas para separação de proteínas. 
Tubo A: Solução de ovoalbumina e concentração salina 2 ml de solução de ovoalbumina e concentração salina, 2 ml de solução de ovoalbumina 2 ml concentração de salina observar, pois, a reação éimediata. Assim que adicionada visualizamos a formação de um composto leitoso, esbranquiçado que indica precipitação das proteínas.
Tubo B: Solução de ovoalbumina e concentração de sulfato de amônio e água 2 ml de solução de ovoalbumina. Adicionar água (não fala quantidade) adicionar sulfato de amônio (não fala quantidade);Observar, pois, essa reação é imediata não conseguimos perceber a formação desse precipitado. A água diminui, interfere na questão iônica das cargas. Essa ação demonstra a importância do ponto isoelétrico das proteínas bem como o ambiente se é um meio dependendo da carga iônica a qual a proteína é submetida ela pode sim ser separada através de uma concentração salina que irá proporcionar essa separação das proteínas que pode ser através de uma coluna de resina, dependendo da coluna de onde for utilizada. E de importante utilização clínica e biológica para demais funções de
onde queira isolar determinada proteína. Materiais utilizados. Reagentes: Ovoalbumina 10% Sulfato de amônio concentrado (solução concentrada de sais, salina, que vai proporcionar a precipitação das proteínas) Água (para padrão negativo). Equipamentos: Pera de borracha, Pipeta e Becker
2. Responda as Perguntas:
a) Explique os conceitos de “Salting out”, “Salting in” e camada de solvatação? 
O Salting out provoca redução da solubidade com aumento da concentração de sal. O Salting in faz com que a solubilidade de soluto aumente com o aumento de concentração do sal. A sovatação é um processo que provoca a dissolução de sólidos iônicos.
b) Qual o princípio bioquímico do experimento? 
Proteinas
c) Explique os resultados encontrados durante o experimento. 
Não ouve precipitação no tubo com água, pois a mesma interfere a questão iônica das cargas.
Foi precipitada as proteínas a ovoalbumina
	REAÇÃO DE BENEDICT (IDENTIFICAÇÃO DE AÇÚCARES REDUTORES)
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
Para essa reação foram utilizados a sacarose 1%, a glicose 1%, o reativo de Benedict, a água, a pera de borracha e 3 tubos para a realização das respectivas reações. Para iniciar a reação foram separados 3 tubos, um para glicose, outro para sacarose e outro para água, em cada um dos tubos foi adicionado 5 ml do reativo de Benedict, foi posteriormente adicionado 5 ml de água no tubo 1 juntamente com o reativo, 5 ml de sacarose no tubo 2 e 5 ml de glicose no tubo 3. A reação não ocorre imediatamente após a colocação do material, é necessário haver uma reação a quente onde foi utilizado o banho-maria. Os tubos ficaram por 5 minutos em banho-maria em torno de 70 graus, foi analisado que no tubo 1 onde tinha a água como controle negativo não houve nenhum a reação, nenhuma mudança de cor. No tubo 2 onde tinha a sacarose foi analisado que também não houve reação entre os íons, então isso significa que a sacarose não é um carboidrato redutor. E por fim, no tubo 3 onde tinha a glicose houve uma modificação, onde ficou com uma cor esverdeada e isso indica que houve uma redução dos íons	
2. Responda as Perguntas:
a) Explique o princípio da técnica bioquímica do experimento. 
Os açúcares redutores são alguns carboidratos que apresentam estrutura, que é uma hidroxila em um dos carbonos que é o c1. E essa hidroxila consegue reagir com diversos íons principalmente metálicos. Essa reação é baseada nessa ligação onde a carbonila vai se ligar a um reativo chamado reativo de Benedict.
Materiais usados: Glicose 1% (principal monossacarídeo vamos tentar identificar se ele é um açúcar redutor), Solução de sacarose 1% (dissacarídeo), Reativo de Benedict, Água (controle negativo); Equipamentos: Pera de borracha, Pipeta Becker, Banho maria (temperatura 70 graus por 5 minutos)
b) Qual o conceito de “açúcares redutores”?
Qualquer açúcar que enquanto solução básica, apresenta um grupo carbônico livre aldeído, derivado de uma aldose
c) Explique os resultados encontrados no experimento.
No tubo com glicose, houve modificação para cor esverdeada e também ocorreu a redução dos íons, no tubo com água não houve redução, no tubo da sacarose não houve reação entre os íons, não é um carboidrato redutor.
d) Explique como o experimento pode ser aplicado nas atividades na área clínica.
Pode ser usado para testar a presença de glicose na urina, porém não é indicado para diagnóstico de diabetes
	REAÇÃO DE BIURETO
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados. 
