TÉCNICA DE NECROPSIA EM PEQUENOS ANIMAIS

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TÉCNICA DE NECROPSIA EM 
PEQUENOS ANIMAIS
UNIVERITAS - RJ; Patologia Geral Veterinária; Segundo 
Semestre de 2021
Objetivo da Necropsia
• Analisar sistematicamente as diversas partes do organismo 
para observar as alterações ocorreram no animal em vida e 
post-mortem, diagnosticando a causa e estimando o tempo 
da morte através da determinação do processo principal que 
levou o animal ao óbito.
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Semestre de 2021
Necropsia
• O sucesso de uma necropsia depende de fatores determinantes 
como:
• Equipamento adequado
• Técnica adequada
• Coleta adequada de informações
• Coleta de amostras biológicas
• Preparação de laudo técnico
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Equipamento necessário
• EPIs (Equipamentos de Proteção Individual):
• Luvas
• Calçado fechado
• Jaleco / macacão
• EPCs (Equipamentos de Proteção Coletiva):
• Sala equipada com exaustores, chuveiro, lava-olhos, descarte de material 
perfurocortante, etc...
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Equipamento necessário
• Materiais para a necropsia
• Faca magarefe (faca curva)
• Faca reta para órgãos
• Costótomo
• Tesouras
• Enterótomo
• Pinça dente-de-rato
• Pinça anatômica
• Serra
• Tábua para corte
• Frasco com água
• Esponja
• Frasco com formol a 10%
• Régua
• Barbante
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Observações importantes
• Realizar a necropsia após AUTORIZAÇÃO ASSINADA do 
proprietário/responsável
• Recolher informações clínicas e laboratoriais para associar aos 
achados necroscópicos
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Exame necroscópico
• Exame externo:
• Estado geral (nutrição, lesões externas, ectoparasitas, cicatrizes, massas, 
suturas, alterações cadavéricas, exame de cavidade oral, mucosas)
• Identificação do paciente: Espécie, sexo, idade, raça, peso, marcas, cor e 
aspecto de pêlos, cor e aspecto de pele e aspecto de cavidades naturais 
(olhos, boca, ouvidos, narinas, ânus e genitálias)
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Exame necroscópico
• Posicionamento do animal:
• Decúbito dorsal, fixado à mesa com barbantes
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Pontos de fixação
Exame necroscópico
• Abertura do cadáver:
• Incisão mentopubiana (contornar os genitais)
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Exame necroscópico
• Abertura do da cavidade abdominal:
• Abertura junto à cartilagem xifoide até o púbis
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Exame necroscópico
• Desarticulação dos membros:
• Posteriores: articulação coxofemoral
• Anteriores: escápula
• Terminar a dissecção da pele
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Exame necroscópico
• Desarticulação das costelas:
• Utilizar o costótomo
• Articulação costocondral
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Exame necroscópico
• Desarticulação das costelas:
• Utilizar o costótomo
• Articulação costocondral
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Exame necroscópico
• Retirada do púbis
• Utilizar o costótomo
• Cranial e caudal aos forames 
obturadores
• Visualização dos órgãos “in 
situ”
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Exame necroscópico
• Incisão do palato
• Incisão em “V” invertido
• Desarticular o hioide
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Exame necroscópico
• Retirada do monobloco
• Soltar a traqueia e o esôfago, puxando-os até a 
abertura da cavidade torácica
• Seccionar o diafragma na porção semicircular dorsal
• Seccionar o conjunto abdominal paralelamente à 
coluna vertebral até a cavidade pélvica
• Contornar a cavidade pélvica juntamente com a 
genitália externa e o ânus
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Monobloco
• Foto: cortesia profª Drª Giuliana Croce
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SEPARAÇÃO DO MONOBLOCO EM CONJUNTOS
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PRIMEIRO CONJUNTO
• Língua, faringe, laringe, traquéia, esôfago, 
pulmão e coração:
• Faz-se uma duplo amarração no esôfago anterior ao 
diafragma e secciona-se este entre as amarrações.
• Secciona-se a veia cava caudal e libera-se o saco 
pericárdico da sua inserção com o externo, tomando 
cuidado para não perfurá-lo, liberando assim o 
conjunto.
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PRIMEIRO CONJUNTO
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SEGUNDO CONJUNTO
• Baço e omento maior:
• Com o auxílio da tesoura, 
libera-se o omento da sua 
inserção com o estômago 
e alças intestinais.
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TERCEIRO CONJUNTO
• Intestino delgado e 
grosso: 
• Faz-se uma dupla 
amarração no duodeno 
logo após a porção caudal 
do pâncreas; e no reto 
anterior à bexiga.
