Exame Andrológico: Fundamentos e Roteiro

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Exame andrológico:
● Fundamentos/Indicações;
● Roteiro do exame:
○ Identificação;
○ Exame clínico:
■ Anamnese;
■ Inspeção geral;
■ Específico do sistema genital (Externo e Interno);
■ Comportamento sexual;
■ Espermograma (avaliação do sêmen): coleta do sêmen e realizar o
exame biológico desse sêmen;
■ Provas sanitárias.
○ Diagnóstico e conclusão;
Exame macroscópico do ejaculado:
➔ Volume: copo graduado (mL) ou falcon (equinos e cães) ou balança (g = mL,
suíno);
➔ Aspecto: Cremoso, cremoso-leitoso, leitoso, leitoso-seroso, seroso, sero-aquoso,
aquoso.
◆ Isso tem relação com concentração, quanto mais espermatozóides tem
naquele ejaculado, mais denso ele é e terá um aspecto mais cremoso,
quanto menos espermatozóides, possui um aspecto mais aquoso.
➔ Odor: Sui generis (clara de ovo);
➔ Cor: pode variar de acordo com o teor de riboflavina na dieta: branco a marfim
ou amarelado.
Exame microscópico do ejaculado:
➔ Movimento:
◆ Movimento de massa (Turbilhão): ruminantes e aves (> 3)
◆ Movimento (motilidade) individual: movimento progressivo, movimento
local, imóveis > obs. sobre lâmina + lamínula aquecidas (37oC);
● 60% (B, Eq), > 70% (Bu, Sui, Av, can),3 > 80% Ov, Capr;
➔ Vigor;
➔ Concentração;
➔ Exame morfológico.
Espermograma
Características do ejaculado:
➔ Volume:
◆ Determinado diretamente no copo coletor
◆ Expresso em ml
◆ Varia conforme espécie, método de coleta, regime de serviços (animais em
serviço produzem menos ejaculado), tempo de excitação, condição da
coleta e outros…
➔ Aspecto:
◆ Avaliação visual;
◆ Cor e aparência (consistência);
◆ Cores: branca, marfim, amarelada, avermelhada, marrom, cinza escuro;
◆ Consistência: cremosa, leitosa, opalescente, serosa, aquosa:
● Dependendo da concentração espermática.
Hematospermia|Aspecto cremoso
➔ Turbilhão ou movimento de massa (característica física do sêmen):
◆ Ondas de espermatozóides formando verdadeiras cristas, que aparecem
como linhas mais escuras nos pontos em que se encontram com as outras
relação entre concentração de espermatozoide e motilidade gota em
microscópio (40X)
◆ 5 = deslocamento intenso, ondas espessas;
◆ 4 = ondas com rápidos movimentos;
◆ 3 = ondas aparentes, movimentos moderados;
◆ 2 = ondas em movimentos pouco perceptíveis;
◆ 1 = não tem ondas, células imóveis.
➔ Motilidade (característica física do sêmen):
◆ A avaliação da motilidade espermática é o parâmetro mais utilizado para
a avaliação do sêmen, definida como a porcentagem de espermatozoides
móveis da amostra avaliada imediatamente após a colheita ou após a
criopreservação do sêmen (Seager e Fletcher, 1972);
◆ A avaliação da motilidade após a criopreservação tem como objetivo
verificar a proporção de espermatozóides que mantiveram a motilidade
após as injúrias causadas por esse processo de conservação (Peña, 2000);
◆ A proporção de espermatozoides exibindo motilidade progressiva é,
geralmente, estimada, subjetivamente, no microscópio óptico de contraste
de fase ou, de forma objetiva, utilizando-se a análise computadorizada
(Peña Martinez, 2004);
◆ Motilidade progressiva: que estão indo para frente;
◆ Motilidade não progressiva: espermatozóides que ficam em círculos, são
espermas não móveis, não são os ideias para o processo de fecundação.
◆ Expressa em (%), em aumento de 10- 40x;
◆ Avaliação subjetiva (total ou progressiva): contar os espermatozóides
móveis;
◆ Lâmina + lamínula, ou diluído em solução de citrato de sódio;
◆ Fotomicrografia;
◆ Computadorizado;
◆ Métodos de avaliação:
● Microscopía óptica (Salisbury et al.,1978);
● Motilidade computadorizado( Amann, 1989);
● Método fotográfico (Elliott et al., 1973);
● Swin up: baixa eficácia (Suttiyon & Thwaites, 1993).
