11 -Aula Controle de Trichostrongylidae

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EXAMES LABORATORIAIS
TÉCNICAS QUALITATIVAS 
• Sedimentação espontânea
• Método de Hoffmann, Pons & Janer (1934) ou Lutz(1919)
• Sedimentação por centrifugação
• Sedimentação por centrifugação com éter
• Método de Blagg ou MIFC e método de Richie
• Flutuação com solução de sal
• Método de Willis
• Flutuação com solução de açucar
• Método de Sheather
• Flutuação em solução de Sulfato de Zinco
• Método de Faust (Faust et al. 1938)
DIAGNÓSTICO DE HELMINTOS INTESTINAIS
TÉCNICA:
- Colocar cerca de 2,5 g de fezes em um
frasco de Borrel contendo 5 mL de água;
- Triturar bem com um bastão de vidro.
-Acrescentar aproximadamente 20 mL de
água.
- Filtrar a suspensão para um cálice de
sedimentação de 100 mL através de gaze
cirúrgica dobrada em quatro.
- Os detritos contidos na gaze ou tela de
nylon são lavados em mais 20 mL de
água.
-Deixar a suspensão do cálice em repouso
por 1 a 24 horas.
-Decantar o sobrenadante
-Colher uma gota do sedimento, colocar
entre lâmina e lamínula e examinar ao
MO 10X a 40X.
EXAMES PARASITOLÓGICOS DE FEZES
SEDIMENTAÇÃO ESPONTÂNEA
Método de Hoffmann, Pons & Janer (HPJ) ou Lutz
EXAMES PARASITOLÓGICOS DE FEZES
SEDIMENTAÇÃO POR CENTRIFUGAÇÃO
SEDIMENTAÇÃO POR CENTRIFUGAÇÃO 
Método de Blagg ou MIFC e método de Richie
EXAMES PARASITOLÓGICOS DE FEZES
EXAMES LABORATORIAIS
TÉCNICAS QUALITATIVAS 
• Sedimentação espontânea
• Método de Hoffmann, Pons & Janer (1934) ou Lutz(1919)
• Sedimentação por centrifugação
• Sedimentação por centrifugação com éter
• Método de Blagg ou MIFC e método de Richie
• Flutuação com solução de sal
• Método de Willis
• Flutuação com solução de açúcar
• Método de Sheather
DIAGNÓSTICO DAS ENTEROPARASITOSES
TÉCNICA:
- Colocar 2 g de fezes num frasco de
Borrel ou copo de plástico;
- Misturá-las com uma solução saturada
de NaCl, de maneira que a superfície do
líquido atinja a borda superior do
recipiente;
-Colocar uma lamínula sobre a boca do
tubo de ensaio e deixá-la nesta situação
por 5 - 10 minutos.
- Levantar a lamínula e coloca-la sobre
uma lâmina;
-Examinar em aumento médio todo o
material obtido. (pode corar com lugol).
FLUTUAÇÃO ESPONTÂNEA - MÉTODO DE WILLIS
EXAMES PARASITOLÓGICOS DE FEZES
ANIMAIS CRIADOS EXTENSIVAMENTE 
“A PASTO”
DIAGNÓSTICO E CONTROLE DOS 
TRICOSTRONGILÍDEOS
Filo Nematoda
Classe Secernentea
Ordem Strongylida
Família Trichostrongylidae
•Ovos de cápsula fina e expelidos segmentados.
•A infecção ocorre pela ingestão de larvas infectantes.
Gêneros: Haemonchus, Cooperia, Trichostrongylus e Ostertagia
Responsáveis por alterações na absorção dos nutrientes,
promovendo diarreia, desidratação e até morte
CICLO DE ESTRONGILÍDEOS DE RUMINANTES
Hemoncose
DIAGNÓSTICO
LABORATORIAL: 
Exame de fezes:
•Pesquisa de ovos por sedimentação e/ou flutuação fecal. 