Os materiais utilizados foram: reativo de biureto, ovoalbumina 10% que é a proteína do ovo, pera de borracha, 1 ml de água destilada e 2 tubos. Para iniciar foi adicionado 1 ml de água destilada em um tubo juntamente com o reativo de biureto e no outro tubo foi adicionado a ovoalbumina logo em seguida colocado o reativo de biureto. Posteriormente foi percebido que no tubo onde havia a ovoalbulina e o reativo de biureto ocorreu a mudança de cor indicando a presença da proteína, enquanto no tubo onde havia a água não houve a reação.
2. Responda as Perguntas:
a) Explique o princípio bioquímico da Reação de Biureto.
É a resposta da formação de um complexo entre CM2+ e as proteínas ou peptídeos com mais de dois aminoácidos.
b) Qual o tipo de ligação que ocorre entre o Biureto e as moléculas identificadas? Ligação peptídica
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
Como dito anteriormente, no tubo onde havia a ovoalbumina juntamente com o reativo de biureto ocorreu a mudança de cor indicando a presença de proteína, enquanto no tubo onde havia sido adicionado a água não houve reação. 
	REAÇÃO DO LUGOL (IDENTIFICAÇÃO DEPOLISSACARÍDEOS)
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados. 
Os materiais utilizados foram: solução de amido 1%, lugol 2%, água destilada para o controle negativo, 2 tubos e uma pera de borracha. Para iniciar a reação foi colocado 1 ml de amido em um dos tubos e no outro tubo foi adicionado 1 ml de água. Posteriormente foi adicionado em ambos os tubos a solução de lugol para a verificação, feito isso foi observado que no tubo onde havia sido colocado a água ficou com uma cor amarelada meio amarronzado e no outro tubo onde havia o amido ficou com uma cor esverdeada e isso indica a presença do amido. 
2. Responda as Perguntas:
a) Explique o princípio bioquímico da utilização do lugol na identificação de polissacarídeos. 
Quanto mais escura e intensa for a cor significa que há maior quantidade do polissacarídeo. 
b) Explique para quais situações essa técnica pode ser utilizada. 
Utilizada para a verificação do amido.
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
Foi observado que no tubo onde havia sido colocado a água ficou com uma cor amarelada meio amarronzado e no outro tubo onde havia o amido ficou com uma cor esverdeada e isso indica a presença do amido
	REAÇÃO DE SAPONIFICAÇÃO
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados.
Vimos o que acontece quando um Ester em solução aquosa de base inorgânica, produz um sal orgânico e álcool. É conhecido como hidrolise alcalina resultante do ácido graxos, o mesmo é usado na produção do sabão. 
Materiais utilizados:- Ácido clorídrico 0.1 N, hidróxido de sódio 0.1 N, etanol, éter etílico, pipetas de vidro e tubos de ensaio
2. Responda as Perguntas:
a) Explique bioquimicamente o que são ácidos graxos e triglicerídeos. São os lipídios mais abundantes na natureza, compostos por uma molécula de glicerol ligada a três de ácidos graxos esterificados
b) Explique a fundamentação teórica da técnica de saponificação. 
Acontece quando um éster em solução aquosa de base inorgânica origina em sal orgânico e álcool. Conhecida também como hidrólise alcalina
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
Com a água não houve espuma e também tem pequenos cristais que é o cálcio interferindo na produção de espuma, diferente da mistura do óleo de milho e o hidróxido de potássio que ocorreu hidrólise gerando espuma
	SOLUBILIDADE DOS LIPÍDIOS
1. Descreva os procedimentos realizado durante a aula, explicando as etapas e quais materiais utilizados. Foi entendido em aula, sobre a solubilidade dos lipídios, que são moléculas orgânicas que encontramos em alimentos como a gema de ovo, óleos vegetais, carne vermelha. Visualizamos que suas moléculas são apolares, não dissolvem em água que contém moléculas polares. Porém são altamente solúveis em solventes orgânicos com moléculas apolares ex: sulfato de carbono,
gasolina e acetona. 
Materiais utilizados:- Ácido clorídrico 0.1 N;- Hidróxido de sódio 0.1 N;Etanol; Éter etílico; Pipetas de vidro e Tubos de ensaio
2. Responda as Perguntas:
a) Explique a estrutura bioquímica dos lipídios correlacionado com sua característica de insolubilidade em soluções aquosas.
Insolubilidade em solventes polares e a solubilidade em sol ventes orgânicos 
(apolares), apresentando natureza hidrofóbica, no entanto, aversão a molécula de água
b) Explique a fundamentação teórica da técnica de solubilidade dos lipídios.
Solubilidade em solventes orgânicos apolares como clorofórmio, éter, benzeno e baixa solubilidade em solventes polares como água, etanol, metanol
c) Explique os resultados encontrados no experimento. 
Foi notado que quanto maior é a concentração de água em determinado solvente ele terá menor solubilidade diferente do éter e etanol.
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