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QUARTO CONJUNTO
• Diafragma, 
fígado, vesícula 
biliar, 
estômago, 
pâncreas e 
porção inicial 
do duodeno
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QUINTO CONJUNTO
• Rins, ureteres, bexiga, uretra, genitais, ânus e reto
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QUINTO CONJUNTO
• Rins, ureteres, bexiga, uretra, genitais, ânus e reto
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SEXTO CONJUNTO
• Sistema nervoso central
• Abertura do crânio:
• Remover o máximo de musculatura craniana afim de expor os ossos;
• Posicionar a serra transversalmente acima das órbitas oculares, e serrar em sentido 
látero-lateral
• Realizar mais duas linhas de corte laterais na face interna dos occipitais. 
• Retirar a calota craniana e as meninges. 
• Cortar os nervos cranianos na base do encéfalo e retirar o cérebro inteiro da caixa 
craniana.
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Foto: Cortesia Prof. Luís 
Gustavo P. Oliveira
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Foto: Cortesia Prof. Luís 
Gustavo P. Oliveira
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Foto: Cortesia Prof. Luís 
Gustavo P. Oliveira
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Foto: Cortesia Prof. Luís 
Gustavo P. Oliveira
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Foto: Cortesia Prof. Luís 
Gustavo P. Oliveira
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Foto: Cortesia Prof. Luís 
Gustavo P. Oliveira
SÉTIMO CONJUNTO
• Carcaça:
• Linfonodos, articulações, musculatura
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EXAME DOS ÓRGÃOS
• LÍNGUA: Seccionar 
longitudinalmente
• ESÔFAGO: Incisão e avaliação da 
mucosa
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EXAME DOS ÓRGÃOS
• TRAQUEIA:
• Seccionar pela porção 
membranosa até a 
carina
• Abrir os brônquios 
principais
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EXAME DOS ÓRGÃOS
• PULMÕES
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EXAME DOS ÓRGÃOS
• PULMÕES
• TESTE DE 
FLUTUAÇÃO 
PULMONAR:
• Presença de ar 
nos alvéolos
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EXAME DOS ÓRGÃOS
• CORAÇÃO:
• Abrir o saco pericárdico e 
avaliar conteúdo
• Abertura do coração da 
base ao ápice
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EXAME DOS ÓRGÃOS
• AORTA:
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EXAME DOS ÓRGÃOS
• BAÇO:
• Aspecto interno e externo
• OMENTO:
• Cor, aspecto e 
transparência
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EXAME DOS ÓRGÃOS
• ESTÔMAGO:
• Abertura na 
curvatura maior
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EXAME DOS ÓRGÃOS
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EXAME DOS ÓRGÃOS
• DUODENO:
• Abrir na porção não-mesentérica
• Comprimir a vesícula biliar
• (MANOBRA DE VIRCHOW)
• Obstruções biliares
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MANOBRA DE VIRCHOW
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MANOBRA DE VIRCHOW (Saída da Bile)
EXAME DOS ÓRGÃOS
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EXAME DOS ÓRGÃOS
• RINS:
• Corte longitudinal, separação 
da cápsula, observar córtex e 
medula
• BEXIGA:
• Abertura e avaliação da 
mucosa
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EXAME DOS ÓRGÃOS
• ENCÉFALO:
• Separar fragmentos para armazenar sob refrigeração 
(virologia, bacteriologia)
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Lobo frontal telencefálico
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Foto: Cortesia Prof. Luís 
Gustavo P. Oliveira
Hemisfério cerebelar lateral
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Foto: Cortesia Prof. Luís 
Gustavo P. Oliveira
Medula espinhal cervical
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Foto: Cortesia Prof. Luís 
Gustavo P. Oliveira
Tálamo
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Foto: Cortesia Prof. Luís 
Gustavo P. Oliveira
Lobo frontal 
telencefálico
Tálamo
Hemisfério 
cerebelar
Medula 
cervical
REFRIGERAR
Foto: Cortesia Prof. Luís 
Gustavo P. Oliveira
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FORMOLIZAR
Foto: Cortesia Prof. Luís 
Gustavo P. Oliveira
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COLHEITA DE MATERIAL
• Quanto antes, melhor
• Fixador de eleição: FORMOL TAMPONADO A 10%
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COLHEITA DE MATERIAL
• Local de coleta:
• Focal:
• LESÃO + NÃO LESÃO
• Tecido referência normal
• Difusa:
• Área representativa
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COLHEITA DE MATERIAL
• Proporção ideal de fixador:
• 20:1
• Identificação dos fragmentos 
no frasco À LÁPIS
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COLHEITA DE MATERIAL
• FRASCO DE BOCA LARGA!!!
• Endurecimento da amostra em 
boca estreita pode levar a falhas 
analíticas
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Foto: Cortesia Prof. Luís 
Gustavo P. Oliveira
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Foto: Cortesia Prof. Luís 
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COLHEITA DE MATERIAL
• Fixação de mucosas (órgãos ocos):
• Distendidas sobre base reta para evitar dobramentos, apoiados sobre a 
SEROSA
• Pode-se usar uma base de papel
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