•Contagem de ovos nas fezes => Técnica de Gordon e Whitilock (1939) => OPG 
Coprocultura
•Método de Harada & Mori 
Concentração de Larvas:
•Baermann-Moraes ou Rugai 
CLÍNICO 
Sinais clínicos, produtivos e epidemiológicos
EXAMES LABORATORIAIS
TÉCNICAS QUANTITATIVAS
•Técnica de Gordon & Whitlock modificada (OPG)
DIAGNÓSTICO DAS ENTEROPARASITOSES
Fazer a contagem nas duas áreas da câmara de MacMaster 
e multiplicar por 100 = OPG
Área da câmara de MacMaster = 1,0 cm2 x 1,5mm
MÉTODOS QUANTITATIVO
MÉTODO DE GORDON & WHITLOCK (OPG)
Técnica:
-Pesar 2 g de fezes (bovinos, ovinos e caprinos);
-Colocá-las em um copo de vidro;
-Adicionar 58ml de solução saturada de NaCl;
-Homogeneizar com um bastão de vidro e passá-la por um tamis;
-Retirar uma alíquota e preencher um lado da câmara de McMaster, 
retirar outra alíquota e preencher o outro lado;
-Aguardar de 1 a 2 minutos;
-Examinar ao microscópio (foco nas microbolhas);
-Fazer a contagem nos 2 lados da câmara;
-Multiplicar o resultado por 100;
-Resultado dado em OPG (ovos por grama de fezes);
-Contar separadamente os ovos dos gêneros:
Strongyloides, Nematodirus, Capillaria, Trichuris e Neoascaris.
MÉTODO DE GORDON & WHITLOCK (OPG)
Pesar 2 gramas de fezes Solução saturada de NaCl
Adicionar 15 ml de água 45 ml de sol. Saturada de NaCl Homogeneizar e coar em gase
MÉTODOS QUANTITATIVO
MÉTODO DE GORDON & WHITLOCK (OPG)
Homogeneizar e encher a câmara Preencher os dois lados da câmara Aguardar de 2 a 3 minutos
Examinar ao MO no aumento de 10 (100X)
MÉTODOS QUANTITATIVO
MÉTODOS QUANTITATIVO
Interpretação do OPG em Ruminantes
(Ueno & Gonçalves, 1998)
Hipoproteinemia e edema de barbela - Hemoncose Verminose em bezerros
http://www.uff.br/diagmsv/index.php?option=com_content&view=article&id=66%3Averminose-em-bezerros&catid=39%3Asinais-clinicos-e-patogenia&Itemid=66
TÉCNICA DE DIAGNÓSTICO PARASITOLÓGICO
• Coprocultura (Roberts & O’Sullivan (1950)
DIAGNÓSTICO DAS ENTEROPARASITOSES
Pesar 10-20 gramas de
fezes
Misturar com vermiculita
Guardar em estufa de 26oC a 28oC por 7 dias.
EXAMES LABORATORIAIS
TÉCNICAS DE CONCENTRAÇÃO DE LARVAS
• Método de Baerman & Moraes
• Método de Rugai
DIAGNÓSTICO DAS ENTEROPARASITOSES
Métodos de Baerman-Moraes (A e B) Métodos de Rugai (C)
MÉTODO DE BAERMANN & MORAES
Colher 10g de fezes ou coprocultura
Colocar em gaze dobrada em quatro. Colocar em funil com água a 45ºC
DIAGNÓSTICO DAS ENTEROPARASITOSES
TÉCNICAS PARASITOLÓGICAS DE EXAMES DE FEZES
MÉTODO DE BAERMANN & MORAES
Larva L3
Trichostrongylus axei
Trichostrongylus sp.
Tipo de cauda: CURTA e obtusa. 
Características: Porção anterior arredondada.
Srongyloides
Larvas de Srongyloides são mais delgadas, não possuem
bainha, apresentam um longo esôfago cilíndrico e cauda bífida.