◆ Casa:
● Velocidade curvilínea (VCL): Distância real percorrida em função
do tempo (μm/s);
● Velocidade média (VAP): Distância percorrida medida do primeiro
ao último ponto da sua trajetória (μm/s);
● Velocidade retilínea (VSL): Distância percorrida em uma linha
média da sua trajetória (μm/s);
◆ É o teste + utilizado para estimar a capacidade fertilizante de um sêmen;
◆ Pela facilidade e rapidez;
◆ Existe certa correlação com a fertilidade (Foote, 2003).
◆ Somente a motilidade é inadequada para predizer a capacidade de
fertilização do sêmen. (Pace & Sullivan, 1975; Jasko, 1992; Heitland et al.,
1995);
◆ A % de móveis avaliada visualmente não apresenta uma forte correlação
com a fertilidade. (Graham, 1996);
◆ Diferença significativa entre diluentes, inclusive dentro das dietas
(Mohanthy, 1973);
◆ Variações estacionais na motilidade (Magistrini et al.,1987; Hoffmann et
al., 1999);
◆ Espécies poliéstricas estacionais:
● Alta motilidade na estação reprodutiva;
● A qualidade do sêmen avaliada também na morfologia, potencial
de membrana mitocondrial e integridade de membrana aumenta
do inverno para o verão;
● Na estação reprodutiva: as características espermáticas
apresentam melhores valores de integridade de acrossoma e mais
espermatozóides com maior potencial de membrana mitocondrial.
➔ Vigor:
◆ Força do movimento ou velocidade com que os espermatozóides se
movimentam;
◆ Estimado em (0 - 5);
◆ Utiliza mesma condição para avaliação da motilidade;
◆ Limites:
● Bovinos, Ovinos e Equinos:
○ Vigor mínimo é 3 (em uma escala de 1-5, CBRA).
◆ Vigor: velocidade (Classificação de Walton):
● Todos ou quase todos os movimentos exibem movimentos
progressivos > 5;
● 75% dos espermatozóides tem movimentos progressivo > 4;
● Metade dos espermatozóides com movimento progressivo e
oscilatório e metade de imóveis (intermediário) > 3;
● Só existem espermatozóides com movimentos lento e um grande
número de imóveis > 2;
● Apenas movimentos oscilatórios > 1;
● Ausência de espermatozóides móveis > 0.
◆ O vigor espermático é um parâmetro, normalmente, avaliado em conjunto
com a motilidade e é definido como a qualidade do movimento exibido
pelos espermatozoides móveis. Para tanto, faz-se uso de uma escala
compreendida numa faixa de 0 a 5, cujas classificações variam segundo
os autores Platz e Seager (1977); Christiansen (1988) e Johnston et al.
(2001).
➔ pH:
◆ 6,8 à 7,2 (precisa estar na neutralidade);
◆ Utiliza-se papel indicador;
◆ Fatores de variação:
● Baixa densidade espermática;
● Inflamações (alcalino);
● Substâncias estranhas.
➔ Concentração:
◆ Número de espermatozoides por mm3;
◆ Métodos para determinação:
● Câmara de contagem (Neubauer): É o hemocitômetro:
○ Diluição:
◆ 20μl / diluição 4 mL de solução formol salina = 1:200;
◆ 20μl / diluição 2 mL de solução formol salina = 1:100;
◆ Ou
◆ 50 μl / 9,95mL solução formol salina (1:200);
◆ 100 μl/9,9mL solução formol salina (1:100).
◆ Sempre de 1/20:
● Conte os dois lados da câmara e faça a média;
● “Dica” Sempre que a diluição efetuada for de
1/20, basta multiplicar o número (número
médio contado nos retículos) por milhão (106)e
tem-se direto a concentração por ml.
○ Amostra diluída em água destilada ou formol salina;
Contagem dessa forma ou dessa.
É preciso contar os espermas que estão dentro dos quadrantes, somente conta o espera
que está com a cabeça dentro do quadrante. Nesta imagem existem 12 espermas dentro
do quadrante. As 3 linhas contam. Realizar a contagem em formato de L.
● Espectrofotometria;
● Micro-cell-counter.
◆ Varia conforme fatores intrínsecos e extrínsecos.
➔ Morfologia.