Haemonchus sp.
Tipo de cauda: MÉDIA
Características: Porção anterior afiladacom sombreamento
Cooperia ps.
Tipo de cauda: MÉDIA
Características: Porção anterior quadrada com dois corpos refringentes
CONTAGEM DE OPG
18 ovos X 100 = 1.800 opg fezes
COPROCULTURA
BAERMANN & MORAES 
Identificação de 100 larvas L3
50 => Haemonchus sp.=> 50%
30 => Cooperia sp.=> 30%
20 => Trichostrongylus sp.=> 20%
CONVERTENDO OPG=>LPG
900 Haemonchus sp.
540 Cooperia sp;
360 Trichostrongylus sp.
TÉCNICAS PARASITOLÓGICAS DE EXAMES DE 
FEZES IDENTIFICAÇÃO DE LARVAS (LPG)
GORDON & WHITLOCK (1939)
CÂMARA DE MAC MASTER
Strongylidae
Parascaris equorum
Strongyloides westeri
Oxyuris equi Anoplocephala spp.
PROCESSAMENTO DAS AMOSTRAS DE FEZES DE
EQUÍDEOS
8 CÉLULAS 
INTESTINAIS
Strongylus vulgaris
28 A 32 CÉLULAS
RETANGULARES
Strongylus equinus
16 CÉLULAS E
PROCESSO 
TRILOBADO
ROBERT’S & O’SULLIVAN (1950)
COPROCULTURAS -OBTENÇÃO DAS L3
BEVILAQUA (1988)
DIFERENCIAÇÃO E IDENTIFICAÇÃO DAS L3
Cyathostominae Strongylus edentatus
18 A 20 CÉLULAS
E PONTA DA
CAUDA ROMBA
PROCESSAMENTO DAS AMOSTRAS DE FEZES DE
EQUÍDEOS
Albendazol (10 mg/Kg VO).
Doramectina (0,2 mg/Kg IM ou SC)
Ivermectina (0,2 mg/kg SC)
Levamisol (5 a 8 mg/Kg VO)
TRATAMENTO
Anti-helmíntico (injetável ou oral);
Eficaz contra todas as formas (Larva ou adulto)
Drogas empregadas no tratamento específico:
•O risco de infecções clínicas pode ser reduzido com o uso do Sistema
Integrado de Controle Parasitário (SICOPA), que inclui:
•Conhecer o modelo de criação (intensiva ou extensiva);
•Conhecer as condições climáticas locais;
•Conhecer a epidemiologia dos parasitos presentes no ambiente;
•Ajustar a lotação animal;
•Avaliar individualmente os animais;
•Adotar tratamento antiparasitário de maneira seletiva, quando possível;
•Manter nutrição adequada;
•Avaliar a necessidade de tratamento de bovinos (vacas) adultos.
CONTROLE DOS TRICOSTRONGILÍDEOS
O princípio de uma estratégia de controle é manter um nível suficiente de
parasitismo no ambiente para que ocorra estímulo da imunidade em animais
jovens, mantendo a saúde e o bem-estar dos animais.
Controle Estratégico de Verminoses
•Tratamento curativo
•Tratamento tático
Vermifugação dos animais:
Final das chuvas, período de seca e início das águas),
Curativo –
Animais são vermifugados apenas quando ocorrem sinaisclínicos;
Supressivo –
Tratamento em intervalos pré- estabelecidos, durante todo o ano;
Tático –
Animais são vermifugados quando alguma condição favorece o 
desenvolvimento dos vermes (entrada em novas pastagens ou confinamento, 
rotação ou compras de animais);
Estratégico –
Prevenção de novas infestações com resultados a médio e longo prazo. 
Característica, a utilização racional de vermífugos e manutenção de cargas
parasitárias compatíveis com a produção animal => o melhor custo benefício.
Tratamentos e Controle de Verminoses